4. Г о л о в и н а, Н. А. Ихтиопатология / Н. А. Головина, О. Н. Бауер. - М: Мир, -2007. - 448 с.
5. Д р а г а н, Л. П. Влияние вируса инфекционного панкреатического некроза на процессы перекисного окисления липидов в печени рыб / Л. П. Драган // Материалы Международной конференции «Актуальные вопросы рыбного хозяйства и аквакультуры бассейнов южных морей России» Ростов на Дону, - 2014. - С. 28-31.
6. Д р а г а н, Л. П. Состояние антиоксидантной системы карпа (Cyprinus carpió) при инфицировании вирусом весенней виремии / Л. П. Драган, Н. Н. Матвиенко // Международный научно-исследовательский журнал. - Екатеринбург, - 2014. - № 6 (25). - Ч. 1. - С. 26-27.
7. Д у б и н и н а, Е. Е. Активность и изоферментный спектр супероксиддисмутазы эритроцитов / Е. Е. Дубинина, Л. Ф. Сальникова // Лабораторное дело. - 1983. - N° 10 - С. 30-33.
8. З е н к о в, Н. К. Окислительный стресс. Биохимический и патологический аспекты / Н. К. Зенков, В. З. Ланкин, Е. Б Меньшикова. - М.: МАИК, - 2001. - 343 с.
9. К о р а б е й н и к о в а, С. Н. Модификация выделения продуктов перекисного окисления липидов в реакции с ТБК / С. Н. Корабейникова // Лабораторное дело. - 1989. -№ 7. - С. 8-9.
10. К о р о л ю к, М. А. Метод определения активности каталазы / М. А. Королюк, И. Г. Майорова, В. Е. Токарев // Лаборное. дело. - 1988. - № 1 - С. 16-18.
11. П е т р о в а, Г. В. Витамин Е и апоптоз / Г. В. Петрова, А. А. Капралов, Г. В. До-нченко // Укр. бюх1м.журн. - 2003. - Т. 75. - № 6. - С. 25-34.
12. Р е ц к и й, М. И. Значение антиоксидантного статуса в адаптивной гетерогенности и иммунологической резистентности животных / М. И. Рецкий, В. С. Бузлама,
A. Г. Шахов // Ветеринарная патология. - 2003. - № 2. - С. 63-65.
13. С т а л ь н а я, И. Д. Метод определения диеновой конъюгации ненасыщенных высших жирних кислот / И. Д. Стальная // Современные методы в биохимии / под ред.
B. Н. Ореховича. - М.: Медицина, - 1977. - С. 63-64.
14. Т у ш н и ц ь к а, Н. Й. 1мунний статус коропа при захворюванш асоцшованою формою краснухи / Н. Й. Тушницька, Н. М. Матвieнко, В. Г. Янович // Бюлопя тварин. -2006. - Т. 8. - № 1-2. - С. 251-254.
15. A h n e, W. Studies on the transmission of infectious pancreatic necrosis virus via eyed eggs and sexual products of salmonid fish / W. Ahne, R. D. Negele // In: Ellis, A.E. (Ed.), Fish and Shellfish Pathology. London: Academic Press, - 1985. - Р. 262-270.
УДК 636.087.7:636.087.416
СТИМУЛЯЦИЯ ЕСТЕСТВЕННОЙ РЕЗИСТЕНТНОСТИ РЕМОНТНОГО МОЛОДНЯКА КУР ПРИРОДНОЙ АМИНОКИСЛОТОЙ
И. Б. ИЗМАЙЛОВИЧ УО «Белорусская государственная сельскохозяйственная академия», г. Горки, Могилевская обл., Республика Беларусь, 213407
M. В. ЛИС
«Университет сельского хозяйства в Кракове», г. Краков, Польша, 30-059
(Поступила в редакцию 31.01.2015) 67
Введение. Среди всех протеиногенных аминокислот незаменимыми для кур определено 12: лизин, метионин, цистин, триптофан, аргинин, гистидин, лейцин, изолейцин, фенилаланин, тренин, валин, а для молодняка еще и глицин. Сбалансировать же рацион по незаменимым аминокислотам за счет естественной кормовой базы практически невозможно. Поэтому решение проблемы полноценного белкового питания птицы неразрывно связано с созданием синтетических аналогов незаменимых аминокислот. Однако из-за не освоенных сегодня человеком высоких технологий синтеза всех аминокислот ведущие животноводческие фирмы промышленно развитых стран используют в рационах только 4: лизин, метионин, треонин и триптофан. Синтезировать же все незаменимые аминокислоты и создать «идеальный» белок - дело дорогостоящее и пока нерентабельное.
