Научная статья на тему 'Влияние сред, используемых при искусственном оплодотворении и культивировании эмбрионов, на свободнорадикальное окисление'

Влияние сред, используемых при искусственном оплодотворении и культивировании эмбрионов, на свободнорадикальное окисление Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

CC BY
287
39
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНОЕ ОПЛОДОТВОРЕНИЕ / ЧАСТОТА ОПЛОДОТВОРЕНИЯ / КУЛЬТУРАЛЬНАЯ СРЕДА

Аннотация научной статьи по фундаментальной медицине, автор научной работы — Исхаков Ильгиз Раисович, Исхакова Р.М., Громенко Д.С., Фархутдинов Рафагат Равильевич

Проведено исследование влияния сред, используемых для оплодотворения и культивирования эмбрионов, на процессы свободнорадикального окисления. На 1 этапе изучались исходные среды: их влияние на интенсивность хемилюминесценции в модельных системах, генерирующих активные формы кислорода, и в которых протекают реакции перекисного окисления липидов. На 2 этапе исследования оценивали влияние на хемилюминесценцию этих же модельных систем при добавлении сред, после проведения в них оплодотворения и культивирования эмбрионов. Определяли уровень общей антиоксидантной активности и уровень малонового диальдегида.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Текст научной работы на тему «Влияние сред, используемых при искусственном оплодотворении и культивировании эмбрионов, на свободнорадикальное окисление»

ВЛИЯНИЕ СРЕД, ИСПОЛЬЗУЕМЫХ ПРИ ИСКУССТВЕННОМ ОПЛОДОТВОРЕНИИ И КУЛЬТИВИРОВАНИИ ЭМБРИОНОВ, НА СВОБОД НОР А ДИК АЛ ЬНОЕ ОКИСЛЕНИЕ

И.Р. Исхаков1, P.M. Исхлкова", Д.С. Громенко", P.P. Фархутдинов1

J Башкирский государственный медицинский университет, Уфа " Медицинских to центр «Семья», Уфа

Abstract

We investigated the influence of media used for fertilization and embryo culture on the processes of free radical oxidation. At first stage original media were studied: their influence on the intensity of cheniiluminescence in model systems that generate reactive oxygen species, and in which occur lipid peroxidation reactions. At second stage of study we evaluate the influence on cheini luminescence of these same model systems when adding media after fertilization and embryo culture. We define the level of total antioxidant activity and ma Ionic di aldehyde level.

Keywords: in vitro fertilization, fertilization rate, culture medium

Проведено исследование влияния сред. используемых для оплодотворения и культивирования эмбрионов. на процессы с в обод нора дика ль но го окисления. На 1 этапе изучались исходные среды: их влияние на интенсивность хемилюминесценции в модельных системах, генерирующих активные формы кислорода, и в которых протекают реакции перекисного окисления лнпидов. На 2 этапе исследования оценивали влияние на хеми люминесценцию этих же модельных систем при добавлении сред, после проведения в них оплодотворения и культивирования эмбрионов. Определяли уровень общей антиоксидантной активности и уровень малонового диальдегида.

Ключевые слова: экстракорпоральное оплодотворение, частота оплодотворения, культур а льная среда

Культуральные среды широко используются в эмбриологии и репродуктивной медицине для оплодотворения и культивирования эмбрионов. Известно, что в процессе жизнедеятельности образуются свободные радикалы: активные формы кислорода (АФК). перекис ные радикалы и другие высокореакционные соединения [?]. Свободные радикалы и продукты окисления участвуют во многих жизненно важных процессах. Изменение их содержания вызывает оке и дативный стресс, влияет на скорость клеточного деления и рост эмбрионов, способно вызывать повреждение, как целых кчеток. так и внутриклеточных структур, приводить к их гибели [2]. До настоящего времени остается неизученным влияние культуральных сред, используемых

при искусственном оплодотворении и культивировании эмбрионов, на процессы свободнорадикального окисления (СРО) [3].

Цель исследования-, изучить влияние сред, используемых при искусственном оплодотворении, на СРО в модельных системах, изменение СРО в средах после развития эмбриона.

Материалы и методы

Было обследовано 114 пар с диагнозом бесплодие, проходивших диагностику и лечение на базе медицинского центра «Семья» (г. Уфа). Женщинам проводили общеклиническое и гинекологическое обследование. УЗИ органов малого таза, эндоскопическое исследование по показаниям, определяли половые гормоны крови. Мужчины проходили обще клиническое и урологическое обследование, анализировалась сперм ограмма. проверяли уровень половых гормонов. Индукцию суп ер овуляции в циклах экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) осуществляли по стандартным протоколам [4].

Оплодотворение проводили в среде Fertilization medium (Fin) (SAGE) и оставляли на 18-20 часов в условиях инкубатора. На следующий день пересаживали в Cleavage medium (Cm) (SAGE) и оценивали качество эмбриона. На 3 день пересаживали в Blastocyst medium (Вт) (SAGE) и оценивали качество эмбриона, Пересадив эмбрион из чашки, среду забирали на исследование СРО.

Показатели свободнорадикальной активности измерялись методом регистрации хеми люминесценции (ХЛ) - свечения, возникающего при взаимодействии свободных радикалов, на хемилюминометре ХЛ-003 (Россия) [1]. В модельные системы, в которых инициировали образование свободных радикалов (АФК и перекисных радикалов липидов). добавляли ОД мл исследуемой среды.

