Лечение птиц при ассоциативной респираторной инфекции Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

ШМ ЕТЕРКНАРНЫЙ

ВЕТЕРИНАРНАЯ МИКРОБИОЛОГИЯ, ВИРУСОЛОГИЯ И ЭПИЗООТОЛОГИЯ J5PA4

УДК 636.5:619:616.98:578.831

ЛЕЧЕНИЕ ПТИЦ ПРИ АССОЦИАТИВНОЙ РЕСПИРАТОРНОЙ ИНФЕКЦИИ

С.Б.Лыско - кандидат ветеринарных наук, вед.н.с.; М.В.Задорожная - кандидат ветеринарных наук, вед.н.с.; А.А.Гофман - н.с.; А.П.Красиков - доктор ветеринарных наук, профессор, гл.н.с.

Сибирский научно-исследовательский институт птицеводства - филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения«Омский аграрный центр» (СибНИИП - филиал ФГБНу «Омский АНЦ»), с.Морозовка (644555, Омская область, с.Морозовка, ул.60 лет Победы, д. 1,, тел. +7(3812) 937-272, e-mail: [email protected]).

Особое внимание заслуживают инфекционные болезни, связанные с поражением респираторного тракта, при которых посредством воздушно-капельной передачи происходит быстрое распространение возбудителей на значительное поголовье птицы, независимо от системы содержания. Респираторные инфекции часто протекают в ассоциированной форме, что затрудняет диагностику и снижает эффективность лечения. По результатам эксперимента, в производственных условиях испытана наиболее эффективная схема лечения цыплят-бройлеров при ассоциативной респираторной инфекции с использование настойки прополиса (100 г прополиса настаивают в 80%-ном спирте, полученный раствор, доводят до 1000 мл водой). Исследования проведены в отделе ветеринарии СибНИИП и птицеводческом предприятии Омской области на 22-дневных цыплятах-бройлерах кросса «Росс-308» с клиническими признаками респираторной инфекции, подтвержденной бактериологическим исследованием. Новая схема лечения включает применение настойки прополиса в дозе 1 мл/1 л воды совместно с антибиотиком широкого спектра действия методом выпаивания в течение пяти дней в сочетании с аэрозольным применением настойки прополиса (разведение 1:20 1 л/100 м3 помещения экспозиция 60 мин.) в течение трёхдней подряд. В контрольной группе применяли тот же антибиотик, аэрозольно - дезинфектант. Применение разработанной схемы для лечения цыплят-бройлеров при ассоциативной респираторной инфекции при сравнении с контролем уменьшает количество патогенной и условно-патогенной микрофлоры, восстанавливает физиологические процессы и обмен веществ, повышает естественную резистентность, снижает негативного влияния антибиотиков на организм птиц и ускоряет сроки их выздоровления. Это способствует повышению сохранности, среднесуточному приросту живой массы при снижении затрат корма на 1 кг прироста и увеличению экономической эффективности ветеринарных мероприятий на один рубль затрат.

КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: настойка прополиса, цыплята-бройлеры, ассоциации, респираторная инфекция, лечение, антибиотик.

При современных технологиях промышленного птицеводства с высокой концентрацией поголовья на ограниченной территории происходит накопление и быстрое распространение возбудителей бактериальных, вирусных болезней, имеющих аэрогенный путь передачи и сопровождающихся развитием респираторного синдрома. Возникновению респираторных инфекций способствуют нарушение температурно-влажностных режимов, скорости движения воздуха, повышенные концентраци вредных газов в воздухе птичника, наличие большого количества технологических стрессов (дебекирование, вакцинации и др.). Среди заболеваний, сопровождающихся развитием респираторного синдрома, можно выделить метапневмовирусную инфекцию, Ньюкаслскую болезнь, инфекционный ларинготрахеит, инфекционный бронхит кур, пастереллёз, гемофилёз, орнитобак-териоз, респираторный микоплазмоз, аспергиллёз. Кроме того, условно-патогенные микроорганизмы (E.coli, Enterobacter agg., Staphylococcus spp. и т.д.) в сочетании с эндогенными и экзогенными факторами повышают свою патогенность и ведут к заболеваниям в масштабе эпизоотий [3, 8]. В большинстве случаев респираторные болезни протекают в ассоциациях, что затрудняет их диагностику, снижает эффективность

