CC BY
6
Обзоры
УДК 614.718:613.48(47)
Канд. мед. наук В. J1. Евдоккмов
ОДЕЖДА КАК ФАКТОР МИКРОБНОГО ОБСЕМЕНЕНИЯ ВОЗДУХА
Всесоюзный научно-исследовательский институт гриппа Министерства здравоохранения
СССР, Ленинград
Повседневная одежда людей, некоторые виды специальной рабочей одежды (халаты, костюмы, косынки, колпаки и т. п.), постельные принадлежности (матрацы, одеяла, подушки, простыни), мягкий инвентарь (ковры, шторы, мягкая мебель и т. д.) давно привлекают внимание исследователей как потенциальные и нередко реальные источники распространения воздушной микрофлоры, в том числе и патогенной. Эта микрофлора существенно влияет на санитарно-гигиеническое состояние воздушной среды в жилых и общественных помещениях, а в условиях госпитальной и особенно хирургической практики ее роль неизмеримо возрастает. С жесткими требованиями к микробной чистоте воздуха в помещениях и к чистоте одежды персонала связано развитие гнотобиологии и гнотобиологи-ческой техники (О. В. Чахава; Reyniers). Высокие требования того же характера предъявляет микробиологическая, фармацевтическая, ферментная промышленность, производства антибиотиков и вакцинно-сывороточ-ных препаратов и др. (С. А. Джарылгасов и соавт.; Gay и Gallin; Krüger).
В обсеменении одежды самое непосредственное участие принимает микрофлора кожных покровов человека, которая даже у здоровых людей отличается значительным видовым и количественным разнообразием в зависимости от санитарно-гигиенических условий быта и характера производственной деятельности. (Т. П. Аникина и М. Г. Танасейчук; Г. А. Башмаков; В. Д. Беляков и соавт.; М. И. Козарь; В. А. Мартынова и Г. Л. Ермакова; Holt; Gibbs и Stuttard; Pazdiora).
Согласно данным Sommerville и Noble, методом отпечатков на 1 см3 кожи здоровых людей обнаруживается обычно не более 200—300 бактериальных колоний, тогда как с помощью соскобов — до 200 тыс. — 1 млн. бактериальных клеток. Selvin и Ellis считают, что методы смывов и отпечатков позволяют определить примерно в 200 раз меньше микробов, чем их в действительности находится на кожных покровах человека. Используя метод биопсии, эти авторы на 1 см2 кожи груди находили около 4400 бактерий, а в подмышечной области — до 400 тыс. Вообще же наиболее обсемененными, как правило, являются подмышечные впадины, паховая область и межпальцевые промежутки стоп (Sommerville и Noble; Selvin и Ellis). На коже здоровых людей чаще других обнаруживают стафило-, стреп-то- и микрококки, бактерии родов Escherichia, Proteus, Klebsiella Fla-vobacterium, спорообразующие аэробные палочки, грибы рода Candida (Т. П. Аникина и М. Г. Танасейчук; В. А. Мартынова и Г. Л. Ермакова; Gibbs и Stuttard; Sommerville и Noble; Aly и соавт.). При некоторых видах производственной деятельности, например у животноводов, у рабочих шерсте- и кожеобрабатывающей промышленности, сотрудников микробиологических лабораторий и т. п. на коже могут обнаруживаться и патогенные микробы.