Анализ источников. Для нужд животноводства Республики Беларусь эти препараты в различных количествах закупаются за рубежом. Вместе с тем для импортозамещения метионина и треонина в последнее время появились определенные перспективы. Так, сотрудниками физико-органической химии АН Беларуси получен продукт микробиологического синтеза Ь-гомосерин [1, 2]. Гомосерин является аминокислотой, которая не входит в состав белков человека и животных. У растений и микроорганизмов она является промежуточным продуктом, образующимся в процессе биосинтеза метионина и треонина [3, 5]. В медицине по наличию гомосерина определяют важнейший показатель биохимии печени человека - метиониновый обмен [4]. Поступая в организм с кормом эта природная аминокислота в процессе переаминирования может являться предшественником метионина и треонина.
Полученный препарат Ь-гомосерина представляет собой порошкообразный кормовой продукт коричневого цвета с 7,5 % концентрацией активного вещества в наполнителе (пшеничные отруби). В этом конгломерате, кроме аминокислоты, содержится в среднем: сырого протеина 26 %, обменной энергии 837 кДж, сырого жира 2,5 %, незначительное количество витаминов группы В, макро- и микроэлементы. Поэтому изучаемый препарат получил название «аминокислотная кормовая добавка Ь-гомосерин». Процесс достижения высокой степени очистки аминокислоты очень длительный и трудоемкий, поэтому на первых этапах испытания выкристаллизовывать аминокислоту не планировалось.
Цель работы - изучить эффективность использования новой аминокислотной кормовой добавки Ь-гомосерина как стимулятора естественной резистентности ремонтного молодняка кур и уточнить оптимальную норму ее включения в рационы для импортозамещения метионина.
68
Материал и методика исследований. Объектом исследований явились ремонтные курочки кросса «Хайсекс белый» с суточного до 110-дневного возраста. Содержали птицу в трехъярусных универсальных клеточных батареях КБУ-3 без пересадок в одинаковых условиях температурно-влажностного и светового режимов. Научное обоснование норм включения гомосерина осуществляли на фоне полнорационных комбикормов, сбалансированных по широкому комплексу питательных и биологически активных веществ (кроме метионина+цистин) в соответствии с руководством «Классификатор сырья и продукции комбикормовой промышленности Беларуси» (2010 г.), с трехфазовой сменой рационов: в возрасте 0-5 недель комбикорм рецепта ПК-2-1, в возрасте 5-10 недель - ПК-2-2, в возрасте 10 недель и до конца выращивания - ПК-3. Рецепты комбикормов представлены в табл. 1.
