CC BY
6
Затем этот плод опускали в чашки Петри, предварительно заполненную подогретой до 37 °С дистиллированной водой (45 мл) с добавлением 1 капли 0,05 % строфантина и через 30 с вторично регистрировали ЭКГ. Указанным способом можно снять ЭКГ у 2—3 плодов от каждой самки при условии, что все действия экспериментатора будут четкими и быстрыми.
На ЭКГ эмбрионов, подвергавшихся строфан-тиновой нагрузке, отмечалось значительное (на 50—250 %) увеличение вольтажа зубцов Р, Т, 5, комплекса (¿ДБ по сравнению с исходными данными, что позволяло без затруднений н вспомогательных средств измерить электрические циклы сердца плодов.
Следует отметить, что ряд исследователей [1, 2] снимали ЭКГ эмбрионов белых крыс после внутрибрюшинного введения им прозерина, но
при этом были зафиксированы только изменения длительности интервалов Р—Q, Q—Т и R—R * при неизменной высоте ее зубцов.
Проникновение же строфантина через кожный покров плодов белых крыс обусловливало увеличение всех зубцов и интервалов ЭКГ.
Таким образом, применение строфантина при регистрации ЭКГ эмбрионов белых крыс позволяет улучшить качество записи, а следовательно, и расшифровки электрических циклов сердца, выявить скрытые патологические изменения, установить их гигиеническую значимость и дать более четкую токсикологическую характеристику изучаемых веществ.
Литература. I. Попова О. А., Перетолчина Н. М,—
Гиг. и сан., 1976, № 2, с. 109—111. 2. Силаев А. Л, —Там же, 1974, № 8, с. 63—65.
Поступила 23.09.83
УДК 613.632.4-074:66.028
A. J1. Перцовский, В. И. Синицына
СПОСОБ ДОЗИРОВАНИЯ МИКРОКОЛИЧЕСТВ ПАРОВ ЛЕТУЧИХ
ВЕЩЕСТВ
Белорусский научно-исследовательский санитарно-гигиенический институт, Минск
В литературе описан целый ряд методов приготовления микроконцентраций паров летучих веществ [1—4]. Однако эти методы часто требуют сравнительно сложного оборудования, не всегда обеспечивают точность определения количества дозируемого вещества, мало пригодны либо совершенно непригодны для точного дозирования смеси летучих веществ или летучих веществ, находящихся в твердом агрегатном состоянии.
Мы предлагаем способ дозирования микроколичеств паров летучих веществ, заключающийся в следующем. Точный объем (обычно 2—3 мкл) чистого эталонного вещества (или смеси веществ) либо раствора эталонного вещества в подходящей нелетучей жидкости вводят микрошприцем в переднюю часть капилляра (внутренним диаметром 0,5—0,8 мм), постепенно расширяющегося к противоположному концу в виде пипетки 1 (см. рисунок). Широкую часть пипетки присоединяют при необходимости, например, к поглотительному устройству 2 (ловушка с сорбентом, поглотительный сосуд). При прохождении воздуха через капилляр внесенная жидкость растекается по внутренней поверхности капилляра
Воздух
Схема устройства для получения микроконцентраций па-роз летучих веществ.
Объяснение в тексте.
тонкой пленкой, обеспечивая диффузию летучего вещества с поверхности пленки в поток проходящего воздуха. Если эталонное вещество имеет высокую температуру кипения и сравнительно небольшую летучесть, его можно помешать в капилляр в чистом виде. Легколетучие жидкости и вещества в твердом агрегатном состоянии помещают в капилляр в виде раствора соответствующей нелетучей жидкости, из пленки которой при пропускании через капилляр воздуха происходит диффузия эталонного вещества в воздушный поток. После прохождения определенного количества воздуха капилляр через широкую часть пипетки промывают точным объемом подходящего растворителя. Остатки эталонного вещества при этом вымываются растворителем, и полученный раствор анализируют, например, метолом газовой хроматографии. Результаты анализа сравнивают с результатами подобного анализа такого же объема эталонного вещества или его раствора, разбавленного таким же объемом используемого растворителя. Количество вещества, продиффундировавшего в поток воздуха (X), вычисляют по формуле:
X = С —О,,
где (7 — количество эталонного вещества, введенного в капилляр; — количество эталонного вещества, оставшегося в капилляре.