Степень чистоты кожных покровов — лишь один из многих факторов, определяющих интенсивность загрязнения одежды микробами. Последняя зависит также от вида ткани, используемой для пошива одежды, продолжительности ее носки, чистоты воздуха в помещениях, устойчивости обсеменяющих одежду микробов к изменению влажности, воздействию
3*
67
солнечных "лучей и т. д. Через 5—7 дней носки обсеменен ноет ь белья возрастает в 10—20 раз"* (П. А. Вавилин) и даже, как свидетельствуют Za-iicka и Nowakowska-Waszczuk, — в 100—1000 раз. Здесь, как и в случае определения микробной обсемененности кожных покровов, результаты исследования во многом зависят от метода отбора проб. Для этого используют следующие приемы: отмывание образцов тканей в жидкости (Л. Г. Гусь-кова), смывы с ткани увлажненными тампонами (Е. В. Гарасько; А. С. Ла-бинская), соскобы скальпелем с поверхности ткани (А. И.Шафир и H. М. Пан-шинская), отпечатки с ткани на поверхность питательного агара (Т. П. Сомов; 3. С. Четверикова; А. И. Шафир и H. М. Паншинская; Favero и со-авт.), встряхивание ткани над поверхностью агара (П. А. Вавилин; А. И. Шафир и H. М. Паншинская; McQuade и Sutherland), отсасывание микробов из ткани аспирационными приборами (В. Л. Евдокимов и соавт.; Л. И. Тращенко). В опытах Л. Г. Гуськовой сорочки с нашитыми изнутри бязевыми тестами носили в летнее время. Через неделю носки при отмывании тестов в жидкости с ее посевом на агаровую'среду на 1 см2 обнаруживали около 20 тыс. бактерий. А. И. Шафир и H. М. Паншинская, используя метод встряхивания, на 1 см2 поверхности шерстяной одежды находили 13—83, а на медицинских халатах — 5—10 бактериальных частиц, причем эти уровни возрастали в 2—12 раз при пользовании одеждой в течения 30 дней.
На медицинских халатах в хирургической и онкологической клиниках П. В. Федотов определял на 1 см2 ткани в среднем 2 бактериальные колонии методом встряхивания и 11—19 колоний с помощью отпечатков. Эта микрофлора состояла из аэробных спорообразующих бактерий, гемолитических стрепто- и стафилококков, плесневых грибов. Методом отпечатков на халатах, используемых в операционных и перевязочных, после 2—3 дней носки обнаруживалось 8—19, а в родильном доме — 40—60 бактериальных колоний на 1 см2. Таким образом, в разных лечебных учреждениях со повышенными требованиями к чистоте воздуха и одежды на халатах персонала содержалось от 40 тыс. до 1,2 млн. бактериальных частиц (в пересчете на 2 м2 ткани).
Золотистый стафилококк на шерстяной ткани сохраняет^жизнеспособ-ность до 15 дней, а на хлопчатобумажной — намного меньше (Rountree). По данным Wilkoff и соавт., сохраняемость этого кокка на 2 видах шерстяных и 4 видах хлопчатобумажных тканей при 25° и относительной влажности 35% выше, чем при влажности 78%. В то же время при влажности 35% стафилококк, нанесенный на образцы тканей аэрозольным способом, оказался устойчивее по сравнению со суспензионным способом заражения. Sidwell и соавт., а также Dixon и соавт. установили, что на указанных тканях вирусы полиомиелита и осповакцины при влажности воздуха 35% сохраняются в активном состоянии дольше, чем при влажности 78%. С другой стороны, в условиях влажности 35% вирус осповакцины жизнеспособен на шерстяных тканях в течение 8—12 нед, а на хлопчатобумажных — 4—8 нед, тогда как вирус полиомиелита — соответственно 8—10 и 1—2 нед. О значительной устойчивости вируса оспы к высушиванию на тканях сообщают также Downie и соавт.
Значительным источником обсеменения одежды является микрофлора, находящаяся в воздухе и на поверхностях и тесно связанная с пылевым фактором воздушной среды. В воздухе помещений вследствие процессов седиментации и конвекции происходит непрерывный и достаточно быстрый круговорот пыли, состоящей в основном из частиц органического происхождения. При этом до 99% находящихся в воздухе микробов фиксировано на пылевых частицах, что особенно характерно для нежилых, например, лабораторных помещений (Williams и соавт.). В жилых помещениях удовлетворительным по чистоте считается воздух, содержащий не более 4500—6000 бактерий в 1 м3 (А. И. Шафир; Б. Д. Васильев). В хирургических операционных этот показатель не должен превышать 300—700, а
в ряде случаев, когда особенно опасно инфицирование из воздуха, — 70 бактерий (Kanz; Sprössig и Petzoldt).
