CC BY
53Т 64 (8)
ИЗВЕСТИЯ ВЫСШИХ УЧЕБНЫХ ЗАВЕДЕНИЙ. Серия «ХИМИЯ И ХИМИЧЕСКАЯ ТЕХНОЛОГИЯ»
2021
V 64 (8) ChemChemTech 2021
DOI: 10.6060/ivkkt.20216408.6436 УДК: 543.05 : 547.3
СПЕКТРОФОТОМЕТРИЧЕСКОЕ И ЦВЕТОМЕТРИЧЕСКОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ ФЕНОЛА
С 4-АМИНОАНТИПИРИНОМ
Э.И. Цыгулева, С.Ю. Доронин
Эльмира Иршатовна Цыгулева*, Сергей Юрьевич Доронин
Кафедра аналитической химии и химической экологии, Саратовский государственный университет им. Н.Г. Чернышевского, Астраханская ул., 83, Саратов, Российская Федерация, 410012 E-mail: tatianaahrimova@mail.ru*, doroninsu@mail.ru
Впервые исследована экстракция индофенола, образованного по реакции 4-ами-ноантипирина с фенолом и K3Fe(CN)6 в присутствии неионного поверхностно-активного вещества (ПАВ) Тритона Х-100 в щелочной среде с применением методологии мицеллярной экстракции на основе «точки помутнения». Для создания рН и в качестве высаливающего агента применяли водные растворы карбоната натрия. Последний, оказывая высаливающий эффект, способствует фазовому разделению в исследуемой системе на мицеллярную фазу, насыщенную ПАВ (Тритоном Х-100) и водную фазу, обедненную ПАВ без дополнительного нагревания при комнатной температуре. Установлены оптимальные условия фазового разделения в системе 4-аминоантипирин - K3Fe(CN)6 - Тритон Х-100 - Na2CO3: h№3 М 4-АА; 8%-ный K3Fe(CN)6; (3-7)%-ный Тритон Х-100; 0,25 М Na2CO3. Показано, что мицеллярно-насыщенные фазы ПАВ (Тритон Х-100), эффективно экстрагируют аналитическую форму (индофенол), могут быть предложены для экстракционно-спектрофотометрического и цве-тометрического определения фенола. Так, для спектрофотометрического определения фенола (Хмакс= 500 нм) закон Бугера-Ламберта-Бера подчиняется уравнению вида: y = 0,053x --0,005, R2 = 0,99). Диапазон определяемых содержаний находится в интервале 2^10'5 - 2^№4 M. Разработана методика экстракционно-цветометрического определения фенола в водных средах (канал цветности R): y = 109x - 346, R2 = 0,98; НГОС = 110-6 М). Построены профили лепестковых диаграмм для цветометрического определения фенола, получены зависимости их площади (S) и периметра (P) от его концентрации (P: у = 225х - 634; R2=0,99; S: у = 18972 х -- 73663; R2=0,97).
Ключевые слова: фенол, поверхностно-активные вещества, мицеллярная экстракция в ''точке помутнения'', цветометрия, фенольный индекс, 4-аминоантипирин
SPECTROPHOTOMETRIC AND COLORIMETRIC DETERMINATION OF PHENOL WITH 4-AMINOANTIPIRINE
E.I. Tsygulyova, S.Yu. Doronin
Elmira I. Tsygulyova*, Sergei Yu. Doronin
Department of Analytical Chemistry and Chemical Ecology, Saratov State University, Astrakhanskaya st., 83, Saratov, 410012, Russia
E-mail: tatianaahrimova@mail.ru* doroninsu@mail.ru
For the first time, the extraction of indophenol formed by the reaction of 4-aminoantipyrine with phenol and K3Fe(CN)6 was studied using the active non-ionic substance (surfactant) Triton X-100 in an alkaline medium using the micellar extraction methodology based on the "cloud point ".
