CC BY
62
2. Лейкограмма нестельных коров (n=10; X±Sx)
Показатель До осеменения Стельность, нед.
1-я 2-я 3-я 4-я
Лейкоциты, 109/л Эозинофилы, % 7,43±0,28 4,60±0,22 7,10±0,64 4,30±0,80 7,94±0,13 4,60±0,31 8,96±0,42 2,30±0,15 7,38±0,59 4,40±
Нейтрофилы, % п/я 4,80±0,25 30,20±1,51 4,20±0,20 31,00±0,52 4,50±0,16 31,40±1,08 1,80±0,25 34,90±0,95 4,60±0,16 31,80±1,07
Лимфоциты, % Моноциты, % 55,60±0,88 4,80±0,25 56,70±0,90 3,80±0,20 56,30±0,79 3,20±0,20 58,70±1,35 2,30±0,15 55,40±0,83 3,80±0,20
Примечание: * — Р>0,05 по сравнению с величинами «до интоксикации»
усиления продукции воспалительных цитокинов эндометрием и привлечения лейкоцитов из периферической крови.
В то же время у коров, оставшихся бесплодными, в этот период исследований в крови отмечался прирост общего количества лейкоцитов, сегменто-ядерных нейтрофилов, лимфоцитов по сравнению с величиной «до осеменения» соответственно на 20,59; 15,56 и 5,56% (табл. 2), что свидетельствовало об активизации иммунологической реактивности организма. Пониженная реактивность организма коров во время осеменения и, наоборот, повышенная в период имплантации, является одной из причин низкой оплодотворяемости животных, а также высоких пренатальных потерь на ранних стадиях развития зародыша.
В организме стельных коров через 4 нед. после осеменения (4-я неделя стельности) лейкоцитарный состав крови сохранялся на уровне третьей недели опыта. В то же время в группе нестельных коров признаки повышенной иммунореактивности организма исчезали.
Вывод. На ранних сроках стельности состояние иммунной системы коров является результатом взаимоотношений между плодом и организмом матери. При этом лейкоцитарный состав крови, как индикатор иммунной перестройки организма стельных животных, изменяется по мере развития и роста эмбриона. В первые 2 недели беременности происходит значительное усиление иммунного ответа материнского организма на антигены плода, что проявляется в виде прироста в крови общей концентрации лейкоцитов, в лейкограмме про-
центной доли эозинофилов и сегментоядерных нейтрофилов. После имплантации эмбриона (3-я и 4-я недели стельности) появляются признаки угнетения иммунной реактивности организма на фоне его толерантности к развивающемуся плоду, обнаруживаемые по убыли общего количества лейкоцитов, нормализации числа эозинофилов и прироста лимфоцитов.
Литература
1. Дерхо М.А. Динамика биохимических показателей в ходе остеогенеза после травмы различных костей скелета у собак: дисс. ... докт. биол. наук, 03.00.04. М.: МГАВМиБ, 2004. С. 78-95.
2. Дерхо М.А., Самойлова Е.С. Оценка сопряжённости воспалительного процесса в почках с гематологическими показателями при бабезиозе собак // Учёные записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2011. Т. 207. С. 182-186.
3. Косилов В.И., Мироненко С.И., Салихов А.А. и др. Рациональное использование генетических ресурсов красного степного скота для производства говядины при чистопородном разведении и скрещивании. М., 2010. 452 с.
4. Косилов В.И., Мироненко С.И., Жукова О.А. Гематологические показатели тёлок различных генотипов на Южном Урале // Вестник мясного скотоводства. 2009. Т. 1. № 62. С. 150-158.
5. Крылов В.Н., Косилов В.И. Показатели крови молодняка казахской белоголовой породы и её помесей со светлой аквитанской // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2009. № 2 (22). С. 121-125.
6. Соцкий П.А., Дерхо М.А. Характеристика влияния факторов природной среды на активность органов лейкопоэза в организме бычков // Аграрный вестник Урала. 2010. № 4. С. 83-84.
7. Сотникова Н.Ю. Роль клеток врождённого иммунитета в обеспечении успеха беременности на ранних сроках гестации / Н.Ю. Сотникова, Ю.С. Анциферова, Н.В. Крошкина, Д.Н. Воронин // Журнал акушерства и женских болезней. 2013. Т. LXII. Вып. 2. С. 151-159.