По характеру изменения ХЛ судили о влиянии сред на СРО. Уровень продуктов перекисного окисления липидов (ПОЛ) в средах после культивирования эмбрионов определяли по содержанию малонового диальдегида (МДА) набором фирмы «Агат». Общую антиоксидантную активность (О А А) в этих же пробах определяли набором фирмы «Randox». Математическая обработка полученных результатов производилась с помощью программы Microsoft Excel 2000.

Результаты и обсуждение

Хеми люминесценция модельных систем, в которых вызывалось образование АФК и протекали реакций ПОЛ характеризуются следующими параметрами: спонтанным свечением, быстрой вспышкой в момент введения инициатора, латентным периодом, переходящим в медленную вспышку.

Вначале изучали влияние на СРО исходных сред (ИС). взятых до оплодотворения и культивирования эмбрионов. На рис. Представлено влияние сред на интенсивность ХЛ модельных систем. Исходные значения приняты за 100%. Добавление сред вызывает незначительное увеличение интенсивности ХЛ. связанной с образованием АФК. В то же время уровень ХЛ модельной системы, в которой протекают реакции ПОЛ. практически не меняется (рис.1).

Далее изучали изменение СРО в средах после оплодотворения и культивирования эмбрионов после 5 дней развития в программах ЭК О и интрацитоплазматнческой инъекции сперматозоида (ИКСИ).

120

Рш Сгп Вт

Рис.1 Соотношение светосуммы ИС в модельных системах, генерирующей АФК. и с протеканием ПОЛ (за 100% принята с вето сумма модельных систем)

Таблица 1. Показатели СРО в исследуемых средах до и после ЭКО и ИКСЫ

Среды ХЛ (100% - светосумма модельной системы) ОАА МДА

АФК ПОЛ

ЭКО:} ИКСЫ ЭКО ИКСИ ИС ЭКО* ИКСИ* ПС ЭКО* ИКСИ*

Б т 136 112 106 108 3.4= 0.09 2.4= 0.07 3,2± 0.05 0.09= 0.05 0.19± 0.04 0.13± 0.02

С ш 123 110 104 104 2.9= 0.06 2.1= 0.03 2,8± 0.07 0.11 = 0.03 0.21± 0.03 0.18± 0.03

В ш 115 111 102 101 2.6= 0.06 1.9= 0.06 2.5± 0.08 0.12= 0.05 0.23± 0.04 0.24± 0.07

Статистически достоверные различия (р<0.05) отмечены *

Из таблицы 1 видно, что после добавления сред к модельной системе, генерирующей АФК. с вето су мм а увеличилась, максимально в среде Бт. и практически не изменилась в модельной системе, в которой протекают реакции ПОЛ. Уровень ОАА после искусственного оплодотворения был максимальным в среде для оплодотворения и минимальным в среде для развития блас топнет (табл. 1). Уровень МДА после искусственного оплодотворения был минимальным в среде для оплодотворения и максимальным в среде д.ля развития бластоцист.

Разница между ЭКО и ИКСИ на клеточном уровне в том. что в случае ЭКО в чашке находится ооцит-кумулюсный комплекс, к которому добавляется несколько десятков тысяч сперматозоидов. В случае же ИКСИ кумулюсные

клетки удаляются путем декодирования, и в чашке находится о о пит. в который делают микроинъекцию одного сперматозоида.

Таким образом, выявлено, что среды, используемые при искусственном оплодотворении и культивировании, вызывают повышение интенсивности ХЛ в модельной системе, генерирующей АФК, и не влияют на реакции ПОЛ в модельной системе. После проведения искусственного оплодотворения все исследуемые среды увеличили интенсивность ХЛ в модельной системе, генерирующей АФК. максимально в среде Fm. Исследуемые среды не вызвали значимого изменения интенсивности ХЛ в модельной системе, в которой происходят реакции ПОЛ. После проведения искусственного оплодотворения влияние исследуемых сред на интенсивность ХЛ этой модельной системы практически не изменилось.

Уровень ОАА после оплодотворения в среде Fm оставался практически неизменным, а в остальных средах понижался. Уровень МДА после оплодотворения в средах для культивирования эмбрионов становился выше.

Выводы

Среды, используемые для оплодотворения и культивирования эмбрионов, при добавлении в модельные системы повышают интенсивность ХЛ. связанную с генерацией АФК. и не влияют на ХЛ. сопровождающую ПОЛ.

1. В процессе оплодотворения и культивирования эмбрионов повышается влияние исследуемых сред на ХЛ модельной системы, генерирующей АФК. и не меняется интенсивность ХЛ. сопровождающая ПОЛ.

2. В исследуемых средах после искусственного оплодотворения снижается уровень ОАА и повышается содержание МДА.

Список литературы

1. Фархутдинов P.P.. Громенко Д.С. Воздействие биофлафоноидов прополиса на процессы липопероксндации в гонадах крыс при интоксикации полихлор ир о в энными бифенилами // Вопросы питания. 2008. .Коб. С. 9-14.

2. Al-Gubory К.H., Fowler P.A., Gauel С. The roles of cellular reactive oxygen species, oxidative stress and antioxidants in pregnancy outcomes // Int. J. Biockem. Cell Biol. 2010. Vol. 42. P. 1634-1650.

3. Elder K„ Dale B. In vitro fertilization. M.. 2008.

4. Malíes liwari A.. Griffiths S.. В ha tta chary a S. Global variations in the uptake of single embryo transfer i i Human reproduction update. 2011. №1. P. 107120.

5. Tamiiia H.. Takasaki A. et al. Oxidative stress impairs oocyte quality and melatonin protects oocytes from free radical damage and improves fertilization rate 7 J. Pineal Res. 2008. Vol. 44. P. 280-287.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.