CC BY
97
© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2013 УДК 579.861.2:579.253].08
А.Е. Гончаров1, Л.П. Зуева1, А.Н. Суворов2, Л.С. Глазовская3, Е.Б. Брусина3, И.С. Азизов4, А.В. Лавриненко4, Т.Н. Суборова5, Д.В. Разумова5, В.Ю. Хорошилов1, Б.И. Асланов1, AA Долгий1
пцр-идентификация фрагментов генов островов патогенности в метициллинрезистентных штаммах staphylococcus aureus
1ГБОУ ВПО Северо-западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова Минздрава России, 191015, Санкт-Петербург, ул. Кирочная, 41; 2ФГБУ НИИ экспериментальной медицины СевероЗападного отделения РАМН, 197376, Санкт-Петербург, ул. Акад. Павлова, 12; 3ГБОУ ВПО Кемеровская государственная медицинская академия Минздрава России, 650029, Кемерово, ул. Ворошилова, 22а; 4РГП Карагандинский государственный медицинский университет МЗ РК, Республика Казахстан, 100008, Караганда, ул. Гоголя, 40; 5ФГКВОУ ВПО Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова МО РФ, 194044, Санкт-Петербург, ул. Акад. Лебедева, 6
Проведена идентификация фрагментов островов патогенности (SAPI1, vSaa и vSafi) в 11 клинических штаммах MRSA, отнесенных на основании spa-сиквенстипирования и рестрикционно-модификационного теста к различным генотипам.
Показано, что набор изученных островов патогенности является штаммоспецифичным и может быть использован в качестве эпидемиологического маркера госпитальных штаммов золотистого стафилококка.
Ключевые слова: MRSA, spa-сиквенстипирование, рестрикционно-модификационный тест, острова патогенности
A.E.Goncharov1, L.P. Zueva1, A. E. Suvorov2, L.S. Glazovskaya3, E .B. Brusina 3,1. S. Azizov4, A.V. Lavrinenko4, T.N. Suborova3, V.Yu. Khoroshilov1, B.I. Aslanov1, A.A.Dolgiy 1
PCR IDENTIFICATION OF FRAGMENTS OF GENES FOR PATHOGENICITY ISLANDS IN METHICILLIN-RESISTANT STAPHYLOCOCCUS AUREUS STRAINS
1Federal State Budgetary Institution of Higher Professional Education "The St. Petersburg 1.1. Mechnikov State Medical Academy " 47, Piskarevskiy prospekt, St. Petersburg, Russian Federation, 195067; 2State Budgetary Institution "Institute of Experimental Medicine of the NorthWest Branch
of the Russian Academy ofMedical Sciences", 12, Akad.Pavlov Str., St.Petersburg, Russian Federation, 197376; 3State Budgetary Educational Institution of Higher Professional Education "Kemerovo state medical academy" of the Ministry of Health care, 22a, Voroshilova Str., Kemerovo,
650029; 4The Republican State Enterprise "Karaganda State Medical University", 40, Gogolya Str., Karaganda, The Republic of Kazakhstan, 100008; 5 The Federal State Treasury Military Educational Institution of Higher Professional Education "Military-medical Academy named after S. M. Kirov" of the Ministry of Defense, 6-Zh, Akademika Lebedeva Str., St.- Petersburg, Russian Federation, 194044
The identification of fragments of pathogenicity islands (SAPI1, vSaa and vSafi) in 11 clinical strains of Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA), referred on the basis of spa- sequence typing and the restriction-modification test to different genotypes, has been performed. A set of studied pathogenicity islands was shown to be strain-specific and be available for usage as an epidemiological marker of hospital strains of Staphylococcus aureus.
Key words: Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA), spa- sequence typing, restriction-modification test, pathogenicity islands
Введение
В настоящее время Staphylococcus aureus является одним из наиболее распространенных возбудителей инфекций, связанных медицинскими вмешательствами. Наибольшую опасность в клиническом и эпидемиологическом отношении представляют ме-тициллинрезистентные штаммы золотистого стафилококка (MRSA), причем доля нозокомиальных инфекций, вызванных MRSA, ежегодно увеличивается. По данным национальной системы мониторинга за нозокомиальными инфекциями (NNIS), доля MRSA в структуре внутрибольничных инфекций в США составила 2,4% в 1975 г., 30% в 1989 г., 36% в 1996 г. и возросла до 40% в 1997 г. [5].
