Научная статья на тему 'Взаимодействие арабиногалактана лиственницы сибирской с хлорсульфуроном'

Взаимодействие арабиногалактана лиственницы сибирской с хлорсульфуроном Текст научной статьи по специальности «Химические науки»

CC BY
198
55
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
АРАБИНОГАЛАКТАН / ПОЛИСАХАРИДЫ / КОМПЛЕКСООБРАЗОВАНИЕ / ХЛОРСУЛЬФУРОН / ГЕРБИЦИДЫ / ARABINOGALACTAN / POLYSACCHARIDES / A COMPLEX FORMATION / CHLORSULFURON / HERBICIDES

Аннотация научной статьи по химическим наукам, автор научной работы — Коптяева Е. И., Мударисова Р. Х., Колбин А. М.

Методами УФ, ИК, ЯМР спектроскопии, денсиметрии и вискозиметрии изучено взаимодействие арабиногалактана лиственницы сибирской с хлорсульфуроном. Установлено, что образуется комплексное соединение состава 3:1 с константой устойчивости 4.5±0.2·104л/моль. Подобраны оптимальные условия получения и изучены некоторые физико-химические свойства продукта реакции.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по химическим наукам , автор научной работы — Коптяева Е. И., Мударисова Р. Х., Колбин А. М.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

INTERACTION OF SIBERIAN LARCH ARABINOGALACTAN WITH CHLORSULFURON

By means of the UV, IR, NMR spectroscopy, densimetry and viscosimetry the interaction of arabinogalactan from the Siberian larch with chlorsulfuron are studied. It is established that the complex compound with composition 3:1 and a constant of stability 4.5±0.2·104l/mol is formed. Optimum conditions of reception are selected and some physical and chemical properties of the product of reaction are studied.

Текст научной работы на тему «Взаимодействие арабиногалактана лиственницы сибирской с хлорсульфуроном»

УДК 547.454 012

ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ АРАБИНОГАЛАКТАНА ЛИСТВЕННИЦЫ СИБИРСКОЙ С ХЛОРСУЛЬФУРОНОМ

© Е. И. Коптяева1, Р. Х. Мударисова2*, А. М.Колбин1

1 Научно-исследовательский технологический институт гербицидов и регуляторов роста растений АН РБ Россия, Республика Башкортостан, 450029 г. Уфа, ул. Ульяновых, 65.

2Институт органической химии Уфимского научного центра РАН Россия, Республика Башкортостан, 450054 г. Уфа, пр. Октября, 71.

E-mail: mudarisova@anrb.ru

Методами УФ, ИК, ЯМР спектроскопии, денсиметрии и вискозиметрии изучено взаимодействие арабиногалактана лиственницы сибирской с хлорсульфуроном. Установлено, что образуется комплексное соединение состава 3:1 с константой устойчивости 4.5±0.2-1&л/моль. Подобраныг оптимальныге условия получения и изученыг некоторыге физико-химические свойства продукта реакции.

арабиногалактан, полисахаридыг, комплексообразование, хлорсульфурон,

Ключевые слова:

гербициды.

В последние годы в области защиты растений актуальной задачей является создание и исследование новых эффективных гербицидов, обладающих низкой токсичностью и высокой биологической активностью. В сельском хозяйстве для защиты растений от сорняков широко применяется гербицид избирательного действия хлорсульфурон (ХСТ) (1-(2-хлорфенилсульфонил)-3-(4метокси-6-метил-1,3,5-триазин-2-ил)мочевина) [1, 2]. ХСТ используется для послевсходовой обработки посевов пшеницы, ржи, ячменя, овса, льна. Существенным недостатком, ограничивающим применение этого соединения, является высокая токсичность и способность аккумулироваться в тканях растений. Актуальным способом модификации пестицидов является их комплексообразование с биогенными полимерами, что приводит к уменьшению токсичности и увеличению гербицидной активности продуктов реакции [3, 4]. В качестве комплексообразователя перспективно применение природного полисахарида араби-ногалактана (АГ). Благодаря дешевизне и комплексу уникальных свойств АГ представляет особый интерес как перспективная полимерная матрица [5-9], которая может быть использована в синтезе новых химических структур и создания гербицидных препаратов широкого спектра действия.