Видовой состав микрофлоры воздуха в помещениях разного назначения отличается большим разнообразием. Наиболее часто из воздуха выделяют грамположительные кокки и палочки, грамотр и нательные бактерии, актиномицеты, дрожжевые и плесневые грибы (В. В. Влодавец; С. С. Речменский).
В лабораторных опытах с бактериальными аэрозолями В. Д. Беляков и соавт. показали, что одежда эффективно защищает закрытые части тела (спину, область бедра), степень контаминации которых оказывается в сотнн раз меньшей, чем на открытых участках. Однако сама одежда при этом за счет гравитационного и инерционного осаждения на нее микробов очень быстро (всего через несколько минут) обсеменяется микробами, присутствующими в воздухе данного помещения (Adams и соавт.; Chatigny; Ederer; Gay и Gallin). Одновременно с этим происходит практически непрерывное выделение микробов с одежды в воздух. Так, А. И. Шафиром и Н. М. Паншинской установлено, что с одежды при движении, работе, переодевании в течение дня выделяется в воздух до 1 млн. пылевых частиц, многие из которых несут в себе микроорганизмы, причем наиболее легко в воздух переходят частицы с эквивалентным диаметром от 2 до 20 мкм. С учетом же всех частиц, имеющих размеры более 0,3 мкм, пылевыделение от человека, совершающего руками и туловищем движения средней интенсивности, составляет 60 млн. частиц в час (Austin и Timmerman). А. И. Шафир и Н. М. Паншинская показали, что при встряхивании одежды в течение 3—4 мин количество бактерий в 1 м3 воздуха возрастало с 2—3 тыс. до 12—28 тыс, одновременно отмечалось появление относительно крупных пылевых частиц размером 1—5 мкм, до этого почти отсутствовавших в воздухе помещения. В больницах основными источниками пыли и микрофлоры являются постели, особенно одеяла, а также одежда больных и персонала (П. В. Федотов; Bodey и Johnston; Maisonnet и соавт.; Rubbo и соавт.). С помощью каскадного импактора Андерсена установлено, что в госпиталях 52% выделяемых из воздуха бактерий связано с пылевыми частицами размером до 5 мкм, а остальные — с более крупными частицами (Green и соавт.).
В опытах Rubbo и соавт. показано, что при нанесении на несколько одеял Staph, citreus уже через 3 ч он обнаруживается на всех постелях в хирургическом отделении на 20 коек. В условиях прачечной, как установили Ayliffe и Collins, возможен перенос микробов воздушным путем с грязного белья на чистое. Ederer показано, с какой легкостью бактерии могут генерироваться с одежды в воздух. Лаборант в одежде, контаминированной из аэрозоля клетками Ser. marcescens или Sarc. flava, последовательно заходил в несколько чистых помещений. Оказалось, что даже кратковременного захода (вход — выход) вполне достаточно, чтобы тест-бактерии обнаруживались в воздухе в количествах, достигающих 10% их концентрации в предыдущем помещении. В экспериментах Sidwell и соавт. вирусы полиомиелита и осповакцины легко переносились с высушенных образцов шерстяных, хлопчатобумажных и синтетических тканей на стерильные образцы при беспорядочном взаимном перемещении тех и других во вращающемся барабане. При этом перенос вируса полиомиелита с образцов, зараженных аэрозольным способом, оказался более значительным, чем в случае контактного (суспензионного) заражения. Это, по-видимому, можно объяснить менее тесной связью вируса с элементами ткани в случае аэрозольного заражения.