Использование метода мультилокусного секве-нирования-типирования позволило установить при-
Для корреспонденции: Гончаров Артемий Евгеньевич, канд. мед. наук, доцент каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфек-тологии СЗГМУ им. И.И. Мечникова, 195067, Санкт-Петербург, Пискаревский пр., 47, e-mail: [email protected]
надлежность многочисленных госпитальных штаммов MRSA всего лишь к шести филогенетическим линиям, или клональным комплексам: CCI, СС5, CC8/239, CC22, CC30, CC45. Наиболее диверсифицированными и многочисленными являются кло-нальные комплексы CC5 и CC8/239, которые содержат различные эпидемические штаммы и клоны, такие как EMRSA 1, 4, 7, 9, 11, Бразильский, Иберийский. В стационарах России выявлено эпидемическое распространение штаммов MRSA, генетически родственных EMRSA-1 (Бразильскому клону) и Иберийскому клону [3].
К основным факторам патогенности золотистого стафилококка относят белок A, различные экстра-целлюлярные белковые продукты (эксфолиативные токсины А и В, гемолизины, лейкоцидины, энтеро-токсины - суперантигены, хлопьеобразующие факторы А и В).
Установлено, что гены ряда факторов патогенности золотистого стафилококка (энтеротоксины, гемолизины, лейкоцидины) находятся в составе мобильных
генетических элементов, в частности входят в состав разнообразных "островов патогенности" [8].
В то же время вопрос о патогенном потенциале госпитальных штаммов MRSA, циркулирующих на территории России, включая международные эпидемические клоны, остается недостаточно изученным. В частности, нет сведений о распространенности и эпидемиологическом значении штаммов, несущих отдельные "острова патогенности" в российских госпитальных популяциях MRSA.
В связи с этим целью настоящего исследования явилось изучение фрагментов генов, ассоциируемых с островами патогенности, в коллекции штаммов различных генотипов, типичных для госпитальных популяций MRSA.
Материалы и методы
В исследование включено 11 штаммов MRSA, 8 из которых выделены в 2007-2010 г. в лечебно-профилактических учреждениях России и Казахстана, в том числе 3 культуры эпидемического штамма ВТ2007, получившего распространение в стационарах экстренной помощи Санкт-Петербурга [2]. В качестве культур сравнения были использованы 3 штамма из коллекции шведского института инфекционного контроля (SMI, Solna), представлявшие собой европейские эпидемические клоны EMRSA-3, EMRSA-15, EMRSA-16 (табл. 1).
клональную принадлежность культур определяли с использованием двух методов генетического типи-рования - метода рестрикционно-модификационного теста ( restriction-modification test - RM-test), согласно [4 ] и методом spa-сиквенстипирования.
Метод рестрикционно-модификационного теста основан на определении полиморфизма стафило-
кокковых генов hsdS1-hsdS2, имеющих различные аллели у штаммов разных клональных комплексов (СС30, СС22, СС45, СС1, СС8, СС5).
В методе использовано 3 набора из 8 праймеров для амплификации вариабельных участков генов hsdS1-hsdS2. Последовательности праймеров представлены в табл. 2.
Принципиально, что использование данного метода позволяет избежать дорогостоящей процедуры мультилокусного секвенирования - типирования, для отнесения изучаемой культуры к тому или иному клональному комплексу.
Бактериальную ДНК получали методом горячего лизиса (при 95°С) клеточной суспензии в виде биомассы 2-3 колоний, выросших на 5% кровяном агаре (объем пробы 100 мкл, время обработки 15 мин) с очисткой центрифугированием. Амплификацию проводили в 25 мкл смеси, содержащей следующие реагенты (расчет приведен на одну пробу): 10-кратный ПЦр-буфер с MgCl2 - 2,5 мкл 20 мМ смесь из четырех дезоксинуклеотидтрифос-фатов dNTP - 2,5 мкл - по 40 pkM на 1 мкл каждого из праймеров в сочетаниях: AF+AR30+AR22 (набор 1), AF+AR45+AR1 (набор 2), BF+BR8+BR5 (набор 3) Taq-полимераза (5 ед/мкл) - 0,5 мкл дистиллированная вода - 8,5 мкл геномная ДНк - 3 мкл
ПЦР проводили в амплификаторе Mastercycler personal (Eppendorf) по следующей программе:
денатурация при 95°С (5 мин) с последующими 35 циклами амплификации (30 с денатурации при 94°С, 30 с отжига при 55°С, 120 с удлинения при 72°С) и финальным удлинением при 72°С в течении 5 мин.