проведения лечебно-профилактических мероприятий [7]. Поэтому при возникновении респираторного комплекса у птиц в хозяйстве, необходимо своевременно поставить диагноз, установить, что является первопричиной болезни.

Для профилактики респираторных инфекций птиц вирусной этиологии используются живые, инак-тивированные моно- и поливалентные вакцины. При выделении возбудителей бактериальных болезней обязательным условием является определение их чувствительности к антимикробным препаратам, что позволяет выбрать наиболее эффективное лекарственное средство. Несмотря на большое количество используемых в настоящее время препаратов, вследствие широкого распространения антибиотикорезистентных штаммов микроорганизмов, их эффективность постоянно снижается. Поэтому поиск препаратов активных в отношении устойчивых патогенов с учетом всех членов ассоциаций микроорганизмов, участвующих в инфекционном процессе, и разработка способов их применения, продолжают оставаться актуальной проблемой в ветеринарной практике. Одним из таких препаратов является прополис. Известны антимикробное, анестезирующее, антиоксидантное, иммуномодулирующее, дерматопластическое, противотоксическое, противо-

воспалительное свойства прополиса. Его совместное применение с антибиотиками усиливает действие последних. В опытах in vitro установлена бактерицидная активность настойки прополиса на возбудителей, выделяемых от птиц при респираторной инфекции [2]. Разработана и испытана в производственных условиях схема профилактики респираторных инфекций в инкубаторе с использованием настойки прополиса [5]. В экспериментах изучены различные схемы лечения птиц при ассоциативной респираторной инфекции.

Цель исследования - испытать новую эффективную схему лечения цыплят-бойлеров при ассоциативной респираторной инфекции бактериальной этиологии с использованием настойки прополиса в производственных условиях.

Материалы и методы. Исследования проведены в отделе ветеринарии ФГБНУ СибНИИП и на базе птицеводческого хозяйства. Объект исследования - 22-дневные цыплята-бройлеры кросса «Росс-308» с клиническими признаками респираторной инфекции, подтвержденной бактериологическим исследованием. Из больной птицы по принципу аналогов скомплектованы контрольная и опытная группы по 500 голов в каждой, размещённые в изолированных залах.

Для лечения в контрольной группе применяли «Энрофлон К» - антибиотик широкого спектра действия в дозе 1 мл/л воды в течение пяти дней, для аэрозольной обработки воздуха использовали 0,5%- ный «Экоцид-С» 1 л/100м3 три дня подряд. Птице опытной группы совместно с антибиотиком «Энрофлон К» выпаивали настойку прополиса (100 г прополиса, 80%-ный спирт до получения 1 л настойки) в дозе 1 мл/л воды в течение пяти дней, аэрозольную обработку проводили настойкой прополиса (разведение 1:20 1л/100м3 экспозиция 60 мин) один раз в день в течение трёх дней подряд. Наблюдение за опытной птицей осуществляли в течение 10 дней от начала лечения.

Терапевтическую эффективность разработанной схемы оценивали по проявлению клинических признаков у цыплят, их сохранности и живой массе. Определяли гематологические (количество лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобина), биохимические (содержание общего белка, альбуминов, глобулинов) и иммунологические (бактерицидная активность сыворотки крови - БАСК) показатели крови. Проводили бактериологические исследования воздуха и патологического материала.