Т а б л и ц а 1. Рецепты комбикормов для ремонтного молодняка кур
Компоненты Рецепт комбикорма
ПК-2-1 ПК-2-2 ПК-3
1 2 3 4
Пшеница 16 30 34
Кукуруза 47 45 28
Ячмень шелушенный 9 4 17
Шрот соевый 8 6 8
Шрот подсолнечниковый 4 5 1
Мука рыбная 5,0 4,3 -
Мука мясо-костная - - 4
Дрожжи кормовые 3 4 3
СОМ 5 - -
Масло растительное 1 - 3
Мел кормовой 0,5 0,4 0,5
Соль поваренная 0,2 0,1 0,2
Фосфат обесфторенный 0,3 0,2 0,3
Премикс 1,0 1,0 1,0
Содержится в 100 г комбикорма, %
Обменной энергии, кДж 1210 (1213)** 1185(1184) 1160 (1163)
Сырого протеина, % 19,3 (19,5) 17,6 (17,5) 14,9 (15,0)
Сырого жира 3,0 (2,9) 2,3 (2,1) 2,5 (2,6)
Сырой клетчатки 3,7 (3,5) 3,9 (4,0) 6,2 (6,0)
Лизина 1,05 (1,05) 0,96 (0,95) 0,71 (0,72)
Метионин+цистин 0,7 (0,8)* 0,66 (0,75)* 0,46 (0,56)*
Триптофана 0,21 (0,20) 0,16 (0,17) 0,14 (0,15)
Треонина 0,93 (0,94) 0,86 (0,85) 0,81 (0,80)
Аргинина 1,44 (1,47) 1,41 (1,32) 1,10 (1,09)
Глицина 1,22 (1,25) 1,17 (1,20) 1,15 (1,14)
Линолевой кислоты 1,10 (1,11) 1,30 (1,28) 1,22 (1,21)
О к о н ч а н и е т а б л. 1.
1 2 3 4
Са 1,0 (1,0) 1,1 (1,0) 1,1 (1,0)
Р 0,9 (0,8) 0,8 (0,7) 0,8 (0,6)
На 1 т комбикорма добавлено:
Витамины: А, млн. МЕ 10,0
Д3, млн. МЕ 2,0
Е, г 5,0
Кз, г 1,0
В1, г 1,0
В2, г 3,0
Вз, г 20,0
В4, г 245,0
Вз, г 20,0
В12, г 0,02
Микроэлементы:
железо, г 10,0
медь, г 2,5
цинк, г 50
марганец, г 70
кобальт, г 0,5
йод, г 0,7
Примечание: * дефицит метионин+цистин; ** - в скобках указана норма.
Комбикорма были дефицитны по метионину+цистин на 0,1 %. Научно-хозяйственный опыт проводили по схеме, представленной в табл. 2.
Т а б л и ц а 2. Схема опыта
Группы Количество голов Особенности кормления
1-я контрольная 100 ОР* + 0,1 % метионина
2-я опытная 100 ОР + 0,1 % L - гомосерина
3-я опытная 100 ОР + 0,2 % Ь - гомосерина
4-я опытная 100 ОР + 0,3 % Ь - гомосерина
Примечание: * ОР - основной рацион.
В контрольной группе дефицит метионина+цистин в количестве 0,1 % предусмотрено компенсировать синтетическим метионином, во второй группе восполнять недостаток метионин+цистина равным по биологической активности количеством гомосерина (0,1 %), в третьей -
70
на 0,1 п. п. выше нормы метионин+цистина и в четвертой группе -выше нормы на 0,2 п. п.
Результаты исследований и их обсуждение. Нормированное кормление и правильная подготовка молодняка к началу яйцекладки -важнейшие условия дальнейшей высокой продуктивности кур-несушек. Большую роль в направленном выращивании играет уровень кормления, ограничивающий поступление питательных веществ в организм. Снижение содержания в рационе энергии и протеина позволяет предупредить преждевременное половое созревание и раннюю яйцекладку, обеспечивает нормальный рост и своевременное развитие будущих несушек, подготавливает птицу к высокой физиологической нагрузке продуктивного периода. На этом принципе была разработана и применена программа ограниченного кормления молодняка.
Учет расходования кормов осуществляли по группам. Живая масса курочек при этом выглядела следующим образом (табл. 3).
Т а б л и ц а 3. Живая масса ремонтного молодняка, г (Х±т)
Группы 30 дней % к 60 дней % к конт- 110 дней % к
1-я 273,6±5,4 - 669,3±13,4 - 1209,7±21,2 -
2-я 271,4±6,1 99,2 660,8±11,6 98,7 1201,3±21,3 99,3
3-я 289,2±6,3 105,7 718,2±12,9 107,3* 1279,4±22,1 105,7*
4-я 281,1±6,0 102,7 687,1±13,5 102,6 1233,5±25,7 101,9
Примечание: здесь и далее * Р>0,05.