Подобная возможность подтверждается и нашими исследованиями (В. Л. Евдокимов и соавт.) с образцами хлопчатобумажной ткани, конта-минированными указанными способами спорами вакцины СТИ-1. В этих исследованиях в качестве аспирационного пробоотборника использован импактор Андерсена, снабженный специальной насадкой для фиксирова-
ння образцов тканей. Это позволило определить количество споровых частиц, извлекаемых потоком воздуха из ткани, их распределение по размерам и степень загрузки спорами. На основании полученных результатов был сделан вывод, что при контактном заражении споры, дезагрегированные в основном до отдельных клеток, оказываются тесно связанными с ворсинками ткани, которые при выделении бактерий в воздух выступают в роли их носителя. В случае же аэрозольной контаминации вторичный бактериальный аэрозоль, образующийся при прохождении через ткань потока воздуха, в значительной мере состоит из полидисперсных споровых агрегатов, по-видимому, в основном не связанных с ворсинками ткани.
Для изучения процесса выделения микробов с поверхности тела и одежды людей созданы специальные вентилируемые, стерилизуемые камеры ограниченного объема (около 1 м3). Sciple и Riemensuider, используя такую камеру, нашли, что количество выделяемых в воздух аэробных бактерий не всегда постоянно: у одного из добровольцев, одетого в обычную одежду, обнаружили выделение в воздух 3 тыс., тогда как у другого — 62 тыс. бактериальных частиц в минуту. May и Рошегоу при подобных исследованиях в камере в опытах с 28 добровольцами (женщины и мужчины) в воздухе за 1 мин обнаружили в среднем 1000 бактериальных частиц. От 27 до 45% бактериальных частиц приходилось на фракцию более 60 мкм, 15—19% — на фракцию 20—60 мкм, 33—46% — на фракцию 5—20 мкм, 6—7% частиц имели размер до 5 мкм.
Для освобождения одежды, постелей и мягкого инвентаря от пыли и микробов предложены различные способы. Уже простое сухое обеспыливание с помощью отсасывающих устройств заметно снижает количество пылевых частиц и микробов на одежде (Р. А. Кучерский; А. И. Пирумов и соавт.; Shaffer и соавт.). Однако таким способом А. И. Пирумову и со-авт. удавалось удалять со спецодежды до 80—85% пылевых частиц размером более 5—10 мкм, a Shaffer и соавт. с поверхности ковров из шерсти и акрилана —до 84—96% бактерий. Высокоэффективны при обычной температуре аэрозольный и газовый методы дезинфекции одежды и постельных принадлежностей с использованием аэрозолей дихлоргидантонна и перуксусной кислоты (М. П. Веселов и А. И. Осипова), паров формальдегида (Alder и соавт.) и p-пропиолактона (М. П. Веселов и А. И. Осипова; Kiel), газообразной окиси этилена (В. С. Антонов). Дезинфекцию парами формальдегида рекомендуют сочетать с химической чисткой (Reploh; Os-tertag; Wolf и Bobalek). Однако в больничной и лабораторной практике эти методы пока не получили должного распространения, а широко применявшаяся ранее дезинфекция белья и одежды замачиванием в растворах лизола, формалина, хлорсодержащих препаратов и других классических дизенфекционных средств со временем была вытеснена автоклавированием, паровоздушной и пароформалиновой обработкой из-за сравнительной простоты их проведения, большей экономичности и надежности.
Обычная стирка постельного белья в стиральной машине снижает количество обсеменяющих бактерий (Staph, aureus и Ps. aeruginosa) в 500 раз, а вирусов полиомиелита и осповакцины — в 200 раз (Sidwell и соавт.; Wilkoff и соавт.). Коли-фаги и Ser. marcescens начинают отмирать при температуре воды 46°, а при 68° полностью гибнут, тогда как золотистый стафилококк частично, а споры бактерий полностью сохраняются (Wiksell и соавт.). Это согласуется с данными Ayliffe и Collins, установивших, что выстиранное машинным способом и прополосканное белье все еще значительно загрязнено бактериями. Обычная стирка не приводит к полной гибели вирусов полиомиелита, гриппа и герпеса (Wasilewski и Koberg; Sidwell и соавт.). При этом показано, что стерильные образцы тканей заражаются вирусом полиомиелита при совместной стирке с обсемененными образцами (Sidwell и соавт.), что установлено также и в отношении бактерий при стирке постельного белья (Wiksell и соавт.). Добавление небольших количеств дезинфектантов (четвертичных аммониевых соединений,
производных фенола) при стирке с использованием обычных моющих средств приводит к снижению уровней обсеменения тканей бактериями и вирусами на 5—7 порядков (Sidwell и соавт., Wilkoff и соавт.). Губительное действие дезинфектантов при стирке установлено в отношении золотистого стафилококка, микрококков протея, кишечной, синегнойной и туберкулезной палочек, вирусов полиомиелита и осповакцины (Dickinson и соавт.; Dickinson и Wagg; Sidwell и соавт.). Показано также, что формалин, добавленный в воду для стирки и полоскания белья, оказывает пролонгированное губительное действие на микрофлору, вновь контаминирующую выстиранные изделия при их последующем использовании (Alder и соавт.; Dickinson и соавт.; Dickinson и Wagg).