Aqueous solutions of sodium carbonate were used to create pH and as a salting-out agent. The latter, having a salting-out effect, promotes the phase separation in the studied system into a micel-lar phase saturated with surfactants (Triton X-100) and an aqueous phase depleted in surfactants without additional heating at room temperature. The optimal conditions for phase separation in the system 4-aminoantipyrine were- KFe(CN)6 - Triton X-100 - Na2CO3: 110-3 M 4-AA; 8% KFe(CN)6; (3-7)% - Triton X-100; 0.25 M Na2CO3. It has been shown that micellar-saturated surfactant phases (Triton X-100) effectively extract the analytical form (indophenol) and can be proposed for the extraction-spectrophotometric and colorimetric determination of phenol. So, for the spectrophotometric determination of phenol (Amax = 500 nm), the Bouguer-Lambert-Beer law obeys an equation of the form: y = 0,053x - 0.005, R2 = 0.99). The range of the determined contents is in the range 2d0r5 - 2d0r4 M. The method of extraction-colorimetric determination of phenol in aqueous media (chromaticity channel R) has been developed: y = 109x - 346, R2 = 0,98; NGOS = 1d0r6 M). The profiles of radar diagrams for the colorimetric determination of phenol were constructed. Tthe dependences of their area (S) and perimeter (P) on its concentration were obtained (P: y = 225x - 634; R2 = 0.99; S: y = 18972 x - 73663; R2 = 0.97).
Key words: phenol, surfactants, «cloud point» micellar extraction, colorometry, phenolic index, 4-ami-noantipyrin
Для цитирования:
Цыгулева Э.И., Доронин С.Ю. Спектрофотометрическое и цветометрическое определение фенола с 4-аминоанти-пирином. Изв. вузов. Химия и хим. технология. 2021. Т. 64. Вып. 8. С. 35-41
For citation:
Tsygulyova E.I., Doronin S.Yu. Spectrophotometric and colorimetric determination of phenol with 4-aminoantipirine.
ChemChemTech [Izv. Vyssh. Uchebn. Zaved. Khim. Khim. Tekhnol.]. 2021. V. 64. N 8. P. 35-41
ВВЕДЕНИЕ
Фенол - токсикант, он действует на организм человека, нарушая функции нервной системы, раздражает слизистые оболочки глаз, дыхательных путей, кожу (ПДК 5 мг/м3, в водоемах 0,001 мг/л). Поэтому определение фенола и его производных - актуальная аналитическая задача.
Самые распространенные способы определения фенола являются неселективными (фотоэлек-троколориметрия) и продолжительными (ВЭЖХ). Спектроскопические, электрохимические, титри-метрические, хроматографические методы применяют для определения фенолов в различных водных объектах. Широкое распространение для определения фенолов получили электрохимические методы, среди которых чаще всего встречаются варианты дифференциально-импульсной и циклической вольтамперометрии [1-4].
Хроматографические методы определения фенолов преимущественно представлены высокоэффективной жидкостной хроматографией, наряду с тонкослойной, ионной, мицеллярной электрокинетической, газовой хроматографией и хромато-масс спектрометрией [5-19].
Развитие аналитической химии фенолов сопровождается исследованием новых методов концентрирования и разделения компонентов. Несмотря на тот факт, что экстракция достаточно хо-
рошо изучена, поиск новых ее вариантов продолжается. В последние годы большое распространение получил метод предварительного концентрирования поверхностно-активными веществами (ПАВ) на основе «точки помутнения» - «cloud point extraction, CP». Он основан на разделении гомогенного раствора ПАВ на фазу, обогащенную ПАВ, и фазу, обедненную ПАВ. Так известно, что водные растворы неионных ПАВ подвергаются фазовому разделению при повышенной температуре. Анионные ПАВ способны к разделению фаз уже при комнатной температуре [20, 21]. Такие свойства могут быть применены для экстракции, очистки и концентрирования различных аналитов, в том числе и фенолов. При этом мицеллярная экстракция хорошо сочетается с атомно-абсорбционным, атомно-эмиссионным, спектрофотометрическим, хроматографическим, электрохимическим, цвето-метрическим и другими методами анализа.
В связи с вышесказанным, настоящая работа посвящена разработке способа мицеллярно-экстракционного концентрирования фенола неионным ПАВ с последующим спектрофотометрическим (СФМ) и цветометрическим его определением.
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
Аппаратура. Весы аналитические общего типа WP-11 второго класса точности с наибольшим пределом взвешивания 100 г по ГОСТ 24104-88Е.