8. Нежданов А.Г., Мануилов А.В. Воспроизводительная способность и перинатальная патология у коров в связи с иммунопрофилактикой инфекционных болезней // Ветеринарная патология. 2003. № 2. С. 59-61.
Состав жирных кислот общих липидов слюны
С.С. Шукшина, к.б.н., О.Ю. Ширяева, к.б.н., ФГБОУ ВПО Оренбургский ГПУ
В последние годы большое внимание обращено к исследованию наиболее доступной для оценки физиологического состояния организма и диагностики разных заболеваний биологической среде, которой является слюна. При этом особое внимание уделяется гемато-саливарному барьеру, обеспечивающему необходимое перераспределение различ-
ных веществ между кровью и слюной с помощью изменения собственной проницаемости [1]. Установлена зависимость физиолого-биохимического состава слюны от патологии желудочно-кишечного тракта животных, в частности диспепсии у телят [2]. Наличие воспалительного процесса в слизистой матки при эндометрите приводит, как известно, к изменению содержания ряда химических элементов крови. Патологический процесс, протекающий в организме, изменяет активность и проницаемость
гемато-саливарного барьера, участвующего в поддержании гомеостаза, что приводит к изменениям в составе слюны у животных. В качестве исследуемых компонентов этой биологической жидкости были выбраны жирные кислоты, метаболизм которых активно изучается в последние годы. Среди жирных кислот особый интерес представляют омега-3 полиненасыщенные жирные кислоты — эйкоза-пентаеновая и докозагексаеновая кислоты в связи с наличием в их структуре 5 и 6 двойных связей соответственно, за счёт которых возможен синтез циклических соединений — простагландинов и простациклинов [5].
Материал и методы исследования. Для опыта подобрали по принципу аналогов две группы коров чёрно-пёстрой породы: опытная (больные эндометритом) — 15 гол., контрольная (стельные здоровые животные) — 17 гол.
Слюну от крупного рогатого скота собирали из ротовой полости с помощью шприца в количестве 20—50 мл в течение 10 мин. К собранной жидкости добавляли 3-кратный объём хлороформ-метанольной смеси (2:1, по объёму). Затем встряхивали в течение 5 мин. в делительной воронке объёмом 500 мл. После разделения смеси липидный экстракт отделяли. Полученную хлороформ-метанольную вытяжку упаривали под вакуумом до объёма 1—2 мл. К полученному объёму добавляли 5—10 мл 5-процентного раствора серной кислоты в метаноле и оставляли в термостате на 2 ч. при 37°С. Из охлаждённой смеси (+20°С) проводили реэкстракцию метиловых эфиров жирных кислот трёхкратным объёмом гексана. Операцию повторяли трижды. Объединённые объёмы гексана упаривали под вакуумом до 0,1 мл. Затем проводили анализ жирных кислот общих липидов методом газожидкостной хроматографии [3].
Полученные результаты статистически обрабатывали на программе «^аЙБЙса 6.0».
Результаты исследования. В слюне коров, аналогично как и в слюне человека, выявляются 23 жирные кислоты, в т.ч. 7 насыщенных, 5 мононенасыщенных и 11 полиненасыщенных (табл. 1). Преобладающими кислотами слюны являются 6 из них, составляющие в сумме более 80% (С16:0, 18:0, 18:1, 18:2, 20:4, 20:5). Как у человека, так и у коров, у 15 из 23 выявленных кислот определены равные уровни их в слюне. Возможно, что данная, до настоящего времени малоизученная биологическая среда — слюна эволюционно сформировывалась у млекопитающих в опредёленной степени однотипно. Различия в содержании жирных кислот общих липидов слюны относятся к С14:0, 18:3, 20:3, 20:5, 22:1, 22:2, количество которых у человека выше, и к С17:0 и 18:1, уровни которых ниже по сравнению с данными в слюне коров.