Принципиально новым подходом к обеспечению микробной чистоты одежды явилось создание тканей, обладающих антимикробной активностью, которая достигается импрегнацией дезинфектантами, чаще всего гексахлорофеном (Н. С. Плоткина; С. А. Блинкин и соавт.; Е. В. Гарась-ко; Sidwell и соавт.), или путем химического присоединения к макромолекуле целлюлозы ионов серебра, меди, йода, а также антибиотиков или других антимикробных препаратов (Н. С. Плоткина и А. Д. Вирник). Антимикробная активность таких тканей установлена в отношении золотистого стафилококка, кишечной и синегнойной палочек, вульгарного протея, гриба рода Candida, вируса осповакцины (С. А. Блинкин и соавт.; Е. В. Га-расько; Н. С. Плоткина; Н. С. Плоткина и А. Д. Вирник; С. Б. Красов-ская и соавт.; Sidwell и соавт.). Эта активность длительно сохраняется при носке сшитой из таких тканей одежды (Е. В. Гарасько), но постепенно утрачивается при ее многократной стирке, кипячении и автоклавировании (С. А. Блинкин и соавт.; Е. В. Гарасько; С. Б. Красовская; Н. С. Плоткина).
Анализ приведенных данных показывает закономерную связь между обсемененностью кожных покровов и одежды, а с другой стороны, микробной загрязненностью одежды и воздуха помещений. Это особенно характерно для чистых помещений, например хирургических операционных или цехов сборки космической аппаратуры, где весь объем вентилирующего воздуха подвергается стерилизующей фильтрации и постоянно поддерживается его избыточное давление. В этих условиях из воздуха выделяются в основном представители аутомнкрофлоры человека (кокки, грамотрица-тельные палочки, коринебактерии и т. п.), в меньшей степени — аэробные споровые бактерии, плесневые грибы, актиномицеты и другие виды почвенного происхождения, заносимые людьми на кожных покровах, одежде и особенно обуви с частицами пыли и почвы.
Немаловажным является выбор метода исследования микробной загрязненности одежды. Определение количества обсеменяющих микробов и их видовой принадлежности должно дополняться дисперсным анализом выделяемых с одежды микробных частиц.
В области развития методов гигиенической и дезинфекционной обработки одежды наряду с доминирующим положением термических способов необходимо отметить тенденцию более широкого применения при стирке поверхностноактивных моющих средств и дезинфектантов, а также доказанную эффективность аэрозольного и газового методов обеззараживания одежды. Весьма перспективно использование одежды, сшитой из тканей, обладающих антимикробной активностью. Имеющийся опыт применения такой спецодежды в условиях практики вселяет надежду на ее широкое применение в недалеком будущем прежде всего в госпитальной и лабораторной практике и в ряде отраслей промышленности, предъявляющих повышенные требования к микробной чистоте одежды и воздуха в рабочих помещениях.