Целью данной работы является исследование взаимодействия АГ с ХСТ методами спектрофото-метрии, вискозиметрии и денсиметрии. Связь ХСТ с биополимером может обеспечить пролонгирован-ность действия и существенно снизить токсичность исходного гербицидного препарата.

Экспериментальная часть

В эксперименте использовали арабиногалак-тан с молекулярной массой 40000, выделенный водной экстракцией из древесины лиственницы сибирской [10]. АГ имеет высокоразветвленную макромолекулу с главной цепью, состоящей в основном из 1—»3 связанных Р-Б-галактопиранозных остатков, большинство из которых несет боковые ответвления при С6. Боковые цепи содержат 3,6-ди-

О- и 6-О-замещенные остатки Р-Б-галактопиранозы и 3-О-замещенные остатки Р-Ь-арабинофуранозы, а концевыми невосстановливающими остатками являются Р-Б-галактопираноза, Р-Б-арабинофураноза и Р-Ь-арабинопираноза [11].

Технический хлорсульфурон чистоты 95.0% использовали без дополнительной очистки. Строение ХСТ можно представить следующей формулой:

N

NH

10

-CO—NH

* //

N

8

OCH3

N

12

CH3

УФ спектры водных растворов снимали в кварцевых кюветах на спектрофотометре “UV-VIS SPECORD M-40” в области 220-900 нм. ИК спектры записывали на спектрофотометре “Shimadzu” в области 700-3600 см-1 в вазелиновом масле. Спектры 1Н ЯМР в растворах записаны на спектрометре “Bruker AMX-300” на частоте 300 мГц. В качестве растворителей для ЯМР-измерений использовали D2O или смеси D2O-CD3OD. Для контроля pH растворов использовали рН-метр АНИОН 4100. Величину удельного вращения измеряли на поляриметре Perkin-Elmer (модель 341). Плотности растворов исследуемых соединений определяли с помощью пикнометра при температуре 30 °С. В качестве растворителя использовали фосфатнобуферный раствор с рН 7. В трехкомпонентных растворах (АГ, буфер, ХСТ) концентрация ХСТ была фиксированной (0.01 моль/л). Концентрация АГ (САГ) изменялась в пределах от 0.01 до 0.04 моль/л. Значения кажущихся молярных объемов АГ (Ф-у(АГ)) в буфере и буферном растворе ХСТ рассчитывали по известному соотношению:

Ф V (АГ) =М/р0-1000(р-рэ)/ (Саг 'Pü), где М - молярная масса элементарного звена АГ ; р и P0 - плотности трехкомпонентного раствора и буферного раствора ХСТ фиксированной концентрации.

2

40

ХИМИЯ

Вязкость растворов измеряли на вискозиметре типа Уббелоде с висячим уровнем. Измерения вязкости проводили при 30 °С. В трехкомпонентных растворах (АГ + буфер + ХСТ) концентрация ХСТ была фиксированной (0.01 моль/л). Концентрация АГ изменялась в пределах от 0.01 до 0.04 моль/л. Значения динамической вязкости рассчитывали из соотношения: п=Ктр, где К=5.6410-3 мПа, т - время истечения раствора, р - плотность данного раствора.

Методика получения комплексов: 1 г полисахарида (6.2 осново-ммоль) растворяли в 10 мл смеси метанола с водой (3:7 об). Гербицид в количестве 2.2 г (6.2 ммоль) растворяли в 25 мл этой же смеси. К раствору полисахарида при интенсивном перемешивании прикапывали раствор ХСТ при комнатной температуре. Реакцию проводили в течение 1 часа. По окончании реакции продукт выделяли осаждением этиловым спиртом, переосаждали снова из воды в спирт, осадок отделяли и промывали 3 раза спиртом, затем диэтиловым эфиром и высушивали под вакуумом. Элементный состав продукта реакции определяли в лаборатории микроанализа по общепринятым методикам на анализаторе марки ЕиКО ЕА - 3000. В расчет брали средний результат из двух параллельных анализов. Ошибка эксперимента составляет 0,2%. Содержание гербицида в продукте реакции составило 82,5% от теоретически возможного.