Например, для изучения поглотительной способности этилового спирта по отношению к микропримесям камфоры в воздухе готовят раствор
^камфоры (температура плавления 176—177 °С) в твине-80 с концентрацией 0,1 г/мл. Затем 2 мкл этого раствора микрошприцем вводят в капилляр. К широкой части пипетки присоединяют поглотительный сосуд с пористой стеклянной пластинкой, заполненный 5 мл этилового спирта. С помощью электроаспиратора через всю систему протягивают воздух со скоростью 0,5 л/мин в течение 10 мин. Отсоединяют пипетку с капилляром и через широкую часть промывают капилляр двумя порциями этилового спирта по 5 мл. Каждую порцию спирта анализируют отдельно методом газожидкостной хроматографии (ГЖХ) при соответствующих условиях. Во второй порции смыва камфора не обнаруживается, что свидетельствует о полном смыве вещества первой порцией спирта. Вычисляют количество камфоры в первой порции смыва, которое равно 56 мкг. Сливают поглотительную жидкость из поглотителя и анализируют с помощью ГЖХ. В поглотительной жидкости обнаруживается 135 мкг ' камфоры. Затем в 5 мл спирта растворяют 2 мкл исходного раствора камфоры в твине-80 и также анализируют путем ГЖХ. Вычисляют, что количество камфоры в растворе 200 мкг. Таким образом, при продувке капилляра с дозируемым веществом в воздушную среду продиффундировало 144 мкг (200—56 мкг) камфоры, а поглотилось ¿135 мкг. Отсюда степень поглощения камфоры этиловым спиртом при условиях эксперимента следующая:
Разработанный способ прост в осуществлении, позволяет дозировать вещества и смеси веществ,
летучесть которых колеблется в самых широких пределах, в том числе вещества, находящегося в твердом агрегатном состоянии. Количество эталонного вещества, вводимое в капилляр перед пропусканием воздуха, и количество этого вещества, оставшееся в капилляре после прохождения воздушного потока, можно измерять одним и тем же методом (например, газовой хроматографией), что повышает точность определения количества дозируемого вещества.
Метод пригоден для получения в одном опыте широкого диапазона концентраций вплоть до предела чувствительности используемого метода анализа. Меняя количество вводимого в капилляр вещества и концентрацию эталонного вещества в нелетучей жидкости, используя набор различных нелетучих жидкостей, диапазон получаемых микроконцентраций можно значительно изменять.
Способ нами успешно использован при разработке методов концентрирования микроколичеств различных классов вредных веществ (углеводородов С5—С8, метилтолуилата, диметилтерефта-лата, монотерпенов, эптама и др.) при их определении в воздухе.
Литература. 1. Березкин В. Г., Титаринский B.C. Га-зохроматографическне методы анализа примесей. М., 1970.
2. Другое Ю. С., Березкин В. Г. Газохроматографический анализ загрязненного воздуха. М., 1981.
3. Перегуд Е. А., Горелик Д. О. Инструментальные методы контроля загрязнения атмосферы. Л., 1981.
4. Попов В. А., Печенникова Е. В. — Завод, лаб., 1974, т. 4, с. 1, с. 1—5.
Поступила 14.10.83
УДК 615.471.03:616.714-008.928.15.02.210-074:543.42.062
Ю. С. Белле, Л. А. Козловская, В. И. Коровин
ГАММА-СПЕКТРОМЕТР ДЛЯ ПРИЖИЗНЕННОГО ИЗМЕРЕНИЯ СОДЕРЖАНИЯ 1*аО В КОСТНОЙ ТКАНИ ЧЕРЕПА
Ранее нами была описана стационарная установка для прижизненного определения Иа Б (210РЬ) в организме человека [1]. При этом использовали комбинированные детекторы (состоящие из тонкой пастины Св1 (Т1), регистрирующей мягкое излучение радия-Э (46,7 кэВ), из защитного кристалла Ыа1 (Т1), созданные нами для других целей [2], где кристалл Ыа1 (Т1), кроме защитной, нес функцию измерения спектра человека в высокоэнергетической области ^-излучения. Из-за низкой разрешающей способности пластины Сб1 (Т1) фотопик Иа О регистрировался в широком окне, что приводило к потере чувствительности уста-г новки. Минимально определяемая за 1 ч активность Яа Б в черепе составляла 9,2 Бк.
В настоящее время нами разработан специализированный транспортабельный у"спектРометР
для прижизненного измерения Ra D в костной ткани человека. Применяли детекторы с обратной комбинацией сцинтилляторов: тонкая пластина Nal (TI) толщиной 1 мм, регистрирующая фото-пик Ra D с лучшим разрешением, и защитный кристалл толщиной 50 мм из Csl (TI). Схема разделения сигналов по их форме аналогична описанной в работе [2] и позволяет одновременно регистрировать спектры от обоих сцинтилляторов в разные отделы памяти анализатора.
Регистрация у-излучения производится четырьмя детекторами, расположенными вокруг головы пациента. Два из них (диаметром 100 мм) находятся у лобной и затылочной частей, а два других (диаметром 140 мм)—у боковых поверхностей. Предусмотрено перемещение детекторов в горизонтальной плоскости для достижения их стан-