Материалом для прижизненных лабораторных исследований служили соскобы со слизистой оболочки гортани, пробы крови и её сыворотки, для посмертных - стенки воздухоносных мешков, кусочки легких, соскобы с трахеи, головной и костный мозг, кровь из сердца, печень, селезёнка.

Отбор проб, выделение культур микроорганизмов и их идентификацию проводили в соответствии с существующими методиками с использованием простых (МПБ, МПА) и дифференциально-диагностических (Эндо, висмут-сульфит-агар, стафилококкагар, энтеро-

коккагар, XLD-агар, Чапека, среда с тилуритом калия, Олькеницкого, Симмонса) питательных сред. Морфологию изучали в мазках из суточных агаровых культур, окрашенных по Граму и Романовскому-Гимзе, биохимические свойства - посевом на среды Гисса с сахарами. Патогенность культур стафилококков устанавливали реакцией плазмокоагуляции с применением кроличьей цитратной плазмы, остальных выделенных культур - постановкой биопробы на лабораторных мышах [6].

Микробиологическое исследование воздуха проводили седиментационным методом по Коху, расчет - по формуле Омелянского [4].

Количество форменных элементов крови подсчитывали в счетной камере Горяева под микроскопом после предварительного разведения крови в эритроци-тарных меланжерах красителем Болотникова. Общий белок определяли биуретовым, альбумин - бромкре-золовым методами наборами Hospitex diagnostics (Италия), содержание гемоглобина в крови - гемихромным методом набором «ГЕМОСО-НОВО» (Россия). БАСК определяли по методу Мишеля Теффера в модификации О.В.Смирновой и Т.А.Кузьминой [1]. Учет результатов осуществляли с помощью спектрофотометра Е1х800. Результаты исследований обработали методом статистики и с использованием критерия Стьюдента.

Результаты исследований. Клинические признаки болезни у птиц в опытной группе отсутствовали уже на третий день лечения, в контрольной - на пятый. Сохранность птиц в опытной группе составила 99% (Р<0,05), что превышало контроль на 2%. При патологоа-натомическом вскрытии птицы, погибшей в первый день лечения, во всех группах наблюдали гиперплазию селезёнки, гиперемию слизистой оболочки трахеи, синусит, отёк легких, двустороннюю серозно-фибринозную пневмонию, фибринозный аэросакулит, в единичных случаях — фибринозный перигепатит, дистрофию печени и почек. Бактериологическим исследованием выделены микроорганизмы: Ornithobacteria rhinotracheale, Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Enterobacter agglomerans, Enterobacter agerogenes, что подтверждает ассоциативную инфекцию. На второй и последующие дни лечения гибель птицы в контрольной группе не прекращалась, в опытной группе гибели не было.

При бактериологическом исследовании соскобов со слизистой оболочки гортани цыплят-бройлеров до начала лечения во всех группах выделен широкий спектр микроорганизмов (табл. 1).

Escherichia coli до лечения присутствовала только в опытной группе, после лечения - в опытной группе отсутствовала, а в контроле была выделена, несмотря на применение антибиотика. Staphylococcus aureus и Enterococcus faecium до лечения изолирован в обеих группах, после - только в контрольной. Enterococcus faecalis выделяли в обеих группах на протяжении всего опыта. Citrobacter diversus выделен только в контрольной группе до и после лечения. Proteus mirabilis

ВЕТЕРИНАРНАЯ МИКРОБИОЛОГИЯ, ВИРУСОЛОГИЯ И ЭПИЗООТОЛОГИЯ

Таблица 1

Микрофлора, выделенная из соскобов со слизистой оболочки гортани цыплят-бройлеров

Микроорганизм Группа

до лечения после лечения

контрольная опытная контрольная опытная

Escherichia coli - + + -

Staphylococcus aureus + + + -

Enterococcus faecalis + + + +

Enterococcus faecium + + + -

Citrobacter diversus + - + -

Proteus mirabilis - + - -

Примечание: «+» - наличие роста; «-» - отсутствие роста.

