CC BY
4
Интенсивность мышечных напряжений, оцениваемая по интегрированной ЭМГ рабочей мышцы, была достоверно ниже при выполнении одинаковой работы инструментом с полотном № 2 по сравнению с инструментом с полотном № 1. При работе ножовкой с полотном № 3 биоэлектрическая активность также ниже, чем при работе инструментом с полотном № 1, а следовательно, ^ меньше и физиологическая цена работы.
Выраженность рабочих сдвигов со стороны середчно-сосудистой системы на единицу работы было также меньше при работе ножовкой с полотном № 2. Так, у младших школьников ЧСС на единицу работы составила 75+4 % от сдвигов, наблюдаемых при работе ножовкой с полотном № 1. Аналогичные результаты получены у старших школьников.
Таким образом, использованный нами системный подход к оценке инструментов для трудового ч обучения школьников позволил сделать следующее заключение. Для гигиенической оценки рабочего инструмента школьников необходимо применять специальные методические приемы, основанные на сопоставлении текущих величин физиологических функций и работы с вычислением ее физиологической цены.
Анализ антропометрических показателей, необходимых для обоснования отдельных парамет-
ров ручных инструментов для школьников, позволил выделить две возрастные группы: 4— 6-е классы и 7—8-е классы, в связи с чем для трудового обучения в школе необходимо наличие двух типоразмеров инструментов.
Комплексные экспериментальные исследования позволили рекомендовать ножовки с призматической формой ручки и технологическими характеристиками полотна, близкими к таковым используемых в производственной работе взрослых (для пиления дерева шаг зубьев 5 мм).
Литература
1. Зельдис И. В.// Школа и производство.— 1965. — № 9, —С. 21—23.
2. Петров Д. И. //Труд в школе и детдоме.— 1930. — № 1, — С. 12—13.
3. Петров Д. И. К вопросу нормирования инструментов. Педология. — 1930. — № 7. — С. 5—6.
4. Сальникова Г. П., Любомирский JI. Е. Столярные и слесарные инстэументы в школьных учебных мастерских,—М., 1962.
Поступила 26.04.88
Summary. Improvement of the industrial training programme needs optimization of tooling. The above problem can be solved through a systems approach. Special methodological procedures based on the comparison of actual values of physiological functions with the work's physiological value should be utilized for the hygienic assessment of the tooling used by schoolchildren.
УДК 614.446.37:016.995.751.2
А. Е. Эпштейн, В. Н. Осипова, Г. Ф. Петрухина, Л. И. Журавлева.
Т. Я. Сурина, Т. И. Рапина
МЕТОДЫ СНИЖЕНИЯ ОСТАТОЧНЫХ КОЛИЧЕСТВ ПЕДИКУЛИЦИДОВ НА БЕЛЬЕ ДО БЕЗОПАСНЫХ УРОВНЕЙ
ВНИИ дезинфекции и стерилизации Минздрава СССР, Москва
На современном этапе перед гигиеной и токсикологией стоят задачи углубления теории и методологии обоснования принципов регламентирования неблагоприятного воздействия химических факторов, в том числе и противопедикулезных средств, которые могут вызвать отравление людей.
Одним из способов борьбы с платяным педикулезом служит дезинфекция вещей. Для этой цели разрабатываются препаративные формы инсектицидов преимущественно на основе фосфороргани-ческих (ФОС) и пиретроидных соединений [6], которые являются биологически активными не только для целевых объектов, но и по отношению к теплокровным животным и человеку.
Основную опасность для лиу»различного возраста и состояния здоровья при контакте с бельем, прошедшим педикулицидную обработку, представляют остаточные количества инсектицида, способные резорбироваться через кожу.
В связи с этим целью нашего исследования была оценка реальных количеств педикулицидов из
групп ФОС и пиретроидов на тканях различного происхождения после их обработки в рекомендуемых эффективных режимах и разработка способов снижения содержания этих препаратов до безопасных уровней.
Были изучены следующие препараты: из группы ФОС— 50% препарат сульфидофоса (0,0-ди-метил-0 - (3-метил-4-метилтиофенил)тиофосфат, ОБУВ 0,3 мг/м3 [5] в виде 0,06 % водной эмульсии; 1 % дуст на основе сульфидофоса под названием «Сульфопин», содержащий в качестве действующего начала 0,7 % сульфидофоса; 50 % препарат белафоса (О-О-диметил-О-(2-диэтиламино-6-метнлпиридил)тиофосфат, ПДКр.з. 2 мг/м3 [2] в виде 0,25 % водной эмульсии; аэрозольный баллон «Педисульф», содержащий в качестве действующего вещества 0,6 % сульфидофоса; из группы пиретроидов — 50 % препарат анометри-на (смесь цис- и гракс-изомеров 3-феноксибензи-лового эфира 3-(2,2-днхлорфенил)-2,2-диметил-циклопропанкарбоновой кислоты; ОБУВр.3. 3 мг/м3 [1] в виде 0,5% водной эмульсии.