Амплификацию гена spa проводили с использованием праймеров и условий реакции, предложенных
Таблица 1
Характеристика изученных культур MRSA и результаты их молекулярно-генетического типирования
№ культуры Кло-нальный комплекс Наименование Наличие острова патогенности
Место выделения Характеристика штамма spa-тип эпидемического (госпитального) штамма SAPI1 SAPIbovl SAPI2 vSaa vSaß
23 РФ, Москва Эпидемический t037 СС8/239 b2009Mos -- -- -
101 РФ, Москва Эпидемический t037 СС8/239 b2009Mos -- -- -
54 РФ, Кемерово Госпитальный неэпидемический t008 СС8/239 - + - -+ +
58 РФ, Кемерово Госпитальный неэпидемический t037 СС8/239 - -- -+ +
Sa775 Швеция Эпидемический t001 СС5 EMRSA-3 -- -+ +
Sa776 Швеция Эпидемический t022 СС22 EMRSA-15 -- -- -
Sa778 Швеция Эпидемический t018 СС30 EMRSA-16 +- -+ -
830d казахстан, караганда Амбулаторный неэпидемический t008 СС8/239 - -- -- +
256 Россия, СПб, стационар I Эпидемический t008 СС8/239 BT2007 -- -- -
1110 Россия, СПб, стационар I Эпидемический t008 СС8/239 BT2007 -- -- -
72ns Россия, СПб, стационар II Эпидемический t008 СС8/239 BT2007 -- -+ -
Примечание: «Эпидемический» в столбце «характеристика штамма» обозначает штамм, выделенный при вспышке или отнесенный к международным эпидемическим клонам, «госпитальный неэпидемический» - штамм выделен в условиях стационара при отсутствии доказанной вспышки внутрибольничной инфекции, «амбулаторный» - штамм выделен у пациента в амбулаторных условиях.
Таблица 2
Последовательности праймеров для амплификации фрагментов генов hsdS1-hsdS2
Наименование праймера Последовательность 5'-3' Используется в наборе
AF AGGGTTTGAAGGCGAATGGG 1,2
AR30 CAACAGAATAATTTTTTAGTTC 1
AR22 TCAGAGCTCAACAATGATGC 1
AR45 GGAGCATTATCTGGTGTTTTCC 2
AR1 GGGTTGCTCCTTGCATCATA 2
BF CCCAAAGGTGGAAGTGAAAA 3
BR8 CCAGTTGCACCATAGTAAGGGTA 3
BR5 TCGTCCGACTTTTGAAGATTG 3
D. Harmsen [6]. Секвенирование осуществляли в автоматической капиллярной системе MegaBACE 1000 DNA Analysis System (GE Healthcare, США).
Результаты секвенирования гена spa обрабатывали, используя данные web-сайта http://www.ridom.de/ spaserver/.
Последовательности пяти островов патогенности (SAPI1, SAPI2, SAPIbovl vSaa, vSaß), представленные в базе данных GenBank на сайте National Center for Biotechnology Information (http://www.ncbi.nlm.nih. gov/genbank), были использованы для дизайна праймеров к фрагментам генов вирулентности, входящих в состав этих островов патогенности (табл. 3).
При этом для идентификации острова патогенности SAPI1 была использована следующая стратегия. В первую очередь была поставлена ПЦР с прайме-рами, комплементарными участкам гена токсина синдрома токсического шока-1 tst и гена фаговой терминазы ter. Поскольку данным сочетанием генов помимо SAPI1обладают два других острова патогенности (SAPI2, SAPIbovl), штаммы, позитивные на эти гены, были также проверены на наличие последовательностей, специфичных островам патоген-ности SAPI2, SAPIbovl (гены энтеротоксинов L и C, ген эксфолиативного токсина А). При отсутствии соответствующих продуктов амплификации результат интерпретировали как соответствующий обнаружению острова патогенности SAPI1.
Результаты и обсуждение
Проведенное молекулярно-генетическое типиро-вание показало, что все выделенные в стационарах России и Казахстана культуры могут быть отнесены на основании рестрикционно-модификационного теста к клональному комплексу СС8/239, что согласуется с ранее полученными данными о преобладании в российских стационарах этого клонального комплекса [1]. Данная филогенетическая линия S. aureus включает в числе прочих и spa-генотипы t008 и t037, к которым были отнесены изученные нами культуры (табл. 1). Обнаружение данных spa-генотипов в российских и казахстанских стационарах не является неожиданным, учитывая, что по данным,
представленным в международной базе данных по spa-типированию на web-сайте http://www.ridom.de/ spaserver/, они являются одними из наиболее распространенных генотипов MRSA в мире.