до лечения присутствовал в опытной группе, после лечения - не обнаружен.

После аэрозольной обработки в зале с контрольной группой - «Экоцидом-С», с опытной - на-

стойкой прополиса, общее микробное число (ОМЧ) снизилось на 65 и 138 КОЕ/м3 соответственно по сравнению с результатами, полученными до обработки (табл. 2).

Таблица 2

Микробная обсеменённость воздуха птичников, КОЕ/м3 (n=5, M±m)

Группа Исследуемые показатели До обработки После обработки

Контрольная ОМЧ 635±14,9 570±19,1

БГКП 59±1,9 64±1,6

Стафилококки 586±25,2 485±26,3

Энтерококки 25±1,0 19±3,2

Микроскопические грибы 37±3,6 17±1,8

Опытная ОМЧ 569±21,8 431±10,8**/**

БГКП 58±2,9 54±1,9*/

Стафилококки 526±38,6 315±29,8*/*

Энтерококки 21±1,4 6±1,6*/**

Микроскопические грибы 29±2,3 3±1,3**/***

Примечание. *Р<0,05; ** Р<0,01; ***Р<0,001; */ - в сравнении с контролем; /* - в сравнении с предыдущим исследованием.

Количество бактерий группы кишечной палочки (БКГП) в воздухе зала с контрольной и опытной группами до обработки было практически на одном уровне. После обработки данный показатель в опытной группой снизился на 4 КОЕ/м3, а в контрольной увеличился на 5, разница с контролем составила 10 КОЕ/м3. Количество стафилококков после обработки в воздухе зала с контрольной группой снизилось на 101, в воздухе зала с опытной группой - на 211 КОЕ/м3. Разница между группами до обработки составила 60, после обработки - 170 КОЕ/м3, с лучшими результатами в опытной группе. Количество энтерококков после обработки снизилось в обеих группах: в контрольной на 6, в опытной - на 15 КОЕ/м3. Обработка настойкой прополиса воздуха в зале с опытной группой способствовала сниже-

нию количества микроскопических грибов на 26, в контрольной - на 20 КОЕ/м3.

Таким образом, аэрозольная обработка настойкой прополиса по разработанной схеме снижала количество патогенных и условно-патогенных микроорганизмов в воздухе зала с опытной группой, санировала слизистые оболочки органов дыхания и способствовала более быстрому выздоровлению птиц.

Количество гемоглобина и содержание его в одном эритроците в крови цыплят-бройлеров опытной группы, где совместно с антибиотиком выпаивали настойку прополиса, выше, чем в контрольной группе, на 22,7 г/л и 6,7 пг соответственно (табл. 3). Это свидетельствовало о насыщении крови кислородом и способствовало восстановлению физиологических процессов в организме птиц на фоне проведённого лечения.

Таблица 3

Показатели крови цыплят-бройлеров после лечения, (п=5, M±m)

Показатель Группа

контрольная опытная

Эритроциты, 1012/л 2,8±0,2 2,9±0,3

Гемоглобин, г/л 92,9±3,7 115,6±5,8*

Содержание гемоглобина в одном эритроците, пг 33,2 39,9

Общий белок, г/л 27,3±1,0 34,6±2,0*

Альбумин, г/л 14,6±0,6 13,6±0,5

Глобулины, г/л 12,7±0,6 21,1±1,7**

БАСК, % 57,3 94,2

Примечание: *Р<0,05; ** Р<0,01

Повышенное содержание общего белка и глобулинов в сыворотке крови цыплят-бройлеров опытной группы на 7,3 и 8,4 г/л связано с нормализацией и стимуляцией обмена веществ и повышением естественной резистентности. О положительном влиянии настойки прополиса на естественную резистентность свидетельствует бактерицидная активность сыворотки крови цыплят опытных групп, которая на 36,9% превышает контроль. Снижение показателей контрольной группы можно связать с негативным воздействием антибиотика на организм птиц.