Сушильный шкаф СНОЛ (Т= 0 - 300 °С). Цифровой фотоаппарат «Samsung A8+». Двулучевой сканирующий спектрофотометр Shimadzu UV-1800. Программа обработки цифровых данных Adobe Photoshop CS6.
Реагенты. Неионный ПАВ - Triton X-100 (C14H22O(C2H4O)n, где n = 9-10), массовая доля основного вещества не менее 99,9 %. Карбонат натрия безводный, ГОСТ 83-79 Фенол кристаллический, ГОСТ 6417-72. 4-Аминоантипирин (4-АА), ТУ 6-09-3948. KsFe(CN)6, ГОСТ 4206-75.
Методика получения мицеллярных фаз. Для получения мицеллярных фаз на основе неионного ПАВ (Тритон Х-100) в пробирки общим объемом 10 мл вносили фенол концентрацией от 210-4 до 2 10-5 М, 0,05 мл 1Т0"1 М спиртового раствора 4-АА, 0,05 мл 8%-ного KsFe(CN)6 и 1 мл 1,25 М Na2COs, 0,75 мл 20%-ного Тритона Х-100, содержимое тщательно перемешивали. После чего пробирки нагревали на водяной бане при температуре (80 - 90) °С, а затем охлаждали холодной водой и (или) в холодильнике.
Цветометрическая обработка и построение лепестковых диаграмм. Для цветометриче-ского определения фенола необходимую часть цветного изображения окрашенных фаз ПАВ усредняли, применяя графический редактор AdobePhotoshop CS6, до одного пикселя с помощью фильтра «пикселизация». После усреднения цвета определяли яркость цветовых параметров R, G, B. По полученным данным строили градуиро-вочные зависимости в координатах яркость цветового канала - рс(фенола).
Для количественного цветометрического определения фенола цифровые изображения представляли в виде лепестковых диаграмм (ЛД). Последние состояли из шести осей, каждая из ^ которых соответствовала значениям ин-тенсивностей (Fi) цветовых координат в модели RGB CMYK. ЛД строили в оболочке электронных таблиц Microsoft Excel [22-24].
Для оценки содержания фенола расчитывали геометрические параметры площади (5) и периметра (P) лепестковых диаграмм, по формулам:
Р = Y Va2+b2 - 2ab *cos(ab), S = да a+bsin(ab)), где a, b - стороны треугольника; cos(ab) - cos угла между сторонами а, b. sin(ab) - sin угла между сторонами а, b.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
Применение методологии на основе «точки помутнения», «cloud point» (СР), в которой в каче-
стве экстрагентов применяют разбавленные водные растворы нелетучих, малотоксичных ПАВ, является хорошей альтернативой классической экстракции. Эта методология применима для концентрирования аналитов как неорганической, так и органической природы с высокими значениями коэффициентов извлечения. Методология СР-концен-трирования основана на разделении гомогенных растворов ПАВ (их смесей) при нагревании, изменении рН, добавлении различных высаливателей на две изотропные фазы: одна из них, обогащенная ПАВ (Surfactant-rich phase; micellar-rich phase), концентрирует вещества, до фазового разделения, распределенные по всему объему раствора; другая фаза, обедненная ПАВ, или водная фаза (micellar-dilute phase, micelle-poor, surfactant depleted, aqueous phase), содержит ПАВ с концентрацией до ККМ и остаточные количества экстрагируемого вещества. Обогащенная ПАВ фаза обычно является экстрагентом [20].
Ранее данный способ экстракции был исследован нами на примере реакции диазотирова-ния 4-нитроанилина (наиболее реакционноспособ-ный ариламин, образующий устойчивую соль -хлорид 4-нитрофенилдиазония) и последующего азосочетания, приводящего к получению окрашенных аналитических форм соответствующих азосо-единений [22].
Однако для определения фенолов, в частности такого показателя как фенольный индекс [2527], применяют реакцию с 4-аминоантипирином (схема) в присутствии окислителя (например, K3Fe(CN)6), которая хорошо изучена в водных средах и не исследована в присутствии организованных сред на основе водных растворов неионных ПАВ.