Исходя из данных, представленных в табл. 1, видно, что три острова патогенности из пяти изученных (SAPI1, vSaa и vSaß) были представлены в изученных культурах, в то же время набор островов пато-генности для штаммов, выделенных в различных стационарах, был разным даже в пределах одного spa-генотипа. Так, например, широко распространенный spa-тип t008, представленный культурами санкт-петербургского эпидемического штамма BT2007, а также штаммами из стационаров кемерова и караганды, обнаружил значительную вариабельность по наличию изученных фрагментов островов патоген-ности: в частности, были идентифицированы как варианты, содержащие фрагменты одного из островов патогенности (SAPI1, vSaa, vSaß), так и культуры, в которых не выявлен ни один из фрагментов этих генетических элементов.
Можно предположить, что набор изученных островов патогенности отражает локальные и/или региональные генетические особенности MRSA, циркулирующих в стационарах географического региона.
Присутствие в госпитальных популяциях MRSA штаммов, обладающих структурами, несущими гены факторов патогенности, наводит на мысль о том, что широкое распространение этих штаммов определяется не только их устойчивостью к антибактериальным препаратам, но и их вирулентными свойствами. острова патогенности, фрагменты которых обнаруживались в изученных штаммах, содержат гены разнообразных белков, способных взаимодействовать с клетками иммунной системы хозяина, в частности гены таких суперантигенов, как энтеротоксины O, T и белка токсического шока. Сериновые протеазы, кодируемые кластером генов в составе острова па-тогенности vSaß, являются внеклеточными протеа-зами, способными оказывать прямое повреждающее воздействие на клетки хозяина. Данные ферменты широко распространены у грамположительных микроорганизмов - возбудителей нозокомиальных инфекций, в частности энтерококков [9].
Заключение
Широкая представленность островов патогенно-сти vSaa и vSaß среди изучаемых культур является ожидаемой и соответствует данным об их обнаружении в геномах всех полностью секвенированных в настоящее время геномах MRSA [7]. В то же время на основании выявленного полиморфизма по изученным фрагментом островов патогенности можно заключить, что набор изученных островов патоген-ности отражает локальные и/или региональные генетические варианты MRSA, в том числе характеризует госпитальные или вспышечные штаммы, сформировавшиеся в том или ином лечебно-профилактическом учреждении.
В связи с данным обстоятельством стратегия молекулярно-генетического мониторинга за эпиде-
Таблица 3
Исследуемые острова патогенности и последовательности праймеров для амплификации фрагментов генов, ассоциированных с ними
остров Номер последовательности острова Локализация Расположение сайтов связывания Tемпература отжига праймеров, °С
патоген- натогенности или праймеров в острове Праймеры (5'->З') нраймеров в но-
ности содержащего его штамма в GenBank патогенности следовательности, представленной в
SaPIl и93б88.2 Между геном токсина синдрома токсического шока-1 (tst) и геном фаговой терминазы ter ACACAGATGGCAGCATCAGCC TGCGGCAGTCGGTGATGAAACA 2З4У-2ЗбУ 3319-3298 60
SAPIbovl ^00У622.1 Ген энтеротоксина sec-bov TGAAGGAAACCACTTTGATAATGGGAA CAACCGTTTTATTGTCGTTGTACATCA 40З101-40З12У 40З41У-40ЗЗ91 5У
Между sec-bov и orf3 CCATTCTTTGTTGTAAGGTGGACTT TGGAAAAACGTCAAAAGTGATGCCA 403463-403439 401б01-401б25 55
Между генами энтеро- AGCGGTTTTGATAAGGGGAGTGT 40З80У-40ЗУ85 5б
токсинов sel и sec AGTCCACCTTACAACAAAGAATGGA 403440-403464
SAPI2 Ы1УЗ5У.1 Ген эксфолиативного токсина eta GCAGGTGTTGATTTAGCATT AGATGTCCCTATTTTTGCTG УУ5-У94 8бУ-848 55
vSaa ^_002У45.2 Между генами энтеро-токсинов set8 и set9 TCAGCAACGCCAGCGCCTAA CCGTTGTGCTTCACACCCGA 44ЗЗУ8-44ЗЗ9У 445558-445539 б0
vSaß ^_002У45.2 Между геном tRNA-Glu и геном энтеротоксина seo TTGATGCTCACCATGACAATGTGCT AGACACCGCCCTTTCACGGC 1881241-1881265 1882040-1882021 б0
Между генами серино- CCGCCATACACCACACCTATGACC 18628У4-186289У 63
вых протеаз splC и splB TGCGGCAGGGGCTAAAGCTG 1863860-1863841
мическими штаммами S. aureus должна включать в себя наряду с использованием методов, характеризующих клональную принадлежность, и филогенетическое родство штаммов (spa-типирование, MLST) также идентификацию мобильных генетических элементов, в частности островов патогенности.