В слюне животных, больных эндометритом, отмечены изменения жирнокислотного состава общих липидов. Причём изменения касаются пре-
1. Жирнокислотный состав общих липидов слюны у коров и человека, % (X±Sx)
Жирные кислоты Здоровые коровы, (п=7) Больные эндометритом коровы (п=11) Человек (п=23)
14:0 0,90±0,20* 1,50±0,30** 1,53±0,27
15:0 0,40±0,10 0,50±0,10 0,56±0,17
16:0 28,20±3,10 29,10±2,30 29,72±1,98
16:1 4,30±0,60 3,80±0,60 4,75±0,65
17:0 2,90±0,50* 2,20±0,40 1,70±0,29
17:1 0,10±0,02 0,10±0,04 0,35±0,06
18:0 20,30±2,50 24,30±3,30 20,81±2,01
18:1 32.60±4.30* 17,10±2,60** 18,71±1,76
18:2 7,20±1,80 14,90±2,10** 7,13±1,81
18:3 0,80±0,20* 0,50±0,10** 2,17±0,66
20:0 0,80±0,20 0,50±0,10** 0,90±0,01
20:1 0,90±0,20 0,30±0,04** 0,70±0,01
20:2 0,60±0,10 0,30±0,03** 1,00±0,21
20:3 0,70±0,10* 0,30±0,04** 1,96±0,46
20:4 1,80±0,40 2,20±0,50 1,84±0,12
20:5 2,80±0,60* 6,70±1,30** 6,90±1,51
22:0 0,10±0,01 0,10±0,02 0,07±0,02
22:1 0,10±0,02* 0,10±0,02 0,05±0,01
22:2 0,30±0,04 0,10±0,02** 0,16±0,04
22:3 0,10±0,02 0,20±0,02** 0,10±0,01
22:4 0,30±0,04 0,50±0,03** 0,20±0,01
22:5 0,30±0,04 0,80±0,10** 02,5±0,10
22:6 0,40±0,04 0,60±0,10** 0,30±0,10
Примечание: * — Р<0,05 — различие с группой людей; ** — Р<0,05 — различие с группой контроля у коров
имущественно полиненасыщенной группы кислот: от С18:1 до С22:6, а также С 14:0 кислоты, участвующей в синтезе длинноцепочечных (С20 и С22) кислот. При эндометрите наблюдается уменьшение доли насыщенной С20 : 0 кислоты, моноеновых С18:1 и С20:1 кислот, полиеновых С18:3, С20:2, С20 : 3 кислот, при одновременном повышении содержания С18:2, С20:5, С22:3, С22:4, С22:5 и С22:6 кислот. Зарегистрированные изменения жирнокислотного состава общих липидов слюны при эндометрите свидетельствуют об активизации синтеза полиеновых жирных кислот ферментными системами слюнных желёз.
Исходя из вышеизложенных результатов состава жирных кислот общих липидов слюны наиболее важным и перспективным в отношении возможного выбора критерия оценки состояния липид-ного обмена и вероятной диагностики различных заболеваний у коров может служить показатель соотношения между полиеновыми С20: 4 и С20: 5 кислотами. Данное предположение связано с выявлением высокой концентрации С20:5 кислоты в липидах слюны, в отличие от её минимальных уровней в липидах крови и желчи, как у человека, так и у коров [3, 4].
В группе стельных коров, которая принята в нашей работе как контрольная, не имеющая патологических отклонений (эндометрита), соотношение между уровнями С20:4 и С20:5 кислот (табл. 2) составляло 0,63+0,07 (К1), тогда как у животных при диагностируемом эндометрите этот
2. Содержание арахидоновой и эйкозапентаеновой кислот в пробах слюны коров, % (X±Sx)
Жирные кислоты Здоровые коровы (n=7) Больные эндометритом коровы (n=11)
20:4 20:5 20:4/20:5 1,75±0,15 2,77±0,32 0,63±0,07 2,16±0,31 6,74±0,71* 3,12±0,43*
Примечание: * — Р<0,05 — различие с контрольной группой
коэффициент был равен 3,12+0,43 (К2), т.е. в 4,95 раза выше, чем в контрольной группе (Р< 0,001). Более высокий К2 связан с более высоким уровнем С20:5 кислоты (6,74+0,71) по сравнению с данным показателем у коров контрольной группы (2,77+0,32, Р<0,001) при достоверно неизменном уровне С20:4 кислоты: 2,16+0,31 (К2) и 1,75+0,15 (К1, Р>0,05).