О
н,с
4-аминоантипирин
(0)
фенол
(1), (2),
индофенол (I)
Поэтому на примере системы: фенол - 4-аминоантипирин - KзFe(CN)6 - Тритон Х-100 - Na2COз нами реализована возможность мицеллярно-экс-тракционного концентрирования фенола с последующим СФМ и цветометрическим его определением с улучшенными метрологическими характеристиками, в частности, с пониженным пределом обнаружения.
Для разработки спектрофотометрического способа определения фенола фазу, обогащенную
ПАВ, в которой концентрируется аналит в форме индофенола (I), необходимо отбирать и разбавлять приблизительно в 5 раз для последующей регистрации электронных спектров поглощения. При этом эффект концентрирования индофенола (I) будет снижаться. Распределение реактантов в водно-мицеллярной системе контролировали спектрофо-тометрически в диапазоне (200-800) нм, l = 1 см, при комнатной температуре. Полученные спектры поглощения представлены на рис. 1.
Спектры поглощения этой системы имеют один максимум при 500 нм (рис. 1а), интенсивность которого возрастает при увеличении концентрации фенола и, как следствие, аналитической формы индофенола (I). Концентрацию последней определяли по градуировочному графику, представленному на рис. 16. Исходя из рис. 16, установлен диапазон определяемых содержаний фенола, который составил 2-10-5-2 10-4 М.
А
1,2 1
0,8 0,6 0,4 0,2 0
420
470
520 570 X, нм
2,5 А
1,5
0,5
10
20
30 С,
фенол
40 10-5
50
б
Рис. 1. а - Спектры поглощения системы фенол - 4-АА-KjFe(CN)6 - Тритон Х-100 - Na2CÜ3 относительно контрольного раствора. с4-аа = 1 ■ 10-3 М; с(№2СОз) = 0,25 М; ю(Тритон Х-100) = 3%; ro(K3Fe(CN)6) = 0,8%; с(фенола) = 1 - 2-10-5; 2 - 5-10-5; 3 - 110-4; 4 - 210-4 М. б - Зависимость оптической
плотности (А) - с(фенола). y = 0,053x - 0,0045 (R2 = 0,9982) Fig. 1. a - Absorption spectra of the phenol - 4-AA - KFe(CN)6 - system Triton X-100 - Na2CO3 relative to the control solution. C4-aa = 1 ■ 10-3 M; c(Na2CO3) = 0.25 M; ro(Triton X-100) = 3%; ro(K3Fe(CN)6) = 0.8%; c(phenol) = 1 - 210-5; 2 - 5 10-5; 3 - 1 10-4; 4 - 210-4 M. b - Dependence of optical density (A) - c(phenol). y = 0.053x - 0.0045 (R2 = 0.9982)
Оценку правильности результатов спектро-фотометрического определения фенола с предварительным СР-концентрированием осуществляли методом «введено-найдено» (табл. 1).
Таблица 1
Результаты СФМ определения фенола в модельном
растворе (n = 3, Р = 0,95). Table 1. Results of spectrophotometric determination of
№ р-ра Введено, M Найдено, М X" ± AX, М Sr, %
1 2,0 10-5 2,5910-5 (2,59 ± 0,01)10-5
2 2,60 10-5 3,4
3 2,5910-5
1 6,7 10-5 (6,7 ± 0,03)10-5
2 8,0 10-5 6,7 10-5 4,2
3 6,7 10-5
1 2,810-4 (2,9 ± 0,01)10-4
2 2,0-10-4 2,810-4 5,5
3 2,910-4
Предложенный спектрофотометрический способ позволяет определять фенол в диапазоне концентраций от 210-5 до 210-4 М, при этом погрешность спектрофотометрического определения не превышала 6%.
250 I(R) 6
200 5 _ 4 ^^^
150 3
100 2
50 1 J*
0
3,9 4,4 4,9 5,4 С 5,9 рС
Рис. 2. Зависимость интенсивности канала R от ^с(фенола).