Необходимо отметить, что использованный нами рестрикционно-модификационный тест для идентификации основных клональных комплексов золотистого стафилококка является быстрой и удобной альтернативой методу мультилокусного секвениро-вания - типирования. Мы полагаем, что в сочетании с ПЦР-идентификацией фрагментов островов патогенности данный метод может быть использован в практике эпидемиологического надзора за MRSA-инфекцией, например при доказательстве наличия эпидемиологических связей между случаями вну-трибольничных инфекций.
ЛИТЕРАТУРА
1. АфанасьевМ.В., Каракашев С.В., ИльинаЕ.Н., СалемА.-С.-А.-М., Сидоренко С.В., Говорун В.М. Молекулярно-генетическая характеристика метициллинустойчивых штаммов Staphylococcus aureus, выделенных в стационарах г. Москвы. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2010; 2: 20-4.
2. Гончаров А.Е., Olsson-Liljequist В., Зуева Л.П. и др. Эпидемический штамм метициллинрезистентного Staphylococcus aureus в стационарах Санкт-Петербурга. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2010; 5: 24-9.
3. Дмитренко О.А., Шагинян И.А., Прохоров В.Я., Матвеев
С.М., ГинцбургА.Л. Молекулярно-генетическое типирование метициллинрезистешных штаммов Staphylococcus aureus, выделенных в разных регионах Российской Федерации, на основании изучения размеров продукта амплификации и последующего рестрикционного анализа коагулазного гена. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2005; 4: 46-52
4. Cockfield J.D., Pathak S., Edgeworth J.D., Lindsay J.A. Rapid determination of hospital-acquired meticillin-resistant Staphylococcus aureus lineages. J. Med. Microbiol. 2007; 56(Pt 5): 614-9.
5. Emori T.G., Gaynes R.P. An overview of nosocomial infections, including the role of the microbiology laboratory. Clin. Microbiol. Rev. 1993; 6(4): 428-42.
6. Harmsen D., Claus H., Witte W. et al. Typing of methicillin-re-sistant Staphylococcus aureus in a university hospital setting by using novel software for spa repeat determination and database management. J. Clin. Microbiol. 2003; 41: 5442-8.
7. Kuroda M. et al. Whole genome sequencing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Lancet. 2001;.357: 1225-40.
8. Malachowa N., DeLeo F.R. Mobile genetic elements of Staphylococcus aureus. Cell. Mol. Life Sci. 2010; 67: 3057-71.
9. Tendolkar P.M., Baghdayan A.S., Shankar N. Pathogenic entero-cocci: new developments in the 21-st century. Cell. Mol. Life Sci. 2003; 60: 3-15.
Поступила 25.07.12
Сведения об авторах:
Зуева Людмила Павловна, доктор мед. наук, проф., зав. каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии СЗГМУ им. И.И. Мечникова. 195067, Санкт-Петербург, Пи-скаревский пр., 47, e-mail: [email protected]; Суворов Александр Николаевич, доктор мед. наук, проф., зав. отд. молекулярной генетики патогенных микроорганизмов, 197376, Санкт-Петербург, ул. Акад. Павлова, 12, e-mail: alexander_
[email protected]; Глазовская Лариса Станиславовна, канд. мед. наук, доцент каф. эпидемиологии Кемеровской государственной медицинской академии, 650025, Кемерово, ул. Дарвина, 2-9; Брусина Елена Борисовна, доктор мед. наук, проф., зав. каф. эпидемиологии ГОУ ВПО Кемеровская государственная медицинская академия, 650025, Кемерово, ул. Дарвина, 2-9, e-mail: brusina@mail. ru; Азизов Илья Сулейманович, доктор мед. наук, гл. науч. сотр., зав. микробиологической лабораторией НИЦ Карагандинского государственного медицинского университета, Казахстан, Караганда, ул. Гоголя, 40, e-mail: antibiotic@ mail.kz; Лавриненко Алена Владимировна, канд. мед. наук, ассистент каф. микробиологии Карагандинского государственного медицинского университета, Казахстан, Караганда, ул. Гоголя, 40, e-mail: [email protected]; Суворова Татьяна Николаевна, доктор мед. наук, ст. на-