ЛИТЕРАТУРА. Аникина Т. П., Танасейчук М. Г. — «Ж- микро-биол.», 1973, № 6, с. 53—58. —Антонов В. С. — Там же, 1968, № 9, с. 18—21. — Башмаков Г. А- — €Воен.-мед. ж.», 1959, № 4, с. 76—77. — Беляков В. Д.,
Иванов К- Г., И л ь ч е н к о А- А- — Там же, N° 5, с. 73—75. — Б л и н к и н С. А., Ливерант В.Л., Федоровская Е- А. и др. — «Ж- микробиол.», 1970, № 3, с. 139—139. — В а в и л и н П. А. — «Лабор. дело», 1965. N° 7, с. 441—444. — В а -сильев Б. Д. — Тезисы докладов и выступлений на Всесоюзной конференции по вопросам санитарной бактериологии. М., 1957, с. 38—39. — Веселов М-П, Ос и лова А-И.—«Ж-микробиол.», 1967, №12, с. 83—87. — Влодавец В. В. Основы аэробиологии. М., 1972. —Гарасько Е. В. — «Ж- микробиол.», 1973, № 8, с. 54— 56. —Гуськова Л- Г. — «Гиг. и сан.», 1961, N° 10, с. 35—40. — Джарылга-с о в С. А.. П а д а л к и н В. Н., Щукин Н. П. — Микробиол. пром.», 1973, № 3. с. 135—139. — Е в д о к и м о в В. Л., Курам шин Ю. В., К у ту ко в а А. И. и др. — «Гиг. и сан.», 1975, № 8, с. 55—58. — Козарь М. И- — «Космическая биол.», 1973, № 1, с. 72—75. — Красовская С. Б., Вирник А. Д., Плоткина Н. С- — «Хим. волокна», 1974, № 2, с. 54—54. — КучерскийР. А. — «Гиг. и сан.», 1966, N> I.e. 76— 78. — Л а б и н с к а я А. С. — «Ж- микробиол.», 1957, № 1, с. 122—124. —Мартынова В. А-, Ермакова Г. Л- — Там же, 1974, № 5, с. 118—119. — П и р у -мов А. И-, П о н ч е к М. И , Ш а р а п е н к о В. Г- — «Водоснабжение и сантехника», 1971, № 8, с. 20—25. — Плоткина Н. С. — «Ж- микробиол.», 1968, №9, с. 22—26.— Плоткина Н. С-, В и р н и к А. Д. — «Антибиотики», 1967, № 3, с. 245—248. — Речменский С. С. Очерки экспериментальной аэромнкробиологии. М., 1973.— Сомов Т- П. Экспериментальные материалы по изучению и оценке нового метода исследования микрофлоры поверхностей. Дне. канд. Л-, 1950. — Тращенко Л- И. — Тезисы докладов и выступлений на Всесоюзной конференции по вопросам санитарной бактериологии. М., 1957, с. 35—36. — Федотов П. В. — Тезисы докладов итоговой научной конференции Киргизск. ин-та эпидемиологии, микробиологии и гигиены. Фрунзе, 1958, с. 34—36. — О н же.—В кн.: Сборник трудов Киргизск. нн-та эпидемиологии, микробиологии и гигиены. 1959, вып. 4, с. 317—327. — Чахава О-В. Гнотобнология. М., 1972. — Ч е т в е р и к о в а 3. С. — «Гиг. и сан.», 1968, №4, с. 39—42. — Ш а -ф и р А. И. — Там же, 1956, № 9, с. 19—26. — Шафнр А. И., Паншин-ска я Н. М. — В кн.: Аэрогенные инфекционные заболевания и способы их предупреждения. Вып. 2. Л., 1953, с. 12—16. — О н и ж е. — Там же, с. 17—26. —Alder V- G-, Boss Е., G i 1 1 е sp i е W. А. et a.—«J. appl. Bact.», 1971, v. 34, p. 757—763,—A d a ms R. eta. — «J. Amer. Vet. Med. Ass.», 1959, v. 169, p. 1557—1567. — A 1 у R., M a i b а с h H. J. Shinefield H. et a. — «J. invest. Derm», 1972, v. 59, p. 205—210. — A n d e г -sen A. A. — «J. Bact.», 1958, v. 76, p. 471—484. —Austin Ph., TimmermanS. W. Design and Operation of Clean Rooms. Detroit, 1965. — В о d e у G-P- et a.