Обсуждение результатов

Взаимодействие АГ с ХСТ исследовали спектрофотометрическим, вискозиметрическим и ден-симетрическим методами. Спектр ХСТ при его концентрации в растворе 1 • 10-5 моль/л характеризуется наличием одного максимума поглощения при 235 нм (рис.1). При добавлении АГ к раствору гербицида наблюдается резкое возрастание интенсивности пика поглощения ХСТ, что может говорить об образовании комплексного соединения.

Состав комплексов изучали в буферных растворах с рН 7 при длине волны 238 нм. Для определения состава использовали спектрофотометрический метод мольных отношений [12]. Графическая зависимость оптической плотности растворов ХСТ от концентрации арабиногалактана показывает присутствие в растворе комплексов АГ+ХСТ состава 3:1, т.е. при образовании комплекса на три элементарных звена АГ приходится одна молекула хлорсульфурона.

На основании данных метода молярных отношений был сделан расчет константы устойчивости полученного соединения, которая составила рК = 4.5+0.2-104 л/моль, что свидетельствует об образовании довольно устойчивого продукта реакции.

X, нм

Рис. 1. УФ-спектр растворов АГ(1), ХСТ(2), АГ-ХСТ(3), растворитель - фосфатный буфер. СХСТ=1-10-5 моль/л,

САГ= 1 ■ 10-5 моль/л, 1 = 1 см.

Кроме того, состав комплекса АГ - ХСТ был определен методами денсиметрии и вискозиметрии. Как видно из рис. 2, способность АГ к ком-плексообразованию с ХСТ отражается на объемных свойствах растворов. Так, зависимость кажущегося молярного объема АГ от его концентрации при фиксированном содержании ХСТ имеет максимум, соответствующий отношению АГ:ХСТ=3:1. Для растворов АГ экстремумы не обнаружены. Измене -ния свойств растворов, происходящие при взаимодействии компонентов системы, отражаются и на изменении вязкости комплексов (рис. 3). Зависимость динамической вязкости для трехкомпонентной системы (АГ+буфер+ХСТ) имеет сложный характер с явно выраженной точкой перегиба при соотношении АГ :ХСТ=3:1.

Таким образом, денсиметрические, вискози-метрические и спектральные исследования показали, что АГ образует стабильный комплекс с ХСТ в разбавленном фосфатнобуферном растворе состава 3:1.

ФуАГ, см3/моль

Саг, моль/л

Рис. 2. Зависимость кажущегося молярного объема элементарного звена АГ от его концентрации в буфере (1) и буферном растворе ХСТ (2) при 30 °С,

СХСТ = 0.01 моль/л.

П , мПа * с

Саг, моль/л

Рис. 3. Зависимость динамической вязкости раствора АГ от его концентрации в буфере (1) и буферном растворе ХСТ (2) при 30 °С, СХСТ = 0.01 моль/л.

Формирование комплексов подтверждают данные ЯМР 1Н спектроскопии. В спектре 1Н ЯМР, зарегистрированного при смешении АГ и ХСТ, сигналы протонов ароматического кольца незначительно уширяются и сдвигаются в сильное поле примерно до 0.05 м.д. В то же время происходит сдвиг сигналов протонов при С12 от 2.5 м.д. до 2.3 м.д. соответственно. Таким образом, в спектре 1Н ЯМР комплекса АГ+ХСТ в результате происходящего между полисахаридом и гербицидом взаимодействия, химические сдвиги сигналов атомов углерода ХСТ отличаются от их стандартных значений в спектре гербицида. Эти изменения могут указывать на происходящее комплексообра-зование между АГ и ХСТ с участием гидроксильных и гликозидных групп молекул полисахарида и аминогрупп ХСТ.