Сочетанное выпаивание настойки прополиса с антибиотиком по разработанной схеме позволило восстановить физиологические процессы и обмен веществ, повысить естественную резистентность, снизить негативное влияние антибиотиков на организм цыплят и тем самым ускорить сроки их выздоровления.

Наибольший среднесуточный прирост за весь период наблюдения (10 дней) был в опытной группе

- 39,9 г, что на 10,4 г превышало контроль. Максимальный прирост живой массы был отмечен в опытной группе в период применения настойки прополиса -43,0 г, в контрольной группе он составил 21,3 г.

За период опыта потребление корма цыплятами опытной группы составило 120 г/голову, контрольной

- 116 г/голову, при этом затраты корма на 1 кг прироста составили 3,00 и 3,94 кг соответственно. Увеличение потребления корма цыплятами опытной группы свидетельствует о восстановлении аппетита и выздоровлении птицы, а снижение затрат корма на 1 кг прироста - о его лучшем усвоении.

При применении новой схемы лечения ущерб от падежа птицы снизился на 1838,08 руб., ущерб от снижения продуктивности - на 3422,4 руб., фактический ущерб - на 5260,48 руб (табл. 4). Предотвращённый экономический ущерб увеличился на сумму 8109,76 руб., экономическая эффективность ветеринарных мероприятий на один рубль затрат - на 2,09 руб.

Таблица 4

Экономическая эффективность схем лечения в контролируемом производственном опыте

Показатель Группа

контрольная опытная

Ущерб от падежа птицы, руб. 3269,06 1430,98

Ущерб от снижения продуктивности птицы, руб. 8164,80 4742,40

Фактический ущерб от заболевания, руб. 11433,86 6173,38

Предотвращенный экономический ущерб, руб. 4517,02 12626,78

Экономический эффект от ветеринарных мероприятий, руб. 1857,27 9286,78

Эффективность ветеринарных мероприятий на рубль затрат, руб. 0,69 2,78

Заключение. Таким образом, выпаивание настойки прополиса в дозе 1 мл/1 л воды совместно с антибиотиком в течение пяти дней в сочетании с аэрозольной обработкой настойкой прополиса (разведение 1:20 1 л/100 м3, экспозиция 60 мин) один раз в день

в течение трёх дней для лечения цыплят-бройлеров при ассоциативной респираторной инфекции уменьшает количество патогенной и условно-патогенной микрофлоры в воздухе птичника, санирует слизистые оболочки дыхательных путей, восстанавливает физи-

ШМ ЕТЕРКНАРНЫЙ

ВЕТЕРИНАРНАЯ МИКРОБИОЛОГИЯ, ВИРУСОЛОГИЯ И ЭПИЗООТОЛОГИЯ J5PA4

ологические процессы и обмен веществ, повышает естественную резистентность, снижает негативного влияния антибиотиков на организм птиц и ускоряет сроки выздоровления. Это способствует повышению

Литература

сохранности, среднесуточному приросту живой массы при снижении затрат корма на 1 кг прироста и увеличению экономической эффективности ветеринарных мероприятий на один рубль затрат.

1. Бессарабов, Б.Ф. Лабораторная диагностика клинического и иммунобиологического статуса у сельскохозяйственной птицы [Текст] / Б.Ф.Бессарабов, С.А.Алексеева, Л.В.Клетикова. - М.: Колос, 2008. - 152 с.

2. Гофман, А.А. Бактерицидная активность прополиса на возбудителей респираторных инфекций птиц/ А.А. Гофман, С.Б.Лыско, А.П.Красиков // Современные тенденции научного обеспечения в развитии ПАК: фундаментальные и прикладные исследования: материалы науч.-практ.конф. - Омск, 2016. - С. 251-254.

