УСТРОЙСТВО ДЛЯ ЗАТРАВКИ МЕЛКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ ГИДРОЛИЗУЮЩИМИСЯ СОЕДИНЕНИЯМИ Текст научной статьи по специальности «Промышленные биотехнологии»

общий экстракт через хроматографическую колонку, заполненную окисью алюминия и безводным сернокислым натрием. Очищенный экстракт делят пополам и упаривают досуха, как указано выше.

При определении CPAS к сухому остатку прибавляют 1 мл этилового спирта и 2 мл свежеприготовленного 1% раствора а-нафтиламина в 50% уксусной кислоте. Тщательно перемешанный раствор ставят на кипящую водяную баню на 15 мин. Полученную окраску колориметрируют на ФЭК или сравнивают со шкалой стандартов.

Для определения ВСРЕ предлагается к сухому остатку прибавить 2 мл серной кислоты в разведении 3 : 1 и 0,2 мл свежеприготовленного 5% раствора парадиметиламинобензальдегида в серной кислоте (3 : 1) и раствор поместить на кипящую водяную баню на 15 мин. Полученную окраску сравнивают со шкалой стандартов или фотометрируют на ФЭК при зеленом светофильтре в кювете толщиной 5 мм. Чувствительность предлагаемого метода 1 мкг в анализируемом объеме.

Для приготовления стандартной шкалы навеску препарата подвергали описанной выше процедуре, затем готовили соответствующие разведения. Расчет результатов анализа производили обычным способом.

Выводы

1. Предложена методика извлечения мильбекса из воздуха, воды и почвы и дан метод химического определения 1,1- бис (4-хлорфенил) эталона, основанный на колориметрировании окрашенного продукта реакции взаимодействия его в парадиметиламинобензальдегидом в серной кислоте.

2. Чувствительность метода 1 мкг в анализируемом объеме. Степень извлечения 82—94%.

ЛИТЕРАТУРА

f •

Венгерская X. Я., Зелинская О. В., С е р е б р я к о в Г. А. Гиг. и сан., 1969, No. 11, с. 66.—Gunther F. А., В 1 i n n R. С., J. agricult. Food Chem., 1957, v. 5, p. 517.

Поступила 27/1 1970 г.

УДК 57:081.1

устройство для затравки мелких лабораторных

животных гидролизующимися соединениями

Г. Г. Максимов

Научно-исследовательский институт гигиены и профзаболеваний Министерства здравоохранения РСФСР, Уфа

При изучении токсических свойств промышленных ядов в эксперименте на животных важным условием является моделирование производственной среды, в которой находится человек в процессе трудовой деятельности. С указанной целью предложены различные по конструкции и специальному назначению затравочные камеры (И. В. Саноцкий и соавт.; В. Г. Диль; Б. Ю. Калинин и Е. Н. Комарова; В. Е. Шнабель и соавт., и др.).

Одним из оригинальных представляется способ затравки подопытных животных различными по агрегатному состоянию химическими продуктами путем индивидуальной подачи их в зону дыхания каждого животного. Указанный принцип положен в основу конструкции затравочной камеры А. А. Голубева, используемой в практике промышленных токсикологов при изучении химических соединений, подвергающихся в обычных условиях гидролитическому превращению. По замыслу авторов (Н. Ш. Вольберг и А. А. Голубев), равномерное распределение исследуемого вещества при

3 Гигиена и санитария Nb 6

65

динамическом режиме затравки животных осуществляется путем подачи его через систему капилляров одинакового сечения, что оправдывает отбор проб воздушной смеси для химического анализа в общем потоке до его распределения к отдельным животным. Однако в ряде случаев получить указанным способом одинаковые концентрации в зонах дыхания каждого животного не удается. При затравке животных высокими концентрациями хлорангидрида трихлоруксусной кислоты (ХАТУ), легко гидролизующего-ся в обычной атмосфере, даже при условии подачи исследуемого соединения в потоке осушенного воздуха отмечается отложение продуктов его гидролиза (трихлоруксусная кислота) на стенках капилляров, что, естественно, изменяет их аэродинамические свойства и нарушает равномерное распределение вещества между животными (Г. Г. Максимов). Следует отметить, что при отравлении животных на уровне порога раздражающего действия концентрации ХАТУ в отдельных зонах дыхания также отличались до 2—3 раз. В связи с этим для определения фактических концентраций ХАТУ в зонах дыхания животных проводили индивидуальный химический контроль за составом воздушной смеси.

С учетом указанных замечаний мы предлагаем усовершенствованный вариант затравочной камеры (см. рисунок). Одинаковый уровень концентраций химических соединений в зонах дыхания животных достигается регулированием посредством зажимов (13) скорости воздушного потока в каждом патрубке 14. Индивидуальный химический контроль за составом воздушной смеси осуществляется путем отбора проб непосредственно из зоны дыхания каждого животного через специальные патрубки 11.

