Разработка новых экологически безопасных способов получения халькогенорганических соединений на основе элементных хал ькогенов Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

результаты и обсуждение

Штаммы Y. enterocolitica и Y. pestis, используемые в исследовании, были типичными по культуральнобиохимическим и серологическим свойствам и относились к О:3/3 серобиотипу и подвиду altaica соответственно.

Результаты исследования устойчивости к возбудителю чумы предварительно инфицированных Y.enterocolitica белых мышей представлены в таблице 1.

Таблица 1

Устойчивость к возбудителю чумы предварительно инфицированных Y. enterocoliticа белых мышей

Группы животных (по 20 жив. в гр.) Штамм LD50 в м.кл. (доверительный интервал) Продолжительность жизни в днях M ± m Кол-во павших животных, от которых выделена культура Y.pestis абс. (% ± m) Кол-во выживших животных абс. (% ± m)

I Y. enterocolitica pYV(+) + Y.pestis И-3516 5623 (19952 - 1584) 14,1 ± 2,3 5 (25,0 ± 6,8) 15 (75,0 ± 6,8)

II Y.enterocolitica pYV(-) + Y.pestis И-3516 3162 (11220 - 891) 13,0 ± 2,8 10 (50,0 ± 7,9) 10 (50,0 ± 7,9)

Контроль Y. pestis И-3516 100 (354 - 28) 6,4 ± 1,5 16 (80,0 ± 6,3) 4 (20,0 ± 7,9)

В группе I, зараженной Y. рestis после предварительного инфицирования плазмидным вариантом Y. еМеюсо1Шса, выжило в 3,8 раз больше животных по сравнению с контрольной группой (р < 0,05). Средняя продолжительность жизни мышей составила 14,1 ± 2,3 дня, что статистически достоверно превышало показатель контрольной группы (р < 0,05).

В группе II, зараженной Y. рestisпосле предварительного инфицирования безплазмидным вариантом Y.enterocoliticа, значимых различий в количестве павших и выживших животных по сравнению с контрольной группой не установлено (р > 0,05). Однако, средняя продолжительность жизни животных установлена в пределах 13,0 ± 2,8 дня, что превышает значения контроля в 2,0 раза (р < 0,05).

Одним из объективных критериев резистентности организма к инфицированию патогенными возбудителями является расчет показателя LD50 Так, при заражении чумой (контрольная группа), 50 % летальный исход у мышей наблюдался при 100 м.кл. В группах опытных животных LD50 после заражения Y. рestis составила 5 623 м.кл. (для Y. еМеюсо1Шса рYV( + ) + Y. рestis ) и 3 162 м.кл. (для Y. еМегосо1Шса рТУ(-)+ Y. рestis).

Полученные результаты показывают четкую корреляцию между наличием pYV в Y. еМегосо1Шса и устойчивостью к Y.pestis. Заражение бесплазмидным вариантом У. еМегосо1Шса так же провоцирует формирование устойчивости, на это указывает тот факт, что средняя продолжительность жизни и LD50 этих животных после инфицирования Y. pestis возрастает по сравнению с контролем. Аналогичные результаты получены ранее (Климов В.Т., 2003) с высоковирулентным штаммом Y.pestis из Тувинского природного очага чумы.

выводы

Инфицирование животных Y. еМегосо1Шса способствует развитию резистентности организма при последующем заражении Y. рestis алтайского подвида.

Бесплазмидный дериват Y. еМеюсо1Шса рYV(-) вызывает протективный эффект, что подтверждается увеличением средней продолжительности жизни до 13,0 ± 2,8 дня животных, инфицированных чумой.

Не исключается значимость Y.enterocolitica на течение эпизоотического процесса при чуме, что диктует необходимость проведения экспериментальных исследований в природных очагах чумы.