В суточном возрасте живая масса всех групп цыплят, сформированных по принципу групп-аналогов, была 36-37 г. В дальнейшем интенсивность роста курочек дифференцировалась следующим образом (табл. 3). В 30-дневном возрасте цыплята второй группы, в рацион которых включался гомосерин в равных по биологической активности с нормой метионина, несущественно отставали в росте от контрольной группы на 0,8 %. Наибольшей скоростью роста отличался молодняк третьей группы, живая масса которого была выше, чем в контроле на 15,6 г, или на 5,7 %, но эта разница не подтверждена статистической обработкой данных (Р>0,05). Цыплята 4-й группы по сравнению с третьей росли менее интенсивно и превосходили по живой массе контроль на 7,5 г, или на 2,7 %. В дальнейшем, в 60-дневном возрасте преимущество в живой массе молодняка третьей группы оказалось более существенным - на 48,9 г (107,3 %). В четвертой же группе живая мас-
71
са молодняка была выше контрольной на 17,8 г, или на 2,6 % при статистически недостоверной разнице.
В конце выращивания сохранилась та же тенденция интенсивности роста ремонтного молодняка, т. е. по-прежнему цыплята второй группы отставали от контрольной на 8,4 г, или на 0,7 %, третья группа доминировала над контрольной на 69,7 г, или на 5,7 % при статистически достоверной разнице (Р<0,05). Молодняк четвертой группы превосходил по живой массе контроль на 23,8 г, или на 1,9 % при статистически не достоверной разнице (Р>0,05).
При лимитированном кормлении ремонтных молодок затраты кормов на прирост 1 кг живой массы в третьей группе оказались самыми низкими, ниже контроля на 6,5 %, а прирост живой массы выше на 5,7 %.
Естественно, что повышение интенсивности роста птицы параллельно со снижением затрат кормов на прирост живой массы является следствием изменения обмена веществ в организме. Скоординирован-ность биосинтетических процессов в организме птицы проявляется на всех уровнях метаболизма, в том числе и в морфо-биохимическом составе крови. Как свидетельствуют результаты наших исследований, различные источники и дозы препаратов в своеобразной степени эффективности оказывают положительное влияние на гематологические показатели, обеспечивая при этом соответствующую наполненность и реализацию биоресурсного потенциала молодняка. По содержанию эритроцитов, лейкоцитов и по насыщенности эритроцитов гемоглобином в крови цыплят всех групп отклонений от физиологической нормы не установлено. Тем не менее анализ гемодинамики по периодам выращивания показал, что в 30-дневном возрасте в крови цыплят 3-й группы концентрация эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина была достоверно выше, чем в контроле на 10,3; 6,5 и 6,1 % соответственно (Р>0,05). В конце выращивания в крови молодока 3-й группы содержание эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина превышало их наличие в контрольной группе соответственно на 4,6; 8,5 и 5,8 % (Р>0,05).
Имея в виду, что ни одно вещество биологического происхождения не имеет столь огромного значения и не обладает такими многогранными функциями как белок, нами было изучено содержание белка и белковых фракций в сыворотке крови (табл. 4).
Функциональную неравнозначность метаболитов белкового состава крови контрольной и опытных групп ремонтного молодняка можно оценивать не только по содержанию общего белка, но и по спектру белковых фракций в сыворотке крови.