Рекомендуемый вариант затравочной камеры в отличие от ранее предложенного позволяет производить эксперименты на животных различных весовых групп, что особенно важно при хроническом отравлении животных, за период которого они значительно увеличиваются в объеме. С этой целью капсулы для животных 4 укомплектованы набором съемных изогнутых пластин 5, изменяющих внутренний размер капсулы. При подготовке камеры к затравке в каждую капсулу подбирают соответствующие объему животных пластины, которые по мере необходимости могут быть заменены другими. Крепление пластин осуществляется подвижной задней стенкой 6, прижимающей пластину к головному концу камеры, а также специальными выступами на подвижной стенке (расположены соответственно высоте каждой пластины), ограничивающими подвижность пластин в вертикальном направлении.

Конструкция камеры предусматривает расположение капсул по 6 штук в каждом ряду. Дополнительная горизонтальная перегородка 16,

7 8

Камера для затравки мелких животных гид-ролизующимися соединениями с одновременной регистрацией биологических показателей.

/ — боковая проекция камеры с сечением по а — а; 2 — задняя съемная стенка камеры, закрывающаяся герметично; 3 — внутренняя перегородка; 4 — капсулы для животных; 5 — вставные пластины (для наглядности на схеме изображена одна); 6 — подвижная стенка капсулы; 7 — токопрово-дящие пластины; 8 — упорное кольцо; 9 — термобатарея в верхней половине центрального отверстия головного конца капсулы; 10 — передняя съемная стенка камеры, закрывающаяся герметично; 11— патрубок для отбора проб воздуха; 12— воронки, охватывающие головной конец капсулы: 13 —переходные трубки с регулируемым просветом; 14 — стеклянные отростки; 15 — распределительные гребенки; 16 — горизонтальная дополнительная перегородка; 17— распределительный щиток, соединяющий металлические проводники от термопар и токопроводящих пластин каждой капсулы; 18 — патрубки для отсоса воздуха из каждого отсека камеры.

разделяющая камеру на верхний и нижний отсеки, позволяет проводить затравку одновременно двумя различными концентрациями, что представляется удобным при установлении параметров токсикометрии в однократном опыте (СЬ50, 1-лтас, Ыт^). Общее количество животных (12), помещаемых в камеру, вполне достаточно для проведения и хронических экспериментов.

Контроль за герметичностью камеры проводится по водяному манометру. Для определения температуры и влажности воздуха в затравочной камере предусмотрено крепление для психрометра и термометра.

Указанные конструктивные разработки с учетом ранее внесенных дополнений методического характера, обеспечивающих регистрацию частоты дыхания 9, ЭКГ и других биопотенциалов 7 животных во время их затравки (Г. Г. Максимов), позволят шире использовать рекомендуемое устройство в практике токсикологической оценки промышленных ядов, подвергающихся гидролизу.

ЛИТЕРАТУРА

Вольберг Н. Ш., Голубев А. А. Гиг. труда, 1966, № 12, с. 49. — Голубев А. А. В кн.: Материалы Научной конференции, посвящ. вопросам гигиены труда, промышленной токсикологии и профессиональной патологии в нефтяной и нефтехимической промышленности. Баку, 1966, с. 130.—Диль В. Г. Гиг. труда, 1962, № 12, с. 49. — Калинин Б. Ю., Комарова Е. Н. Сан. и гиг., 1965, № 6, с. 65. — Максимов Г. Г. В кн.: Гигиена труда и охрана здоровья рабочих в нефтяной и нефтехимической промышленности. Уфа, 1968, т. 4, с. 87. —Он же. Гиг. труда, 1969, № 6, с. 47. — Шнабель В. Е., Кислюк Е. Н., Бройтман А. Я, В кн.: Токсикология высокомолекулярных материалов и химического сырья для их синтеза. М.— Л., 1966, с. 337. — Матюхин Н. Я.Высоцкий Г. П. В кн.: Материалы 2-й Конференции по изобретательству и рационализации в медицине. Л., 1969, с. 8.

Поступила 23/11 1970 г.

УДК 614.4:519.21

к методике оценки эффективности санитарно-

пропускного режима

В. И. Солдатенков, В. Т. Хрущ

Институт биофизики Министерства здравоохранения СССР, Москва

Обычно при определении условий санитарно-пропускного режима довольно объективно установить необходимость всех организационно-технических мероприятий; основную роль в этом играют главным образом не количественные оценки и объективность, а волевое решение того или иного руководителя или инспектирующего лица.

В настоящей работе, которая является первой из серии статей, посвященных данному вопросу, предлагается объективная, на наш взгляд, оценка эффективности санитарно-пропускного режима. Статья построена таким образом, что используемые в ней формулы и метод в одинаковой степени применимы и к продукту типа радиоактивного изотопа, и к вирусной культуре, и к химическому агенту и т. д. Эффективность санитарно-пропускного режима рекомендуется оценивать следующим образом.

Пусть уровни загрязнения поверхности для N единичных участков, наблюдаемых на области обследования у, имеют значения , ,..., ¿7^, а вероятность р1 получить значение на области у выражается в виде функции р (д: ), где ! пробегает значения от 1 до N. Тогда в соответствии с опреде-

3*

67