—«Appl. Microbiol.», 1972, v. 22, p. 828—836. — С h a t i g n у M. A. — «Advanc. appl. Microbiol.», 1961, № 3, p. 131—192. —Dickinson J. С., W a g g R. E. — «J. appl. Bact.», 1966, v. 29, p. 357—364. — Idem. — Ibid., 1967, v. 30, p. 340—346. — Dickinson J.C., Wagg R. E-, L i t с h f i e 1 d S. — Ibid., 1970, v. 33, p. 566—573. — Dixon G. J., S 1 d w e 1 1 R.W., McNeil E. — «Appl. Microbiol.», 1966, v. 14, № 2, p. 183—188. — D о w n i e A. W., M e i k 1 e j о h n M., V i n с e n t L. et a. — «Bull. Wld Hlth. Org.», 1965, v. 33, p. 615. — E d e г e r G- M. — «Am- J. med. Technol.», 1965, v. 31, p. 108—120. — F a v e г о M. S., P uleo J. R., M a r s h a 1 1 J. H. et a. — «Appl. Microbiol.», 1966, v. 14, p. 539—551. — F a v e г о M. S., P u 1 e о J. R., M a r s h a 1 I J. H. et a. — Ibid., 1968, v. 16, p. 480—486. —Gay M-, G a 1 1 i n R. — «Pharm. Ind. (Aulendorf)», 1970, Bd 32, S. 1099—1104.—G i b bs В. M., S t u t t а г d L. W. — «J. appl. Bact.», 1967, v. 30. p. 66—77. —Green V- W., V e s 1 e у D., Bond R. С. et a. — «Appl. Microbiol.'», 1962, v. 10, p. 561—566. — H о I t R. J. — cj. appl. Bact.». 1966, v. 29, p. 625—630. — I d e m. — «J. med. Microbiol.», 1971, v. 4, p. 319—327. — К i -e I O- Experimenteller Beitrag zur Desinfektion von Waschgut mit Betapropiolakton. Mainz, 1961. — Krüger D. — «Drugs made Germany», 1972, Bd 15, № 4, S. 143—146. — Malsonnet M-, Hamburger J., Mollaret P. eta. — «Presse Med.», 1961, v. 52, p. 2385—2386. — M с Q u a d e A.B., Sutherland W. J. A. — «J. Hyg. (Lond.)», 1960, v. 58, p. 157—158. — О s t e r t a g H. — «Gesundh.-wes. Desinfekt.», 1962, №4, S. 49—53. — P а г d i о г а А. — «Z. Bakt. I. Abt. Orig. В,» 1972, Bd 155, S. 420—423. — R e p 1 о h H. — «Gezundh.-wes. Desinfekt.», 1962, № 2, S. 17—23. — ReyniersJ.A. — «Ann. N. Y- Acad. Sei.», 1959, v. 78, p. 47. — R о u n t г e e P. M. — «J. Hyg. (Lond.)», 1963, v. 61, p. 265—272. — R u b b о S. D., S t r a t f о r d B.C., Dixon S- — «Brit. med. J-», 1962, № 5300, p. 282—287. — S с i p 1 e G. W., R i emensu i der D. K- — «Appl. Microbiol.», 1967, v. 15. p. 1388—1392. — S e 1 w у n S., E 1 1 i s H. — «Brit. med. J.», 1972, v. 1, p. 136—140. —Shaffer J.-G-, Key J., T h о m a s B. — «Med. Hist.», 1966, v. 107, p. 166—174. — S i d w e I 1 R.W.,Dixon G-J.,Mc Neil E. — «Appl. Microbiol.», 1966, v. 14, p. 55—59. — Idem. — Ibid., 1967, v. 15, p. 921—927. — Sid-well R. W., Dixon G.J., Westbrook L. et a. — Ibid., 1970, v. 19, p. 950— 954. — I d e m. — Ibid., 1971, v. 21, p. 227—234. — S i d w e I 1 R. W., West brook L., Dixon G- J. et a. — Ibid., 1970, v. 19, p. 5?—59. - Sommerville D. A., Noble W. C. — «J. med. Microbiol.», 1973, v. 6, № 3, p. 323—328. — Idem.— «Rev. Europ. Etud. clin. Biol.», 1970, v. 15, p. 669—671. —Sprössig M., Petzoldt G- — «Z. ges. Hyg.», 1964, S. 162—168. — Wasielewski E., Koberg W. — «Arch. Hyg. Bakt.». 1961, Bd 145, S. 44—60. — W i k s e 1 1 J. С., Pickett M. S.Hart-man P. A.—«Appl. Microbiol.», 1973, v. 25. p. 431—435. — W i I k о f f L. J., Westbrook L., Dixon G. J. — Ibid., 1969, v. 17. p. 268—274.—