Использовали образцы тканей из хлопка, шерсти, синтетических (капрон) размером 10X10 см белого цвета, которые перед применением в опытах кипятили в течение 6—8 ч для удаления мешающих определению компонентов (контроль по методу газожидкостной хроматографии — ГЖХ) в растворителе, используемом для извлечения. Для получения достоверных результатов в каждом опыте использовали не менее 5 образцов ткани. Подготовленные образцы обрабатывали в эффективных педикулицидных режимах водными эмульсиями в количестве 1 л/м2, дустом — 10 г/м2, аэрозольным препаратом — 40—60 г/м2 при экспозиции 5—15 мин.
Анализ остаточных количеств всех педикули-цидов осуществляли методом ГЖХ на набивных колонках с использованием приборов серии ЛХМ-80, снабженных пламенно-ионизационным детектором. В качестве газа-носителя во всех опытах применяли гелий при скорости 40 л/мин, чувствительность шкалы электрометра во всех случаях составляла 20-Ю-12. При этом анализ сульфидофоса осуществляли на колонке из нержавеющей стали (2 мХЗ мм), заполненной хромосорбом (0,16—0,20 мм) с 10 % жидкой фазы 5Е-301, температура колонки (т. кол.) 220°С, температура испарителя (т. исп.) 240°С, время удерживания 3,5 мин. Анализ белафоса из-за разложения его на металлической колонке проводили на самостоятельно изготовленной стеклянной колонке (2 мХЗ мм), заполненной инертоном К-АХУ-НМОБ (0,200—0,250 мм) с 5% жидкой фазы БЕ-ЗО, т. кол. 200°С, т. исп. 240 °С, время удерживания 5 мин. Для ГЖХ-анализа белафоса, как нами установлено, могут быть использованы также альтернативные условия с применением детектора электронного захвата, хроматографа типа «Цвет», жидкой фазы 5 % ХЕ-60 и в качестве газа-носителя азота особой чистоты. При этом предел обнаружения снижается с 10 до 2,5 мкг/мл. Анализ анометрина осуществляли на колонке из нержавеющей стали (1 мХЗ мм), заполненной инертоном Ы-АШ-ОМСБ (0,200—9,250 м) с 5% жидкой фазы БЕ-30; т. кол. 230 °С, т. исп. 240 °С, время удерживания 6,5 мин.
При анализе педикулицидов использовали метод абсолютной калибровки в координатах площадь пика — концентрация раствора. Линейность калибровочных графиков соблюдали для сульфидофоса в пределах 4—250 мкг/мл, а для белафоса и анометрина— 10—200 мкг/мл. После упаривания экстрагента и доведения общего объема пробы до 0,2 мл анализу подвергали аликвотную пробу объемом 1 мкл. При использовании образцов ткани размером 10X10 см предел обнаружения составляет для сульфидофоса, анометрина и белафоса соответственно 0,08, 0,2 и 0,2 мг/м2.
На первом этапе исследования разрабатывали методики извлечения педикулицидов из тканей. Она должна удовлетворять следующим требованиям: не быть трудоемкой и длительной, извле-
Таблица 1
Определение степени извлечения (в мкг/см2) белафоса и анометрина с различных тканей
8*
и в X
т я
Хлопок
коэффициент извлечения
Шерсть
коэффициент нзвлече-н и я
Синтетика
£ о •9-1-2
■е. я ч _
(п а) а к
о = <о =
х п - х
Бслафос
0,100 0,095 0,95 0,100 1,00 0,100 1,00
0,200 0,200 1,00 0,200 1,00 0,200 1,00
0,500 0,475 0,95 0.465 0,93 0,470 0,94
Анометрин
0,0203 0,0136 0,672 0,0131 0,650 0,0138 0,684
0,1018 0,0654 0,643 0,0407 0,400 0,0851 0,836
0,2036 0,1388 0,682 0,1582 0,777 0,1683 0,827
0,3054 0.1994 0,653 0,1573 0,5ц 0,2336 0,756
0,4072 0,2525 0,620 0,2899 0,712 0,3205 0,787
кать педикулициды с максимальной полнотой, не разрушать их в процессе извлечения, быть селективной по отношению к определяемым веществам, т. е. не сопровождаться извлечением мешающих коэкстрактивных компонентов.