Т а б л и ц а 4. Протеинограмма ремонтного молодняка кур, (Х±т)
Показатели Группы
1 | 2 | 3 | 4
В 30 дней
Общий белок, г/л 29,7±1,02 28,3±1,11 32,1±1,10 30,3±1,21
Альбумины, % 34,1±1,05 33,4±0,92 39,7±1,01 35,4±0,97
Глобулины, % : а 19,9±0,61 19,5±0,49 20,0±0,72 19,8±0,66
в 24,1±0,73 25,8±0,67 25,1±0,73 23,5±0,72
У 21,9±0,50 21,3±0,44 24,2±0,56 21,3±0,47
Иммуноглобулины: LgG 12,1±0,27 12,0±0,19 13,9±0,11 12,0±0,28
LgA 7,4±0,14 6,7±0,13 8,1±0,15 6,7±0,21
LgM 2,4±0,09 2,6±0,09 2,2±0,07 2,6±0,10
B 60 дней
Общий белок, г/л 34,6±1,10 34,8±1,22 38,7±1,11* 35,0±1,12
Альбумины, % 40,2±1,12 39,6±1,16 42,8±1,13 39,8±1,07
Глобулины, % : а 23,5±0,67 23,9±0,64 20,6±0,55 22,9±0,57
в 21,6±0,54 21,7±0,49 21,3±0,39 22,7±0,41
У 14,7±0,33 14,8±0,28 15,3±0,36 14,6±0,32
Иммуноглобулины: LgG 8,2±0,10 7,9±0,13 8,7±0,12* 8,6±0,10*
LgA 4,5±0,11 4,8±0,09 4,5±0,07 4,5±0,13
LgM 2,0±0,09 2,1±0,07 2,1±0,05 2,0±0,10
B 110 дней
Общий белок, г/л 42,1±1,12 41,6±1,08 46,3±1,12* 43,1±1,10
Альбумины, % 44,6±1,35 43,3±1,27 45,7±1,34 44,0±1,23
Глобулины, % : а 20,2±0,56 21,2±0,59 21,3±0,57 20,6±0,47
в 17,0±0,47 17,4±0,38 13,5±0,36 17,1±0,42
У 18,2±0,32 18,1±0,44 19,5±0,38 18,3±0,45
Иммуноглобулины: LgG 11,4±0,18 11,3±0,21 12,5±0,17* 11,5±0,19
LgA 5,6±0,13 5,6±0,12 5,9±0,14 5,6±0,11
LgM 1,2±0,09 1,2±0,09 1,1±0,07 1,2±0,08
Так, в наших исследованиях через 30 дней после начала опыта была установлена тенденция значительного повышения концентрации общего белка (на 2,0-8,0 %) и альбуминов (на 3,8-16,4 %) в 3-й и 4-й группах, в комбикорм которых включалось более высокое по отношению к норме (на 0,1 и 0,2 п. п.) количество гомосерина. Во 2-й группе молодняка, в комбикорм которого вводили количество гомосерина, равное по биологической активности с метионином, наблюдалось незначительное снижение интенсивности белкового обмена. Но ни в пе-
73
рвом, ни во втором случаях межгрупповые различия не были подтверждены биометрической обработкой данных.
Через два месяца с начала опыта нами выявлено достоверное увеличение общего белка в сыворотке крови молодняка третьей группы (на 11, 8 %) и иммуноглобулинов класса LgG (на 6,0 %). Эта группа глобулярных белков самая многочисленная, защищает легочные и желудочно-кишечные пути от инфекции (главные ворота проникновения антигенов), а также играет определенную роль в аллергических реакциях организма.
В конце выращивания в 110-дневном возрасте окончательно закрепилась проявившаяся ранее тенденция доминирования протеинсинте-тических реакций в организме ремонтного молодняка 3-й группы: концентрация общего белка в сыворотке крови была выше, чем в контрольной на 9,9 % и иммуноглобулина класса LgG - на 9,6 % (Р<0,05). Эти данные дают основание утверждать о положительном влиянии гомосерина на укрепление естественной резистентности организма.
Среди наиболее значимых и доступных для изучения критериев, отражающих способность организма противостоять антигенам, являются клеточные и гуморальные факторы защиты. Мы в своих исследованиях изучали механизмы иммунной защиты организма посредством клеточных и гуморальных факторов (табл. 5).