Wilkoff L. J. DixonG. J., West brook L. et a. — Ibid., 1971, v, 21, p. 647—652. Williams R. Е- O., Blowers R., G a г г о d L. P. et a. — Hospital Infection: Causes and Prevention. London, 1960, p. 288—290. — W о 1 f P., Bobalek F. J. — Пат. США № 3649166, 1972. — Z a 1 i с к а В., Nowakowska-Waszczuk A. — «Pastepy Mikrobiol.», 1969, v. 8, p. 149—152.
Поступила 18/1X 1975 г.
За рубежом
УДК 614.7:54
П. Кольковски (София)
К ВОПРОСУ О ПОВЕДЕНИИ В ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЕ ХИМИЧЕСКИХ
ЗАГРЯЗНИТЕЛЕЙ
По нашему мнению, под химической вредностью надо понимать естественный или искусственно созданный химический компонент, выделяющийся в окружающую среду в твердом, жидком или газообразном состоянии, количественно и качественно несоответствующий свойствам биомассы, вследствие чего он несовместим с ее нормальным существованием и развитием. Несмотря на большое разнообразие химических вредностей они по своему действию составляют относительно самостоятельное единое целое, которое вызывает новые, неизвестные до сих пор процессы и явления в окружающей среде. В результате этого в той или другой степени необратимо нарушается существующее равновесие в природе. Выделенные в окружающую среду химические вредности под влиянием многочисленных факторов претерпевают сложные трансформации. Полученные благодаря этому продукты в сочетании с синергическими или антагонистическими комбинациями усиливают, ослабляют или элиминируют свое воздействие на экологическое равновесие.
Из абиотических процессов особое значение для поведения химических вредностей имеют атмосферные процессы (солнечная радиация, размещение воздушных масс в тропосфере), процессы в гидросфере (переход воды в 3 агрегатных состояниях, морские течения и все другие процессы, связанные с круговоротом воды и относящиеся к неживой природе) и геологические процессы (эрозия почвы, подземные гидрологические и геологические процессы, вулканическая деятельность и другие тектонические изменения). Абиотические процессы вызывают изменения химических вредностей, механически связанные с их формой (если они в твердом состоянии) и со сравнительно равномерным распределением в среде. Подобная зависимость отмечается наиболее четко по отношению к воздуху и воде, в отношении же почвы она незначительна. Кроме того, абиотические процессы вызывают физико-химические изменения, т. е. такие, которые связаны с физико-химическими свойствами химических вредностей.
Существенное значение для поведения химических вредностей в окружающей среде, особенно для их концентрации, распределения и миграции, имеют и биотические процессы.
Первоначально химические вредности поступают в составных элементах первой подсистемы — геосферы (почва, воздух, вода). В таком смысле эта подсистема служит первоначальным приемником химических вредностей, выделяющихся в окружающую среду. Здесь происходит и их первоначальное количественное накопление. Независимо от места первоначального поступления химических вредностей (в почве, воздухе или воде) они
