CC BY
7
2. При проведении градуировки фотометрических приборов нецелесообразно принимать в расчет эталоны с величиной 0<С0,03 ввиду большой погрешности.
ЛИТЕРАТУРА. Мусакин А. П., Рачинский Ф. Ю.. Суглобова К. Д. Оборудование химических лабораторий. Справочник. Л., 1978, с. 30— 50.
3. Для снижения общей погрешности, возникающей при определении содержания вещества в воздухе, рекомендуется использовать мерную посуду I класса точности.
Соловьева Т. В., Хрусталева В. А. Руководство по методам определения вредных веществ в атмосферном воздухе. М., 1974, с. 221—223.
Поступил* 23.12.80
УДК 614.7-074:54«. 15.02.08
О. Д. Дубинин, Р. И. Погодин
МЕТОД ОПРЕДЕЛЕНИЯ СОДЕРЖАНИЯ РАДИОАКТИВНЫХ ИЗОТОПОВ ЙОДА В ОБЪЕКТАХ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ И БИОМАТЕРИАЛЕ
В современной прикладной радиохимии внешней среды для концентрирования и очистки радионуклидов йода используют в основном процессы экстракции, дистилляции, ионообменной хроматографии. В большинстве методов выделенный йод осаждают в виде йодида серебра и измеряют активность препарата на сцинтилляционном гамма-спектрометре или на установке с торцовым счетчиком.
Предлагаемый метод определения содержания радиоизотопов йода в объектах внешней среды и биоматериале основан на экстракции йода четырех-хлористым углеродом с последующим осаждением йодистого висмутила (ВЮ1) в хлорнокислой среде.
Подготовку проб к анализу осуществляют по общепринятым методам щелочного озоления. Йод из больших объемов воды, снега и молока концентрируют методом анионообменной хроматографии на анионите АВ-17. Полный ионный обмен между йодом в пробе и носителем (йодид-ионы) осуществляют с помощью окислительно-восстановительного цикла, котрый сводится к окислению всех форм йода до перйодата гипохлоритом натрия в щелочной среде и к восстановлению перйодата в азотнокислой среде до элементарного йода гидроксилами-ном солянокислым. Экстрагируют йод из кислой среды четыреххлористым углеродом (А. К. Лавру-хина и соавт.; Пайк и соавт.,; Методы радиохимического анализа, 1967; Ф. Я. Ровинский и соавт.).
Реэкстракцию йода из органической фазы проводят двумя последовательными порциями (по 20 и 11 мл каждая) смеси 2 % гидроокиси натрия и 30 % перекиси водорода (соотношение объемов 30: 1). Гидроокись натрия переводит свободный йод в йодид- и йодат-формы, а перекись водорода в щелочной среде восстанавливает большую часть образующихся йодат-ионов до йодид-ионов. Объединенный водный реэкстракт, содержащий в основном йодид-ионы, выпаривают досуха для удаления перекиси водорода. К сухому остатку приливают 40 мл воды, раствор перемешивают и подкисляют 15 мл 10%'хлорной кислоты (рН<;1,0) и осаждают йод.
Операция осаждения йодистого висмутила проста, но количественное выделение йода затрудняется в случае присутствия в растворе макроколичеств ионов С1~, Вг_, SOJ~, Сг20^ и др. Поэтому
для очистки йода от мешающих примесей перед осаждением проводят его экстракцию.
Реактив для осаждения йода — хлорнокислый висмутил готовят растворением окиси висмута (III) в хлорной кислоте (30 мг/мл по Bi; 1,5 н. раствор по хлорной кислоте). Раствор осадителя должен быть свежеприготовленным и прозрачным. Осаждение йода проводят при комнатной температуре. К кислому раствору, содержащему йод, приливают в небольшом избытке хлорнокислый висмутил. При интенсивном перемешивании выпадает осадок BiOI. Раствор с осадком кипятят на песчаной бане 1—2 мин для перевода образующегося иногда йодида висмута (III) в йодистый висмутил и оставляют на 2—3 ч для коагуляции осадка. Осаждение йода при указанных условиях происходит практически полностью (97,6±1,9%), и состав выделенного препарата близок к стехиометриче-скому. Это позволяет контролировать выход носителя весовым методом.
Осадок отделяют от раствора центрифугированием, промывают водой до нейтральной реакции и затем этиловым спиртом. Препарат помещают в сушильный шкаф на 30 мин при t =100 СС, переносят на предварительно взвешенную алюминиевую подложку при помощи спирта. Осадок равномерно распределяют по подложке, сушат под инфракрасной лампой и взвешивают. По разнице весов определяют выход носителя, который для различных проб составляет 50—80 %. Стандартное отклонение выхода носителя от истинного не превышает ±10 %.
Препарат йода — йодистый висмутил — кристаллический, тяжелый порошок, кирпично-красного цвета, не растворимый в воде, спирте, хлороформе и в слабых растворах кислот, устойчив при нагревании (до 300 °С), на свету не разлагается, негигроскопичен. В концентрированных кислотах BiOI растворяется с образованием йодида висмута (III).