Выявление С20:5 кислоты в повышенных концентрациях при эндометрите, связанном в определённой степени с нарушением гормонального обмена, регулирующего метаболизм липи-дов, вероятно не случайно. Точно так же, как и у человека, С20 : 5 кислота в слюне может служить исходным субстратом для ряда биологически активных соединений — простагландинов и про-стациклинов, а также обеспечивать первичные взаимосвязи с компонентами пищи. Подобные первичные комплексы, формирующиеся в ротовой полости, могут на последующих стадиях пищеварения способствовать более эффективному
процессу их адсорбции при всасывании в клетки слизистой оболочки кишечника и дальнейшего транспорта в лимфу и кровь. Таким образом, можно предположить, с одной стороны, участие ЭПК в подготовке веществ к пищеварению, с другой — её участие в защитной функции слюны от инородных компонентов.
Выводы. Отмечено определённое сходство в жирнокислотном составе общих липидов слюны коров и человека в отношении кислот С15:0, С16:0, С16:1, С17:1, С18:0, С18:2, С20:0, С20:1, С20:2, С20:4, С22:0, С22:3, С22:4.
В слюне коров, больных эндометритом, отмечены изменения в содержании полиненасыщенных кислот: от С18:1 до С22:6, а также С14:0 кислоты. Наиболее заметное изменение в содержании жирных кислот общих липидов слюны больных животных регистрируется для С20:5 кислоты. Данный показатель может использоваться для контроля течения исследуемой патологии животных.
Литература
1. Комарова Л.Г., Алексеева О.П. Новые представления о функции слюнных желёз в организме (клинико-биохимический аспект). Н.Новгород, 1994. 96 с.
2. Обухов А.А. Оценка адаптационных возможностей организма телят по состоянию гемато-саливарного барьера: дисс. ... канд. биол. наук. Н.Новгород, 2002. 175 с.
3. Богдарин Ю.А. Особенности состава липидов энтерогепа-тической системы и пути его коррекции при холелитиазе: дисс. ... докт. биол. наук. Горький, 1990. 392 с.
4. Комарова Л.Г. Клинико-биохимическая оценка формирования течения язвенной болезни и хронических гастродуодени-тов у детей: дисс. ... докт. мед. наук. Горький, 1986. 297 с.
5. Oelz, O. Die Klinische Bedeutung der Prostaglandine und anderer Arachidonsauremetaboliten. Prostazyklin (PGJa), Tromboxan (A2), Leukotriene // Ther. Umsch. 1992. Vol. 39. № 10. Р. 751-758.
Состав жиропота мясо-шёрстных кроссбредных овец
Л.Н. Скорых, д.б.н., А.А. Омаров, к.с.-х.н., ФГБНУ Всероссийский НИИОК; Б.Б. Траисов, д.с.-х.н., профессор, НАО Западно-Казахстанский АТУ; В.И. Косилов, д.с.-х.н., профессор, ФГБОУ ВО Оренбургский ГАУ
Как известно, имеющиеся на коже овец сальные и потовые железы постоянно продуцируют свои специфические секреты — жир и пот. На поверхности кожи жир и пот, смешиваясь и вступая в химические реакции, образуют соединение, которое получило название жиропот. Количество жиропота, его состав и физико-химические свойства у овец разных пород имеют различия [1—5].
Одним из путей повышения качества шерсти как сырья для промышленности может служить повышение защитной роли жиропота и сохранности свойств шерсти.
Жиропот овец, обладающий хорошей стойкостью к вымыванию, надёжно предохраняет шерстяные волокна от воздействия различных неблагоприятных факторов внешней среды. Достаточное количество жиропота в шерсти овец
способствует поддержанию на должном уровне её физико-технических свойств.
Следует отметить роль жиропота с технологической точки зрения в образовании руна. Склеенные жиропотом шерстинки в целом образуют руно, препятствуя проникновению влаги, пыли, различных микробов и т.д.
Положительным моментом достаточного количества жиропота является как смазочное вещество при прохождении стригального аппарата во время стрижки овец [6—8].
Немаловажными признаками, характеризующими качество жиропота, являются его цвет и консистенция. Жиропот овец устойчив к воздействию атмосферных осадков, одновременно достаточно легко растворим в тёплой воде с добавлением моющих средств, считается очень ценным.
Качество жиропота также характеризуется цветом. Лучшим и качественным считается жиропот белого и светло-кремового цвета, который более устойчив к воздействию атмосферных осадков, а