с4-АА = 110-3 М; с(№2СОз) = 0,25 М; ю(Тритон Х-100) = 3%; ro(K3Fe(CN)6) = 0,8%; с(фенола) = 1 - 1-10-4; 2 - 4-10-5; 3 - 1-10-5;
4 - 410-6; 5 - 210-6; 6 - 110-6 М Fig. 2. Dependence of the R channel intensity on lgc(phenol). с4-аа = 110-3 М; с(№2СОз) = 0.25 М; ro(Triton X-100) = 3%; ro(K3Fe(CN)6) = 0.8%; ^phenol) = 1 - 1-10-4; 2 - 410-5; 3 - 1-10-5;
4 - 410"6; 5 - 210"6; 6 - 110-6 М
Поскольку экстракционно -фотометрический вариант определения фенола требует стадии разбавления фазы, насыщенной ПАВ, нами предложен цветометрический способ регистрации аналитического сигнала в исследуемой системе (интенсивность параметров цветности), при котором не нужно разбавлять мицеллярную фазу. При этом эффект концентрирования аналитической формы
а
2
1
0
0
индофенола (I) сохраняется и появляется возможность снижения предела обнаружения фенола (и его производных) до уровня ПДК. Так, на рис. 2 представлена зависимость интенсивностия канала R (оптимальный параметр) от логарифма концентрации фенола. Уравнение регрессии имеет вид y = 109x - 346, коэффициент корреляции R2 графической зависимости составил 0,98.
Оценку правильности результатов определения фенола с предварительным СР--концентрированием осуществляли методом «введено-найдено» по цветометрическому параметру R (табл. 2).
Таблица 2
Результаты цветометрического определения фенола
(n = 3, Р = 0,95) Table 2. Results of colorimetric determination of phenol (n = 3, P = 0.95)
№ р-ра Введено, M Найдено, М X" ± AX, М Sr, %
1 1,010-5 1,3 10-5 (1,3 ± 0,2)^10-5 5,1
2 1,3 10-5
3 1,4 • 10-5
1 5,510-5 5,5 • 10-5
2 5,110-5 (5,3 ± 0,5) • 10-5 9,0
3 5,210-5
1 4,0-10-4 4,4 10-5
2 4,6 10-5 (4,5 ± 0,2)10-5 5,2
3 4,6 10-5
Для количественной оценки цветометриче-ского определения фенола строили профили лепестковых диаграмм в цветовых координатах RGB CMYK (рис. 3). Из рис. 3 видно, что профиль лепестковой диаграммы сохраняет свою форму при увеличении концентрации фенола, при этом возрастает его площадь и периметр.
R
Y
Рис. 3. Профили лепестковых диаграмм системы фенол - 4-АА -KjFe(CN)6 - Тритон Х-100 - Na2CÜ3. с(фенола) = 1 - 110-4;
2 - 510-5; 3 - 210-5; 4 -1 10-5 М Fig. 3. Profiles of radar diagrams of the phenol system- 4-АА - K3Fe(CN)6 - Triton X-100- Na2CÜ3. ^phenol) = 1 - 1 10"4; 2 - 5 ■ 10-5; 3 - 210-5; 4 -1-10"5 М
На рис. 4 представлены зависимости площади (5) и периметра (Р) лепестковых диаграмм от логарифма концентрации фенола. Линейность гра-дуировочных зависимостей S и Р от -^с(фенола) наблюдалась в пределах 1 • 10"6-1-10-4 М, уравнения регрессии и величины достоверностей аппроксимации, представленные на рис. 4, имеют вид: периметр (Р) у = 225х - 634; R2 = 0,99; площадь (S) у = 18972 х - 73663; R2 = 0,97.
р 800 -| 700 -600 -500 -400 -300 200
4
рС
50000 -| 40000 -30000 20000 10000
4
5
рС
6
Рис. 4. Зависимости площади (S) и периметра (Р) лепестковых диаграмм от рс(фенола) Fig. 4. Dependencies of area (S) and perimeter (P) of radar diagrams on pc (phenol)
Цветометрический способ позволил определять фенол в диапазоне концентраций от 1 • 10-6 до 110-4 М (0,094-9,4 мг/л), т.е. на уровне единиц ПДК фенола и его летучих производных, но без дополнительной стадии концентрирования, основанной на их отгонке с водяным паром [28]. При этом погрешность цветометрического определения не превышала 10%. Таким образом, сочетание классического варианта определения фенола по реакции с 4-АА и предварительным его концентрированием отгонкой с водяным паром в сочетании с мицел-лярной экстракцией неионными ПАВ дает перспективы разработки методик цветометрического определения фенола и его производных на уровне долей ПДК.