Взаимодействие полисахарида с ХСТ характеризуется значительными изменениями в ИК спектрах. Были исследованы спектры исходных веществ и полученных комплексов с отнесением наиболее важных полос. Обнаружено, что в спектрах выделенных комплексов наиболее яркие изменения наблюдаются в области 3090-3500 см-1. Происходит заметное уширение огибающей полосы валентных колебаний гидроксильных групп АГ и амино-групп ХСТ при более четком разделении ее максимумов при 3190 и 3319 см-1 . Этот факт может свидетельствовать о перераспределении системы водородных связей и дифференцировании более и менее сильных связей, поглощающих в области больших и меньших длин волн соответственно. Кроме того, интенсивность валентных колебаний карбонильной группы уменьшается, а сама полоса поглощения сдвигается в низкочастотную область на 63 см-1. Особенно сильно изменение ИК-спектра проявляется в области колебаний гликозидных связей АГ. Наблюдается как

уширение контура, так и уменьшение интенсивности полос поглощения в области 960-1147 см-1. Все эти изменения могут свидетельствовать об образовании межмолекулярных водородных связей посредством гидроксильных и гликозидных групп молекул полимерной матрицы, а также карбонильных и аминогрупп гербицида, т.е. присоединение ХСТ к АГ осуществляется, в основном, при взаимодействии этих групп.

Были определены углы вращения исходных (АГ, ХСТ) соединений и синтезированного комплекса, которые составили [a]D25: + 14+2, +9±1 и +2±1 соответственно. Уменьшение величины удельного вращения полученного соединения также свидетельствует об изменении качественного состава продуктов комплексообразования.

Таким образом, проведенные исследования показали, что при взаимодействии АГ с ХСТ образуется комплексное соединение состава 3:1. Формирование комплекса происходит с участием гидроксильных, гликозидных, амино- и карбонильных групп биополимера и гербицида. Синтезированный комплекс может быть использован для эффективной защиты сельскохозяйственных культур от сорных растений.

Работа выполнена при финансовой поддержке Госконтракт «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России на 2009-2013 гг». №02.740.11.0648.

ЛИТЕРАТУРА

1. Макеева-Гурьянова Л. Т., Спиридонов Ю. А., Шестаков В. Г. // Агрохимия. 1987. №2. С. 115-128.

2. Кузнецов В. М. Химико-технологические основы разработки и совершенствования гербицидных препаративных форм. Москва: Химия, 2006. 320 с.

3. Бегунов И. И., Надыкта В. Д., Терехов В. И., Бегунова А. Г. Эффективность композиций на основе хитозана против фомопсиса подсолнечника // Современные перспективы в исследовании хитина и хитозана: сб. матер. межд. конф. СПб. 2003. С. 67-69.

4. Халиков С. С., Кутлымуратов А. П., Кристаллович Э. Л., Ходжаева М. А., Абдуллаев Н. Д., Садыков Т. Т., Арипов Х. Н. // Химия природн. соедин. 1995 №4. С. 556-562.

5. Антонова Г. Ф., Тюкавкина Н. А. // Хим. древесины. 1983 №2. С. 89-96.

6. Арифходжаев А. О. // Химия природ. соедин. 2000. №3. С. 185-197.

7. Оводов Ю. С. // Биоорганическая химия. 1998. Т. 24. №7. С. 483-496.

8. Kiyohara H., Cyong JC., Yamada H. // Carbohydrate Research. 1989. V. 193. №10. P. 193-200.

9. Shimizu N., Tomoda M., Gonda R., Kanari M.,Takanashi N. // Chem. Pharm. Bull. 1989. V. 37, №5. Р. 1329-1332.

10. Антонова Г. Ф., Усов А. И. // Биоорг. хим. 1984. Т. 10, №12. С. 1664-1669.

11. Николаева Г. В., Левин Э. Д., Иоффе Г. М. Э. // Химия древесины. 1971. №8. С. 155-158.

12. Булатов М. Н., Калинкин Н. П. Практическое руководство по фотометрическим методам анализа. Л.: Химия. 1986. 284 с.

Поступила в редакцию 07.09.2011 г.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.