О.И. Хуриганова, Е.О. Куркутов, И.В. Доронькина, В.А. Потапов

разработка новых экологически безопасных способов получения халькогенорганических соединений на основе элементных хапькогенов

Иркутский институт химии имени А.Е. Фаворского СО РАН (Иркутск) ГОУ ВПО Иркутский государственный педагогический университет (Иркутск)

Разработаны новые экологически безопасные способы получения халькогенорганических соединений на основе элементных халькогенов, которые являются нетоксичными и доступными реагентами. Реакции протекают при комнатной температуре практически без образования побочных соединений и приводят к целевым продуктам с высокими и количественными выходами.

Найдена новая эффективная система-восстановитель/КОН/Н20/ДМФА для генерации селенид- и теллурид-анионов из элементных халькогенов и проведения реакций нуклеофильного замещения и присоединения. Разработаны эффективные способы получения 2,5-дифенилтиофена, 2,5-дифенилселе-нофена и 2,5-дифенилтеллурофена с выходом до количественного из дифенилдиацетилена и элементных халькогенов. Преимуществами данных способов, по сравнению с известными методами, являются более высокий выход целевых продуктов и отсутствие необходимости использования токсичных газообразных сероводорода и селеноводорода.

Red/MeOH/KOH/ДМФА ___

X (Na2S) + Ph^-------^^Ph ------------------------ jf\

Ph^^^Ph

X = S, Se, Te; Red - NaBH4, SnCl2, N2H4 H2O X

Впервые осуществлена реакция дихлорида селена с селенофеном, приводящая к бис(2-селенофенил) селениду с высоким выходом.

0ч,-0

Эе Эе Эе

Взаимодействие дихлорида селена с метоксибензолом легко протекает при комнатной температуре и с высоким выходом приводит к продукту ароматического электрофильного замещения — бис(4-метоксифенил)селениду.

Показано, что дихлорид селена является мягким хлорирующим агентом. Так, взаимодействие дихлорида селена со стиролом при комнатной температуре с количественным выходом приводит к 1,2-дихлорэтилбензолу.

Т аким образом, дихлорид селена может быть использован в органическом синтезе вместо токсичного газообразного хлора и других хлорирующих реагентов.

Se

Se

SeCl,

-[HCl]

SO2Cl2

П.Б. Цыдендамбаев, М.В. Максименя, П.П. Терешков

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЦИТОТОКСИЧЕСКОГО ДЕЙСТВИЯ ЭКСТРАКТОВ ЛЕКАРСТВЕННЫХ ТРАВ НА КУЛЬТУРУ КЛЕТОК ФИБРОБЛАСТОВ

ГОУ ВПО «Читинская государственная медицинская академия Росздрава» (Чита)

Фибробласты как один из центральных клеточных элементов соединительной ткани находятся в тесном морфофункциональном взаимодействии с иммунной системой (Шехтер А.Б., Серов В.В., 1991). Данный тип клеток обладает способностью к синтезу и продукции широкого спектра цитокинов (факторы роста фибробластов и кератиноцитов, трансформирующих факторов и других), белков внеклеточного матрикса (в том числе и структурных гликопротеинов), проферментов металлопротеиназ ^ее D.-Y., 2005; Ghalbzouri А., 2002). Однако возможности фармакологической иммуномодуляции функций фибробластов не до конца определены, что и обусловило цель нашего исследования на начальном этапе — изучить степень цитотоксического действия экстрактов лекарственных трав на фибробласты в клеточной культуре.

Фибробласты эмбриональной ткани крыс культивировали в полной питательной среде DMEM с добавлением 20% телячьей сыворотки, 20 мкг/мл гентамицина, 2 мМ L-глутамина и 10 мМ HEPES. 96-луночные плоскодонные планшеты для культивирования засевали предварительно ресуспендированными путем трипсинизации клетками в количестве 20 тысяч фибробластов на лунку в 100 мкл среды, затем прибавляли по 50 мкл на лунку раствора экстрактов изучаемых лекарственных трав, разведенных в среде, в дозах от 6 мкг/мл до 3 мг/мл и культивировали в течение суток в СО2-инкубаторе <^апуо» (Япония) при