CC BY
9
43. Mossel D. et al. —Zbl. Bakt. I. Orig. B, 1977, Bd 165, S. 498—516.
44. Némedi L., Lanyi B. — Egészsegtudomâny, 1970, vol. 14, p. 334—341.
45. Ortiz J. et al. —In: Conf. Sei. Res. Nat. Parks. 1-st. Abstracts. Amherst, 1976, p. 51.
46. Qualités Microbiol, des eaux potable. Hygiene du milieu; document sur les critères Pseudomonas aeruginosa. Ottava, 1977.
47. Reinhardt D. et al. — Dev. Industr. Microbiol., 1979, vol. 20, p. 705—721.
48. Reitler R., Seligmann R. — J. appl. Bact., 1957, vol. 20, p. 145—150.
49. Ringen L„ Drake C. — J. Bact., 1952, vol. 64, p. 841 — 845.
50. Ritter C., Treece E. — Amer. J, publ. Hlth, 1948, vol. 38, p. 1532—1538.
51. Salmen P. et al. — J. A.M. A., 1983, vol. 250, p. 2025— 2026.
52. Savage T., Stratton ¿. — Appl. Microbiol., 1971, vol. 22, p. 809—811.
53. Schmidt-Lorenz U7. —Brauerei Rundschau, 1983, Bd 94, S. 62—72.
54. Schroth M. et al. — In: Pseudomonas Aeruginosa, Eco-
logical Aspects and Patient Colonization./Ed. V. M. Young. Washington, 1977, p. 1—29.
55.Schwaller P., Schmidt-Lorenz \V. — Zbl. Bakt. 1. Orig., 1980, Bd 101, S. 330—347.
56. Schwaller P., Schmidt-Lorenz W. — Brauerei Runschau, 1982, Bd 93, S. 53—56.
57. Selenka F., Ruschka R. — Arch. Hyg., 1965, Bdl49, S. 273—287.
58. Standard Metode za fizicko-hemijsko i bacleriolosko ispitivanje voda. Beograd, 1961.
59. Standard Methods for the Examination of Water and Wastwater. Washington, 1971.
60. Standard Methods for the Examination of Water and Wastwater. Washington, 1976.
61. Taylor E. Windle. The Examination of Water and Water Supplies. London, 1958.
62. Thomas S., Thomas B. — J. appl. Bact., 1955, vol. 18, p. 312—321.
63. Topley and Wilso's Principles of Bacteriology and Immunology./Ed. G. Wilson, A. Miles. London, 1964, vol. 1—2.
64. Weber G„ Werner IL. Matschigg H. — Zbl. Bakt. I. Orig., 1971, Bd 216, S. 210—214.
nocryniiJia ¡0.07.85
Из практики
УДК 614.777:628.162.841-078 + 628.162.84:628.1.03:579.083.12
А. К. Маслов, В. А. Зенков, С. В. Нестеров, О. Н. Рощин, В. Н. Шаталина, Е. С. Кусова, Т. Н. Шувалова, 3. П. Ванчугова,
Е. Г. Князькина
НЕДОСТАТКИ МЕТОДА САНИТАРНО-БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОГО АНАЛИЗА ВОДОПРОВОДНОЙ ХЛОРИРОВАННОЙ ВОДЫ
Кемеровская областная санэпидстанция
В работах зарубежных авторов показано, что бактериологические методы контроля питьевой воды имеют определенные недостатки и во многих случаях, получаемые с помощью этих методов показатели качества воды, не дают объективной информации об эпидемической опасности [2, 4, 6, 8]. Такое положение связывают с тем, что микроорганизмы, в том числе относящиеся к бактериям группы кишечной палочки (БГКП), под влиянием неблагоприятных факторов и особенно хлора, используемого для обеззараживания воды, подвергаются сублетальным воздействиям. Эти бактерии, находящиеся в угнетенном состоянии, как правило, не удается выявить на обычных питательных средах, а для их обнаружения предлагается использовать различные модификации сред, удлинять сроки инкубации и др. [3, 5, 7, 8], что позволяет получить дополнительную информацию в 20—80% проб исследуемой воды.
В нашей стране метод санитарно-бактериологи-ческого анализа воды регламентируется ГОСТом 18963—73. В литературе нет указаний на недостатки метода. В работе Ю. Г. Талаевой и соавт. [1] лишь подчеркивается значительное угнетение
признака ферментации лактозы у БГКП, выявляемых при исследовании водопроводной воды.
Опыт проводимого нами эпидемиологического анализа заболеваемости кишечными инфекциями при вспышках и сезонных подъемах в отдельных случаях свидетельствует о водном пути распространения возбудителей, при этом показатели бактериологического качества воды часто оставались без существенных изменений.
Обращало на себя внимание и то, что качество воды по бактериологическим показателям при исследовании стандартным методом соответствовало требованиям ГОСТа «Вода питьевая» уже с первых этапов очистки после первичного хлорирования речной воды с высоким уровнем бактериального загрязнения.