Т а б л и ц а 5. Клеточные и гуморальные факторы защиты организма, (Х±т)
Показатели Группы
1 2 3 4
В 30 дней
Фагоцитарная активность, % 51,2±1,03 51,0±1,18 53,4±1,16* 52,3±1,12
Лизоцимная активность, % 16,1±0,96 17,3±0,89 19,8±1,01* 18,0±1,02
Бактерицидная активность,% 43,2±1,14 43,1±1,12 46,9±1,27 44,4±1,23
В 60 дней
Фагоцитарная активность, % 52,0±1,14 51,1±0,98 56,2±1,17* 55,1± 1,14
Лизоцимная активность, % 19,5±1,01 20,6±1,00 23,4±1,11* 22,3±1,15
Бактерицидная активность, % 45,7±1,12 44,9±1,24 50,3±1,33* 47,1±1,30
B 110 дней
Фагоцитарная активность, % 54,7±1,17 53,3±1,43 60,2±1,54* 59,5±1,40*
Лизоцимная активность, % 23,6±1,13 22,9±1,09 27,8±1,19* 25,4±1,17
Бактерицидная активность, % 50,1±1,12 49,6±1,02 54,3±1,14* 52,0±0,98
Из данных табл. 5 видно, что во все периоды выращивания ремонтных молодок интенсивность резервирования защитных сил, выраженная в критериях фагоцитарной активности лейкоцитов, лизоцимной и бактерицидной активности сыворотки крови в организме цыплят 3-й группы была достоверно выше, чем в контроле. Показатели цыплят 2-й группы по активности уступали контролю, а четвертой группы -незначительно (за исключением фагоцитарной активности) превалировали как над контрольной, так и над второй опытной группами. Таким образом, более высокая и статистически достоверная активность изученных клеточных и гуморальных факторов защиты организма указывают на положительное влияние гомосерина на повышение естественной резистентности организма птицы.
В этой связи большой интерес представляет изучение признаков, характеризующих развитие центральных органов иммунной системы ремонтного молодняка. Как известно, лимфоидные органы птиц по степени функциональной активности и значимости в развитии иммунного ответа подразделяются на первичные, или центральные, и вторичные, или периферические. К центральным органам иммунитета птицы относят эмбриональный желточный мешок, костный мозг, тимус и фабрициеву сумку. К периферическим лимфоидным органам птицы относятся селезенка, лимфоидные узлы слепых отростков, гардерова железа, скопления лимфоидных элементов гортани, глотки, бронхов, кишечника и других органов.
Тимус у птиц начинает функционировать на 10-е сутки эмбрионального развития. В нем образуются Т-лимфоциты, которые, поступая в селезенку и другие лимфотические образования, приобретают способность стимулировать В-лимфоциты, продуцирующие специфические антитела (lgM, lgG, lgA) против антигена.
Фабрициева сумка, как лимфоидный орган у птиц, интенсивно развивается в первые недели жизни, а при наступлении яйцекладки, когда значительно повышается содержание половых гормонов, постепенно редуцируется.
Как свидетельствуют массометрические параметры развития центральных органов иммунной системы подопытных цыплят, то в этих константах наблюдалась та же тенденция преимущества опытных групп перед контрольной, что и в предыдущих показателях метаболических процессов: эритро- и гемопоэза, белкового обмена, клеточных и гуморальных факторов защиты организма. Индекс тимуса превышал
75
контроль на 13,0 % и фабрициевой сумки на 11,1 %, но разница была статистически недостоверна.
Иммунная защита является уникальной эволюционно выработанной функциональной возможностью противостояния организма действию агрессивных факторов внешней среды. И не только внешним стрессорным агентам, но и внутренним. В молодом растущем организме в процессе расщепления жиров, белков и углеводов образуются продукты окисления: свободные радикалы и перекисные соединения. Для их нейтрализации в организме существуют антиоксидантные защитные механизмы, т. е. все окислительно-восстановительные реакции в живых клетках в норме уравновешиваются активностью соответствующих энзиматических процессов - первые способствуют окислению, а вторые сдерживают интенсивность этих процессов, обеспечивая гомеостаз.
В своих опытах мы преследовали цель выяснения возможного участия гомосерина в активизации ферментативного звена антиоксидант-ной системы.