3. Мониторинг заразных болезней птиц в Омской области / А.А.Гофман, А.В.Портянко, С.Б.Лыско, А.П.Красиков // Птицеводство. - 2017. - № 9. - С. 34-38.

4. Госманов, Р.Г. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии: учеб.пособие / Р.Г.Госманов, Н.М.Колычев, А.А.Барсков. - Омск: Издательский дом «Лео», 2008. - 312 с.

5.Профилактика респираторных инфекций птиц в инкубаторе / А.А.Гофман, А.В.Портянко, С.Б.Лыско, А.П. Красиков // Птицеводство. - 2017. -№ 6. - С. 31-36.

6. Лабораторные исследования в ветеринарии. Бактериальные инфекции / под ред. Б.И.Антонова. - М.: Аг-ропромиздат, 1986. - 352 с.

7.Лыско, С.Б. Схемы профилактики и лечения респираторного и ассоциативного микоплазмоза птиц: дис. ... канд. вет. наук / С.Б.Лыско. - Омск, 2005. - 130 л.

8. Мониторинг эпизоотической обстановки по инфекционным болезням птиц в Западно-Сибирском регионе и Алтайском крае / А.П.Красиков [и др.] // Роль ветеринарного образования в подготовке специалистов агропромышленного комплекса: сб. науч. тр. ИВМОмГАУ. -Омск, 2003. -С.163-171.

TREATMENT OF BIRDS WITH ASSOCIATIVE RESPIRATORY INFECTION

Lysko S.B. - Candidate of Veterinary Sciences; Zadorozhnaya M.V. - Candidate of Veterinary Sciences;

Gofman A.A. - Research Officer; KrasikovA.P. - Doctor of Veterinary Sciences, professor.

Siberian Scientific Research Institute of Poultry Farming - Branch of the Federal State Budget Scientific

Institution "OmskAgrarian Scientific Center" (e-mail: vet@sibniip).

Particular attention deserves infectious diseases associated with the damage of the respiratory tract, in which there is a rapid spread of pathogens to a significant number of birdsby means of airborne transmission, regardless of the keeping system. Respiratory infections often occur in an associated form, which makes diagnosis difficult and reduces the effectiveness of treatment. According to the results of the experiment, the most effective scheme for the treatment of broiler chickens in association with respiratory infections was tested in production conditions with use of propolis tincture (100 g propolis is infused in 80% alcohol, the obtained solution is adjusted to 1000 ml with water). The studies were carried out in the department of veterinary medicine of SibNIIP(Siberian Poultry Farming Research Institute) and in poultry farm of the Omsk region on 22-day-old chickens-broilers of cross "Ross-308" with clinical signs of respiratory infection confirmed by bacteriological examination. The new treatment includes the use of propolis tincture in a dose of 1 ml / 11 of water in combination with a broadspectrum antibiotic by the method of watering for five days in combination with aerosol propolis (dilution 1:20 11/100 m3 room, exposure 60 min.) for three days. In the control group the same antibioticwas used, and the disinfectant was aerosolized used. The application of the developed scheme for the treatment of broiler chickens in associated respiratory infection, when compared with the control, reduces the number of pathogenic and conditionally pathogenic microflora, restores physiological processes and metabolism, increases natural resistance, reduces the negative influence of antibiotics on the birds and speeds up their recovery. This contributes to the increase of safety, the average daily gain of live weight with a decrease in feed costs per 1 kg of increment and an increase in the economic efficiency of veterinary measures per one ruble of costs.

KEYWORDS: propolis tincture, chicken-broilers, аssociations, respiratory infection, therapy, antibiotic.

References

1. Bessarabov, B.F. Laboratornaya diagnostika klinicheskogo i immunobiologicheskogo statusa u selskokhozyaystvennoy ptitsy [Laboratory diagnostics of clinical and immunobiological status in agricultural poultry] / B.F.Bessarabov, S.A.Alekseeva, L.V.Kletikova. - M.: Kolos, 2008. - 152 p.