Имеется несколько публикаций [4, 7, 8] об извлечении педикулицидов из тканей. Так, для извлечения сульфидофоса из тканей, используемых нами, один из нас ранее [4] использовал непрерывную экстракцию в аппарате Сокслета с помощью смесей пентан — метанол (93 : 7), пет-ролейный эфир — метанол (93:7) или гептан — диэтиловый эфир (1 : 1). Определение остаточных количеств сульфидофоса в этой работе проводили методом тонкослойной хроматографии на пластинках Силуфол УФ-254. Другие исследователи определяли пиретроидные педикулициды тетра-метрин (неопинамин) [8] и фенвалерат [7] на шерстяных тканях, используя в качестве экстрагента соответственно ацетонитрил в статических условиях и ацетон с применением аппарата Сокслета после измельчения ткани. Таким образом, данные литературы свидетельствуют, что способ извлечения педикулицидов с помощью органических растворителей наиболее приемлем. Однако для его оптимизации в каждом- конкретном случае требуется варьирование растворителя, временных, температурных и аппаратурных условий.
Методом «введено — найдено» нами проведена оптимизация условий извлечения. В процессе ее учитывали сродство педикулицида к определенной группе растворителей. Установлено, что для почти количественного извлечения белафоса из тканей образцы достаточно проэкстрагировать в колбе, содержащей 50 мл гексана, в течение 30 мин при комнатной температуре (табл. 1). Применение таких условий для извлечения анометрина, а также замена гексана полярными растворителями ацетоном и этанолом не приво-
¡3 ж ч ю
>>
о
ь о о я о. о о
X а х
ее (-
X 2 х
Я
и
03
ж (-
2 ш
а
§
х я х
ч
X
са
О
аз
=С о и
сч
I
-н
ао
-н
а> со
со
+1 (О
о
СЧ 00
-Н +1
СО о
гт 2
о
•н
о
сч
— ю
-н -н
ю ю со
■ч< о
V
ю
— СЧ
+1 -н
о сч
сч —
о
V
ао сч
-н
о
м
о
СО
-н
о о сч
СО со
-н
о
+1 N
со"
о ю
•н I
о о
о
-н
со ю
00 сч
+1 ю ст>
о +1 СО
со
оо о
о
V
о
V
о
V
о
V
о V
о
-н
Г-.
ст> о
о
-н
ю ю
о
+1 -ч-ю
о
-н
<о N
<о о о со ' X дз
о и X ■=( о и л "" С)
к 2 а. °
со X О Е о п О со в 1С
С=С ч ь а.
9 * ч о О 5= о си X X со ш 3; й = СО а-5
>,ю СО со =х 2 я-
к о. ж а. Ж О. о гг СО 2 ^ и сч
Я X X
а> С н V <- О со со
X
со
X
а
о
о ш о
х х
о с
в
3 ь о
ж в-о ч
И X
с*) X СО
2 *
о к
дэ
• X
<и «
X
х а.
СО <"
а- 3
О) I
и ж
с
ч
X
дят к удовлетворительным результатам, и только кипячение в указанных выше растворителях (оптимально в гексане в течение 1 ч) дает желаемый результат. При извлечении педикулици-дов из синтетических тканей следует учитывать невозможность использования ацетона из-за большого фона коэкстрактивных компонентов. Непрерывная экстракция в аппарате Сокслета не увеличивает коэффициент извлечения в случае белафоса и анометрина по сравнению с обычным кипячением. В то же время для извлечения суль'-фидофоса применены условия, приведенные в работе [6], т. е. экстракция в аппарате Сокслета в течение 8 ч. В оптимизированных нами условиях коэффициент извлечения практически не зависит от типа ткани и равен для белафоса 0,98, для анометрина 0,70.
Применение описанных выше методов извлечения педикулицидов из тканей позволило решить основную задачу исследования — разработать способы снижения содержания их остатков до безопасных уровней. При этом за безопасный критерий применения платяных педикулицидов принят их ПДУ на коже, который определен нами расчетным методом с использованием формулы В. А. Кондрашева [3]. Для расчета из литературы взяты значения ПДК в воздухе рабочей зоны, объема воздуха для вентиляции легких, площадь кожного покрова человека, коэффициенты поглощения токсикантов органами дыхания и проникновения их через кожу. Полученные таким образом ПДУ на коже для изученных действующих веществ сульфидофоса, белафоса и анометрина составляют соответственно 0,3, 2 и 3 мг/м2.