Все перечисленные факты явились основанием для проведения экспериментальных исследований с целью проверки достоверности показателей са-нитарно-бактериологического качества питьевой воды, получаемых регламентируемым методом.
В 5 бактериологических лабораториях санитарно-эпидемиологической службы при исследовании проб водопроводной хлорированной питьевой во-
Результаты исследования хлорированной водопроводной воды
S Количество проб, в которых
O- o Исследуемая вода по о и обнаружены БГКП
CT3 X
c. виду водоисточника и в том числе
о о схеме очистки всего по удлиненной
03 с; методике
1?, §1 абс. % абс. %
1 Открытый водоем.
Коагуляция, филь-
трация, первичное и
вторичное хлориро- 197
ван ие 34 17,2 16 8,1
2 Открытый водоем.
Только гиперхлори-
рование 160 45 28,1 19 11,9
3 Открытый водоем.
Фильтрация, пер-
вичное и вторичное
хлорирование 45 12 26,7 9 20
4 Открытый водоем. Ко-
агуляция, фильтра-
ция, первичное и
вторичное хлориро-
вание 98 17 17,3 11 11,2
5 Подземные воды.
Только хлорирова-
ние 214 58 27,1 24 11,2
Итого . . . 714 166 23,2 79 11
ды бродильным методом в соответствии с ГОСТом часть проб (отобранных в один из дней недели на протяжении всех сезонов года) исследовали по «удлиненной методике», состоящей в том, что посевы на глюкозопептонной среде (ГПС) после суточной инкубации и анализа по ГОСТу не сбрасывались, а вновь помещались в термостат при 37 °С на сутки. Из объемов, в которых среда изменялась (муть, кислота, газ или муть, кислота), делался высев на среду Эндо (в модификации или с молоком) и дополнительно на обычную среду Эндо. Плоские среды просматривали через 24 и 40—48 ч инкубации при 37 °С. БГКП идентифицировали по ГОСТу (оксидазный или прстеоли-тический тест, микроскопия, ферментация глюкозы до кислоты и газа). При определении общего микробного загрязнения результат дополнительно учитывали через 48 ч выдерживания в термостате.
Всего исследовано более 700 проб водопроводной воды из разных источников водоснабжения (открытые водоемы, артезианские скважины) с различной схемой очистки (см. таблицу).
Полученные результаты показали, что удлинение сроков инкубации на ГПС до 48 ч позволяет почти в 2 раза повысить число проб воды, содержащих БГКП. Удлинение сроков инкубации на средах Эндо дает сравнительно небольшой прирост положительных находок. Однако на среде Эндо в модификации (с добавлением розоловой кислоты и основного фуксина) часто рост бактериальной флоры отсутствует, в то время как на
обычной среде Эндо при высеве из тех же проб отмечается рост колоний, в том числе БГКП. На среде Эндо с молоком при учете протеолитиче-ской активности получены ложноположительные результаты: из 47 изученных проб с ростом про-теолизположительных колоний 12 были отнесены к БГКП (разлагали глюкозу и лактозу до кислоты и газа, грамотрицательны).
Показатели общего микробного загрязнения через 48 ч инкубации возрастали в среднем на 50— 80% по сравнению с учтенными через 24 ч.
Использование удлиненной методики бактериологического исследования воды по сезонам года давало разные результаты. Так, в зимние месяцы удлинение инкубации на ГПС увеличивало число проб с положительными находками БГКП в 2 раза и более по сравнению со стандартным сроком инкубации. При этом коли-титр нестандартных проб воды после дополнительной инкубации, как правило, изменялся и становился еще ниже.
Удлинение сроков инкубации в другие сезоны года, особенно в летние месяцы, значительно реже давало положительный результат, а коли-титр нестандартных анализов от продления инкубации в большинстве случаев не изменялся. Такая особенность, наблюдалась при исследовании водопроводной воды, получаемой из открытых водоисточников с полной схемой очистки. Результаты же бактериологического исследования питьевой воды из подземных источников по сезонам года существенно не различались.
Таким образом, проведенные экспериментальные исследования подтвердили предположение о низкой достоверности результатов санитарно-бактериологического качества водопроводной хлорированной воды, получаемых бродильным методом по ГОСТу 18963—73. Удлинение инкубации на ГПС до 48 ч с применением обычной (без добавления реактивов) среды Эндо позволяет почти в 2 раза увеличить число проб воды с наличием БГКП.
Низкая результативность удлинения сроков инкубации в отдельные периоды года, зозможно, связана со значительными колебаниями водородного показателя (pH) водопроводной воды от 6,0 до 8,5 в различные сезоны, что может приводить к значительному сдвигу исходного pH ГПС и существенно влиять на рост и видовой состав бактериальной флоры.
Литература
1. 'Галаева Ю. Г., Артемова Т. 3., Рябченко В. А., Ски-дальская А. М. — В кн.: Научное обоснование гигиенических мероприятий по оздоровлению объектов окружающей среды. М., 1983, с. 92—96.