Этот метод тестирования защитных сил организма по активности прооксидантной и антиоксидантной ферментативных звеньев регуляции гомеостаза показал, что гомосерин наряду со стимуляцией развития центральных органов иммуногенеза, клеточных и гуморальных факторов защиты организма индуцирует экспрессию генов антиокси-дантных энзимов. Причем проявление активности антиоксидантных ферментов зависит от дозы вводимого в комбикорм препарата. В наших исследованиях гомосерин в дозе превышающей норму метионина на 0,1 п. п. стимулировал активность антиоксидантных ферментов 4,616,7 % при одновременном ингибировании активности прооксидантов на 4,4-13,3 %.
Заключение. Исследованиями установлено, что энзиматический метаболизм гомосерина в метионин в организме ремонтного молодняка кур по влиянию на естественную резистентость, жизнеспособность и продуктивность птицы эффективен и презентабелен на импортоза-мещение при использовании его в рационах в количестве превышающем на 0,1 п. п. норму метионина.
ЛИТЕРАТУРА
1. И з м а й л о в и ч, И. Б. Новые продукты биотехнологии в кормлении птицы / И. Б. Измайлович // Труды Всероссийского НИИ ветеринарной энтомологии и арахнологии. - Тюмень. - 2013. - С. 81-83.
2. И з м а й л о в и ч, И. Б. Метаболизм небелковой аминокислоты в организме цыплят-бройлеров / И. Б. Измайлович // Аграрная наука сельскому хозяйству: сб. статей VIII Междунар. науч.-практ. конф. - Барнаул. - 2013. - С. 171-173.
3. К а з к е н о в а, Г. Т. Содержание незаменимых аминокислот в яйце кур кросса Родонит-2 / Г. Т. Казкенова // Ученые записки Казан. гос. акад. вет. медицины им. Н. Э. Баумана. - 2011. - № 6. - С. 207.
4. К а л ь н и ц к и й, Б. Д. Минеральные вещества в кормлении животных / Б. Д. Кальницкий. - М.: Агропромиздат, 1985. - 207 с.
5. Л и н д с е й, Д. В. Аминокислоты как источник энергии / Д. В. Линдсей // Белковый обмен и питание. - М.: Колос, 1980. - С. 129-138.
6. М а й с т е р, А. Биохимия аминокислот / А. Майстер. - М.: Изд-во иностр. лит. -1985. - 367 с.
7. Способ оценки состояния печени пациента / Ин-т молекулярной генетики РАН: Пат. RU 2089914, 1998.
8. D' M e l l o, J. P. F. Amino acids in animal nutrition / J. P. F. D'Mello // Wallingfard; Cambridg: CABI Publishing. - 2003. - 513 p.
УДК 636.52/58.034
КАЧЕСТВО ЯИЦ И ПРОДУКТИВНОСТЬ КУР КРОССА «БЕЛАРУСЬ АУТОСЕКСНЫЙ»
И. П. КУРИЛО РУП «Опытная научная станция по птицеводству», г. Заславль, Минская обл., Республика Беларусь, 223036
(Поступила в редакцию 02.02.2015)
Введение. В настоящее время в мировом сообществе птицеводство развивается бурными темпами. Это связано с высокой питательностью и диетической ценностью как мяса птицы, так и яиц. Второй особенностью следует считать более низкие цены на продукты птицеводства. По конверсии кормового белка в белок содержимого яйца (22 %) и в белок мяса бройлеров (17,5 %) птица значительно опережает другие отрасли животноводства [1].
Для повышения эффективности работы отрасли птицеводства необходимо наращивание объемов производства продукции за счет использования созданной конкурентоспособной птицы собственной селекции с высоким потенциалом продуктивности для высокоинтенсивных экономичных технологий ее содержания [4-6].
Анализ источников. В яичном птицеводстве достигнут значительный селекционный прогресс. Результаты многочисленных конкурсных испытаний свидетельствуют о том, что генетический потенциал яич-
77