уч. сотр. научно-исследовательской лаб. военно-полевой хирургии каф. военно-полевой хирургии ВМА им. С.М. Кирова МО РФ, 194044, Санкт-Петербург, ул. Академика Лебедева; Разумова Дина Владимировна, мл. науч. сотр. научно-исследовательской лаб. военно-полевой хирургии каф. военно-полевой хирургии ВМА им. С.М. Кирова МО РФ, 194044, Санкт-Петербург, ул. Академика Лебедева; Хо-рошилов Владимир Юрьевич, канд. мед. наук, доцент каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии СЗГМУ им. И.И. Мечникова, e-mail: [email protected]; Долгий Алексей Алексеевич, очный аспирант каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии СЗГМУ им. И.И. Мечникова, e-mail: [email protected]; Асланов Батырбек Исмедович, канд. мед. наук, доцент каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии СЗГМУ им. И.И. Мечникова, e-mail: [email protected]
© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2013 уДК 616.98:579.861.1]:312.6(470.22)
Т.Г. Филатова1, А.И., Коваленко2, М.М. Лери3
динамика заболеваемости менингококковой инфекцией в республике Карелия
'Петрозаводский государственный университет, 185910, Петрозаводск, пр. Ленина, 33; 2Управление Роспотребнадзора по Республике Карелия, 185003, Петрозаводск, ул. Володарского, 26; 3Институт прикладных математических исследований Карельского научного центра РАН, Петрозаводск, ул. Пушкинская, 11
Представлены результаты эпидемиологического анализа заболеваемости менингококковой инфекцией в Республике Карелия в эпидемический и межэпидемический периоды. Показатель заболеваемости менингококковой инфекцией в республике ежегодно превышал аналогичные данные по Российской Федерации. В годы эпидемического подъема увеличиваются число пораженных административных территорий и заболеваемость детей в возрасте до 14 лет. Наибольшая летальность наблюдалась в годы начала эпидемиологического подъема заболеваемости. Результаты исследования свидетельствуют о смене лидера менингококка серогруппы В на серогруппы С и А.
Ключевые слова: менингококковая инфекция, эпидемиология, дети, летальность T. G. Filatova', A. I. Kovalenko2, M. M. Leri3
DYNAMICS OF MENINGOCOCCAL INFECTION RATE IN THE REPUBLIC OF KARELIA
' Federal State budgetary Institution of Higher professional education "Petrozavodsk State University", 33, Prosp. Lenina, Petrozavodsk, the Republic of Karelia, Russian Federation, 185910; 2 The Directorate of the Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare in the Republic of Karelia, 12, Pirogova Str., the Republic of Karelia, Russian Federation, 185002; 3 Federal State budgetary Institution of Science "Institute of Applied Mathematical Research" of the Karelian Research Centre of the Russian Academy of Sciences, 11, Pushkinskaya Str., Petrozavodsk, the Republic of Karelia, Russia, 185910
The paper presents the results of an epidemiological analysis of the incidence of meningococcal infection in the Republic of Karelia over epidemic and interepidemic periods. Year over year meningococcal infection rate in the Republic has been remaining to be higher than similar data in Russian Federation. In the years of epidemiological outbreak the number of regions being affected and the disease incidence in children under 14 increases. The largest lethality has been observed in the beginning of epidemiological outbreak. The results of the study indicate the exchange of the leader of meningococcus of serogroup В by meningococcus of serogroup C and A. In the absence of planned vaccinal prevention there remains the threat for the rise of meningococcal infection rate.
Key words: meningococcal infection, epidemiology, children, lethality
Инфекционные болезни по-прежнему играют существенную роль в патологии человека, наносят огромный экономический ущерб обществу. В связи с высокой эпидемиологической и социальной зна-
Для корреспонденции: Филатова Тамара Георгиевна, доцент, канд. мед. наук, зав. каф. инфекционных болезней с курсом эпидемиологии, ПГУ, e-mail: [email protected]
чимостью, клинико-эпидемиологическими особенностями, большой частотой генерализованных форм и высокой летальностью менингококковая инфекция (МИ) остается одним из актуальных вопросов здравоохранения [8, 10].
В мире МИ распространена повсеместно. Ежегодно, по оценкам ВОЗ, регистрируется более 300 тыс. случаев МИ в мире с 30 тыс. летальных исходов (во время эпидемий эти цифры значительно возраста-