Результаты изучения различных способов удаления педикулицидов с тканей представлены в табл. 2. Как показали исследования, нательное и постельное белье, имеющее непосредственный контакт с кожными покровами, после педикули-цидной обработки 0,5 % водной эмульсией анометрина может быть пригодно к использованию в случае синтетических и хлопчатобумажных тканей после стирки с мылом и содой, а в случае шерстяных тканей после предварительного замачивания в течение суток в содовом растворе. Последний более жесткий режим является универсальным. Он рекомендован для удаления белафоса и сульфидофоса со всех видов тканей в случае применения 0,25 % водной эмульсии белафоса, 0,06 % водной эмульсии сульфидофоса и аэрозольного баллона «Педисульф». При применении дуста «Сульфопин» по завершении педикулицидной обработки требуются стряхивание препарата с белья, последующее проветривание его на открытом воздухе не менее 4 ч и стирка после продолжительного замачивания.
Таким образом, с применением химических методов контроля разработаны методы снижения остаточных количеств педикулицидов на белье до безопасных, позволяющих исключить неблаго-
приятпое воздействие их на организм человека при последующем использовании белья, прошедшего педикулицидную обработку.
Литература
1. Вредные вещества в промышленности: Справочник / Под ред. Э. Н. Левиной, И. Д. Гадаскиной. — Л., 1985.— С. 153—154.
2. Каган Ю. С., Войтенко Г. А., Паньшина Т. //.//Гиг. и сан. — 1983. —№ 6, —С. 32—35.
3. Кондратов В. А. // Всесоюзный съезд токсикологов, 1-й: Тезисы докладов.— Ростов-н/Д.— 1986.— С. 65—66.
4. Михайлов Н. П., Сурина Т. Я., Николаев Г. М. // Научные основы дезинфекции и стерилизации. — М., 1982.— С. 104—106.
5. Справочник по пестицидам / Под ред. Н. Н. Мельникова и др. М., 1985.
6. Матре D. // Pest. Control. — 1985.— Vol. 2. — P. 10— 11.
7. Simonaitis R. A., Bry R. E., Spencer C. R.//S. High Resolut. Chromatogr. Chromatogr. Common. — 1983. — Vol. 6, — P. 193—195.
8. Simonaitis R. A., Cail R. S. // Chromatographia. — 1984.— Vol. 18, —P. 556—559.
Поступила 21.05.88
Summary. The means for reducing the residue of organo- 0 phosphorus and pyretroid pediculicides on the fabric to safety levels have been developed due to the use of gas and liquid chromatography. The proposed procedures include linen washing after its pediculicidal treatment. Optimal conditions for the removal of the aboye substances from the fabric have been set forth. Actual quantity of pediculicides on the fabric after its treatment has been identified.
Социальная гигиена, история гигиены, организация санитарного дела
УДК 614.4:002.6
Г. И. Куценко, Л. К. Постникова, Д. Ч. Даниялова
ИНФОРМАЦИОННОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ И ЕГО СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ В САНИТАРНО-ГИГИЕНИЧЕСКОЙ И БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИЯХ ГОРОДСКИХ САНЭПИДСТАНЦИЙ
ВНИИ социальной гигиены, экономики и управления здравоохранением им. Н. А. Семашко, Москва
В соответствии с «Основными направлениями развития охраны здоровья населения и перестройки здравоохранения СССР в двенадцатой пятилетке и на период до 2000 года» для успешного решения санитарно-эпидемиологической службой задач по предупреждению загрязнения окружающей природной среды и созданию наиболее благоприятных условий жизни населения требуется повышение эффективности ее деятельности, во многом определяемой состоянием информационного обеспечения санэпидучреждений.
Используемая в настоящее время учреждениями здравоохранения учетно-отчетпая документация не в полной мере отражает информацию, необходимую для оперативного принятия управленческих решений [2, 4]. Часть информации о состоянии окружающей природной среды, представленная в форме № 35 «Отчет о работе санитарно-эпидемиологической (дезинфекционной) станции» слабо используется специалистами из-за недостаточно полного характера и отсутствия в ней данных об изменении показателей во времени [1]. Прогноз динамики документального информационного потока санэпидстанций (СЭС)
к 1995 г. свидетельствует о предполагаемом росте объема входящих документов [5].
Согласно социальному заказу Главного _ санэпидуправления Минздрава СССР, сотрудни- " ками отделения организации и управления санэпидслужбой проведено изучение содержания, распределения и использования существующей информации в оперативных и лабораторных подразделениях горСЭС, работающих в условиях централизации управления.
Обследование организационной структуры госСЭС (Алма-Атинская, Днепропетровская, Донецкая, Минская, Львовская, Челябинская) выявило наличие централизованных лабораторных подразделений внутри санитарно-гигиенической лаборатории (по гигиене питания, труда, электромагнитных полей, токсикологии, исследованию воды, атмосферного воздуха, санитарной ц акустике, физико-химическим методам исследо- " вания, определению остаточных количеств ядохимикатов) и бактериологической лаборатории (по исследованию внешней среды, кишечных и капельных инфекций, стерилизации, вирусологическим исследованиям). При бактериологиче-