2. Bissonnette G. К-, Jezeski J. J., McFeters G. A., Stuart D. G. — Appl. Microbiol., 1975, vol. 29, p. 186—194.
3. Bonde G. J. — Antonie van Leeuwenhoek, 1982, vol. 48, p. 620—623.
4. Dawe L. L., Penrose W. R. — Appl. environtn. Mikrobiol., 1978, vol. 35, p. 829—833.
5. Evans T. M„ Waruick С. E.. Seidler R. !.. LeGhe-
vallier M. W. — Ibid., 1981, vol. 41, p. 130—138. Appl. environm. Microbiol., 1983, vol. 45, p. 484—192.
6. Klein D. A., WuSlienyuh — Appl. Microbiol., 1974, vol.27, 8. Seidler R. J., Evans Т. M.. Kaufman J. R. ct al.— p. 429—431. J. Amer. Water Works Ass., 1981, vol. 73, p. 538—542.
7. LeChevallier M. \V., Cameron S. C„ McFeters G. Л.— Поступила, 28.05.85
УДК 618.6-082.4:725.51+613.5:725.51:618.6-082.4
Л. А. Швецов
ГИГИЕНИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ПЛАНИРОВКИ ПОСЛЕРОДОВЫХ ФИЗИОЛОГИЧЕСКИХ ОТДЕЛЕНИЙ АКУШЕРСКИХ СТАЦИОНАРОВ
Ленинградская областная санэпидстанция
Проведена гигиеническая оценка архитектурно-планировочных решений послеродовых физиологических отделений в 68 акушерских стационарах вместимостью до 320 коек в 20 областях и республиках второй строительно-климатической зоны.
В послеродовых физиологических отделениях родильных домов на 100—320 коек, акушерских стационаров участковых и районных больниц на 150—250 коек (серии 254-1-91, 252-01-112, 252-01-120) детские комнаты изолированы от материнских палат шлюзом и оъединены в отделения новорожденных. При раздельном размещении матери и ребенка родильнице обеспечен нормальный отдых после родов, за новорожденными ухаживает специально подготовленный медицинский персонал.
Из литературы известно, что непосредственный контакт новорожденного с персоналом детского отделения родильного дома способствует инфицированию детей госпитальной микрофлорой, свойственной данному стационару. Обсеме-нснность золотистым стафилококком слизистых оболочек носа и зева новорожденных составила 11,9%, кожи — 12%, пупков — 19% [2].
Значительного снижения госпитальной инфекции среди матерей и новорожденных в родильных домах удается добиться путем размещения матери и ребенка в отдельном боксе, полубоксе или однокоечной палате [1].
3 нашей стране разработаны и построены акушерские стационары для совместного пребывания матерей и новорожденных. Однако в действующих нормативных документах по проектированию лечебно-профилактических учреждений вопросы планировки акушерских стационаров совместного пребывания матери и ребенка не отражены. Изучение планировки послеродовых физиологических отделений совместного пребывания в родильных учреждениях на 30—240 коек показало, что послеродовые палаты рассчитаны на одну мать и новорожденного, имеют увеличенную площадь (7—9 м2 на мать и 5—6 м2 на ребенка). Палаты оборудованы душем к санузлом; в них установлены специальные умывальники с высоким изливом струи и столы для ин-
дивидуального пеленания. Перед входом в палаты запроектированы шлюзы.
Учитывая, что в послеродовых физиологических отделениях могут лежать женщины после оперативного родоразрешения, страдающие тяжелыми экстрагенитальными заболеваниями, для них в отделениях совместного пребывания выделены специальные секции с палатами интенсивной терапии. Вместимость секций от 15 до 30 % коек послеродовых физиологических отделений совместного пребывания (родильный дом на 130 коек, акушерское отделение на 30 коек).
В планировке отделений совместного пребывания предусмотрены архитектурно-планировочные решения, направленные на предупреждение внутрибольничных инфекций: шлюз, обеспечивающий изоляцию от других отделений стационара, наличие в составе отделений нескольких секций (групп палат, обслуживаемых одной медицинской сестрой и имеющих шлюз), которые можно закрывать на проветривание, не нарушая работы отделений.
Принцип секционного построения отделений, отсутствие детских комнат и проектирование палат на одну мать и ребенка позволяют отказаться от длинных коридоров как транспортных связей новорожденного и матери. Совместное пребывание матери и ребенка позволяет одномоментно заполнять палаты, исключает перемещение новорожденного по коридорам для кормления, обеспечивает постоянную близость матери к ребенку, что благоприятно действует на нее.
Как показали бактериологические исследования, общая обсемененность воздуха в послеродовых палатах для матерей достигала 8000 колоний в 1 м3, стафилококк выделен в 12 %, а в палатах совместного пребывания на одну мать и ребенка общая обсемененность воздуха составляла 2300 колоний в 1 м3, стафилококк обнаружен в 5 %.
При изучении планировки акушерских стационаров совместного пребывания брали смывы с оборудования, мягкого инвентаря, из носа, рук и одежды медицинского персонала и рожениц, с пупков новорожденных, сосков родильниц на стафилококк и грамотрицательную флору, и с-