Растворение йодистого висмутила в кислотах-окислителях сопровождается выделением элементарного йода.
Активность выделенного препарата йода измеряют на сцинтилляционном (Nal) TI гамма-спект-рометре или на установке с торцовым счетчиком типа СБТ-13.
Чувствительность метода при использовании гамма-спектрометра с кристаллом (Nal)Tl размером 150x100 мм для йода-131 составляет 0,37Бк на
ЛИТЕРАТУРА. Лаврухина А. К., Малышева Т. В., Павлоцкая Ф. И. Радиохимический анализ. М., 1963. Методы радиохимического анализа. М., 1967. Ровинский Ф. Я., Иохельсон С. Б., ЮшканЕ. И. Методы
1 пробу с ошибкой измерения +20%, при измерении препаратов йода-131 на малофоновой установке с торцоЕЫМ счетчиком типа СБТ-13 она составляет 0,07Бк на 1 пробу с ошибкой ±25 %.
Метод прост в исполнении, не требует сложной аппаратуры, дорогостоящих и труднодоступных реактивов и может быть рекомендован для контроля содержания радисизотопов йода в различных объек- щ тах в присутствии сложной смеси продуктов деления и наведенной активности.
анализа загрязнения окружающей среды. М., 1978. Радиохимия хрома, мышьяка, кадмия и галогенов.
Пайк Ж., Бсрд Г., Дево Дж. и др. М., 1964.
Поступила 10.12.80
УДК 615.462.099.07.57.085.23
Канд. мед. наук В. Г. Лаппо, канд. биол. наук В. И. Тимохина, канд. мед. наук В. П. Яценко, канд. биол. наук Г. А. Пхакадзе, И. А. Галатенко, доктор хим. наук Т. Э. Липатова, В. П. Шуклинов, В. В. Шумилина
НЕКОТОРЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ МЕТОДА ТКАНЕВЫХ КУЛЬТУР В ТОКСИКОЛОГИИ МЕДИЦИНСКИХ
ПОЛИМЕРОВ 1
ВНИИ и испытательный институт медицинской техники Мин?дргЕа СССР, Москва; Институт органической химии "АН УССР, Киев; Кигвский медицинский институт; Институт проблем онкологии им. Р. Е. Кавецкого АН УССР, Киев
Цель данной работы — выявление корреляции между результатами изучения токсичности полимерных материалов, полученных методом тканевых культур и в эксперименте на животных.
Наиболее часто для этих целей, особенно при изучении пленочных полимерных материалов, применяются стабильные, перевиваемые клеточные линии, что позволяет получать качественные и количественные данные для токсикологической оценки изучаемых объектов (Wilsnack; А. Ф. Бойко; Fell). Однако исследователи, отмечая, что стабильные линии генетически и метаболически отличаются от клеток организма, рекомендуют использовать тканевые и органные культуры.
В качестве объектов исследования были взяты полимерные пленки, служащие мембранными элементами оксигенаторов и емкостями для хранения крови и ее компонентов. Основой пленки «Влаце-фан» является ацетат целлюлозы. При ее изготовлении использованы лапрол, метиленхлорид, метанол и глицерин, остаточные количества которых способны мигрировать в организм и давать токсический эффект. Нетоксичный поливинилхлоридный пластикат марки ПМ-1/42 был подвергнут автокла-вированию при 110 °С в течение 60 мин с последующей подсушкой сухим воздухом. Предполагалось, что стерилизация в указанном режиме вызовет в материале деструктивные изменения. Пленка «Сигма»
1 Токсикологические исследования Н. М. Каминской и В. И. Долгополовым.
вымол иены
имела сетчатую структуру и была изготовлена из силоксанового каучука, армированного капроном (последний мог служить источником мономера— капролактама).
Все указанные полимеры были изучены в 3 сериях экспериментов: I — использование испытуемых полимерных материалов в качестве подложек для эксплантатов тканевых культур, II — применение полимерных подложек для культивирования синхронизированных культур, III — введение крысам вытяжек из материалов в подострых токсикологических экспериментах.
В I серии метод тканевых культур использовали следующим образом. Стерильные пленочные образцы размером 0,5x0,5 см помещали во флаконы Карелля, на них помещали эксплантат подкожной клетчатки белых беспородных крыс, затем добавляли питательную смесь, состоящую из гусиной плазмы, среды № 199 и эмбрионального экстракта. После формирования твердой фазы во флакон вносили смесь лошадиной сыворотки и среды № 199 (жидкая фаза). Жидкую фазу меняли каждые 3 дня. Наблюдения за ростом и превращением клеточных элементов проводили на 3, 5, 7, 10 и 14-е сутки от начала эксплантации. Контролем служили культуры, не содержащие полимерных образцов. Всего выполнено 168 эксплантаций.
Во II серии при использовании фибробластиче-ских клеток линии L трансформированной соединительной ткани исследуемые пленки полимерных образцов укладывали на дно пенициллиновых фла-
w
