ВЫЯВЛЕНИЕ ИНСУЛИНА И ГЛЮКАГОНА В ПРОЦЕССЕ ЭМБРИОНАЛЬНОГО ГИСТОГЕНЕЗА ПОДЖЕЛУДОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ У ИГЛИСТЫХ МЫШЕЙ (ACOMYS) Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

МАТЕРИАЛЫ V НАЦИОНАЛЬНОГО КОНГРЕССА ПО РЕГЕНЕРАТИВНОЙ МЕДИЦИНЕ

223

Выводы. Антиглаукомные ЛП, содержащие БХ, могут в высоких концентрациях нарушать структуру и функциональные свойства ЭК. Применение данных ЛП нецелесообразно при низкой плотности ЭК роговицы и после кератопластики.

Литература:

1. Loftsson T., Jansook P., Stefansson E. Acta Ophthalmol. 2012. V.9. № 7. P. 603-608.

2. Acheampong A.A., Shackleton M., John B. et al. Drug Metab Dispos. 2002. V.30. № 4. P.421-429.

3. Lee V.H., Luo A.M., Li S.Y. et al. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1991. V.32. № 11. P. 2948-2957.

ВЫЯВЛЕНИЕ ИНСУЛИНА И ГЛЮКАГОНА В ПРОЦЕССЕ ЭМБРИОНАЛЬНОГО ГИСТОГЕНЕЗА ПОДЖЕЛУДОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ У ИГЛИСТЫХ МЫШЕЙ (ACOMYS)

К.Н. Султанова, И.С. Неофитов,

А.А. Титова, Р.В. Урсан, А.С. Плюшкина,

М.С. Калигин, А.П. Киясов

ФГАОУ ВО Казанский (Приволжский) федеральный университет, Казань, Россия

e-mail: kasana555_07@mail.ru

Ключевые слова: инсулин, глюкагон, эмбриогенез, поджелудочная железа, мыши Acomys.

Мыши Acomys (иглистая мышь) — малоизученная удобная модель для изучения эмбриогенеза, так как у этих мышей более длительный период беременности 39-40 дней [1], 2-4 мышонка в помете, рождающиеся с высокой степенью морфофункциональной зрелости [2]. До сих пор нет единой точки зрения и доказательств какие из двух основных типов клеток островков Лангерганса, а- или ß-клетки, появляются первыми в процессе эмбрионального гистогенеза поджелудочной железы [3, 4]. Поэтому целью нашего исследования было изучение экспрессии инсулина и глюкагона в поджелудочной железе иглистых мышей в процессе пренаталь-ного развития.

Материалы и методы. Исследование было проведено на мышах Acomys, были изучены 15-е, 19-е, 22-е, 24-е, 28-е, 34-е, 38-е сутки (Е) гестации. До Е28 исследовали целые эмбрионы, на более поздних сутках проводили забор фетальной поджелудочной железы. Гистологические срезы окрашивали иммуногистохимически с использованием антител к инсулину (Novocastra) и глюкагону (Dako).

Результаты. Первые глюкагон-позитивные клетки были обнаружены на Е19. На сроке Е22 выявлены первые инсулин-позитивные клетки. Между Е22 и Е28 инсулин-позитивные клетки единичны, далее их количество резко увеличивается, и на сроке Е34 выявляются инсулин-позитивные клетки преимущественно в центральной части островков Лангерганса. Количество глюкагон-по-зитивных клеток растет постепенно от Е19 к Е34.

Формирование кластеров, подобных островкам, начинается со срока Е22. Островки Лангерганса становятся отчетливо различимы с Е34, в которых инсулин-позитивные клетки занимают преимущественно центральную часть островка и располагаются группами, в виде ленты, или рассеяны по всему островку неорганизованным образом. Глюкагон-позитивные клетки на поздних сроках гестации находятся преимущественно на периферической части островка, и встречаются единичные клетки в паренхиме органа.

Выводы. Таким образом, у иглистых мышей в процессе пренатального развития а-клетки появляются раньше, чем ß-клетки. Увеличение количества глюкагон-позитив-ных клеток идет постепенно, а инсулин-позитивных клеток — скачкообразно, основной момент кратного роста количества ß-клеток происходит с Е28 до ЕЗ4. У иглистых мышей островковый эндокринный аппарат поджелудочной железы сформирован к моменту рождения. Работа выполнена в рамках Программы академического стратегического лидерства Казанского Федерального Университета (Приоритет-2030).

Литература:

1. Haughton C.L., Gawriluk T.R., Seifert A.W. J.Am. Assoc. Lab. Anim. Sci. 2G16. V. 55(1). P. 9.

2. Pinheiro G., Prata D.F., Araújo I.M. et al. Lab. Anim. 2G18. V. 52(6). P. 565.

3. Jensen J., Heller R.S., Funder-Nielsen T. et al. Diabetes. 2GGG. V. 49(2). P. 16З.

4. Jennings R.E., Berry A.A., Kirkwood-Wilson R. et al. Diabetes. 2Gm V. 62(1G). P. З514.

МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ОТДАЛЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ АЦЕЛЛЮЛЯРНОГО ДЕРМАЛЬНОГО МАТРИКСА ДЛЯ ГЕРНИОПЛАСТИКИ

И.В. Супрун, Г.П. Чупрынин, А.А. Фоменко, Е.А. Солоп, А.С. Асякина, А.А. Веревкин, Я.А. Козмай, Т.В. Русинова, К.И. Мелконян

ФГБОУ ВО КубГМУ Минздрава России, Краснодар, Россия

e-mail: supruniv@ksma.ru

Ключевые слова: герниопластика, ацеллюлярный дермаль-ный матрикс, иммуногистохимия.

На долю герниопластики приходится 20% всех операций в абдоминальной хирургии. При этом в 26% случаев в позднем послеоперационном периоде развивается рецидив грыжи. Натяжная герниопластика, лишённая этого недостатка, не позволяет ушивать крупные грыжи ввиду опасности развития дыхательной недостаточности. Альтернативой может служить ненатяжная пластика с использованием синтетического материала. Однако их применение сопряжено с риском рецидива, появления парестезий или хронического болевого синдрома.

Это делает актуальным поиск замены существующим материалам для пластики грыж. Перспективной альтернативой представляется ацеллюлярный дермальный ма-трикс (АДМ), получаемый путём обесклечивания дермы свиньи.

Целью исследования был морфологический анализ отдалённых результатов имплантации ацеллюлярного дермального матрикса для закрытия грыжевого дефекта в условиях экспериментальной модели.

Для моделирования вентральной грыжи у поросёнка породы Ландрас была рассечена белая линия живота. После заживания послеоперационной раны выполнили герниопластику с помощью АДМ, полученного путём обработки свиной дермы растворами Тритона Х-100 и трипсина. Через 120 дней животное вывели из эксперимента. Ткани из области ушивания грыжи подвергли гистологическому исследованию. Помимо рутинной окраски гематоксилином-эозином, использовали трихром по Массону и иммуногистохимическую реакцию с антителами к CD31, CD68 и коллагену I типа.

Гены & Клетки XVII, №З, 2G22