ВЫВОДЫ
Для эффективного концентрирования индофенола, продукта взаимодействия 4-аминоанти-пирина с фенолом, предложена система: фенол - 4-аминоантипирин - K3Fe(CN)6 - Тритон Х-100 -
5
6
0
B
Na2CO3. Установлены оптимальные условия фазового разделения в этой системе: 1 ■ 10-3 М 4-АА, 8%-ный K3Fe(CN)6, 3%-ный Тритон Х-100, 0,25 М Na2CO3.
Разработана методика спектрофотометри-ческого определения фенола (^макс= 500 нм). Закон Бугера-Ламберта-Бера подчиняется уравнению вида: y = 0,053x - 0,005, R2 = 0,99) с диапазоном определяемых содержаний (2-10"5-2-10-4) M.
ЛИТЕРАТУРА
1. Жестовская Е.С., Доронин С.Ю. Мицеллярная экстракция в «точке помутнения» - как способ концентрирования фенолов. Бутлеров. сообщ 2016. Т. 45. № 2. С. 66-81.
2. Pourreza H., Rastegarzadeha C. Determination of Allura red in food samples after cloud point extraction using mixed micelles. Food Chem. 2011. V. 126. Is. 3. P. 1465-1469. DOI: 10.1016/j.foodchem.2010.11.158.
3. Mukherjee P., Padhan S.K., Dash S. Clouding behavior in surfactant systems. Adv. Colloid Interface Sci. 2011. V. 162. Is. 1-2. P. 59-79. DOI: 10.1016/j.cis.2010.12.005.
4. Шачнева Е.Ю., Онькова Д.В., Серекова С.М. Способы определения фенолов в объектах окружающей среды. Астрахан. Вестн. эколог. образования. 2013. Т. 26. № 4. С. 138-142.
5. Гаврилин М.В., Попова О.И., Губанова Е.А. Феноль-ные соединения надземной части шалфея мускатного (SalviaSclareaL.), культивируемого в Ставропольском крае. Химия растит. сырья. 2010. № 4. С. 99-104.
6. Сурсякова В.В., Бурмакина Г.В., Рубайло А.И. Разработка методик определения фенолов в питьевой и природных водах методами капиллярного электрофореза и высокоэффективной жидкостной хроматографии. Журн. Сибир. фед. ун-та. 2010. Т. 3. № 3. С. 268-277.
7. Hong-Wei Wu, Mei-Lan C., Dan S., Zhu Yan. Determination of Resorcinol and Phloroglucinol in Environmental Water Samples Using Ion Chromatography with Chemilumines-cence Detection. Chin. J. Analyt. Chem. 2012. V. 40. № 11. P. 1747-1751. DOI: 10.1016/S1872-2040 (11) 60588-4.
8. Gavin Q.W., Ramage R.T., Waldman J.M., She J. Development of HPLC-MS/MS method for the simultaneous determination of environmental phenols in human urine. Intern. J. Environ. Anal. Chem. 2014. V. 94. N 2. P. 168-182. DOI: 10.1080/03067319.2013.814123.
9. Zarejousheghania Z., Moderb M., Borsdorf H. A new strategy for synthesis of an in-tube molecularly imprinted polymersolid phase microextraction device: Selective off-line extraction of 4-nitrophenol as an example of priority pollutants from environmental water samples. Analyt. Chim. Acta. 2013. V. 798. P. 48-55. DOI: 10.1016/j.aca.2013.08.038.
10. Овчинников Д.В., Косяков Д.С., Ульяновский Н.В. Определение родственных лигнину фенолов методом высокоэффективной жидкостной хроматографии. Аналитика и контроль. 2014. Т. 18. № 3. С. 302-309. DOI: 10.15826/analitika.2014.18.3.006.
11. Liu P., Kallio H., Lu D., Zhou C., Yang B. Quantitative analysis of phenolic compounds in Chinese hawthorn (Crataegus spp.) fruits by high performance liquid chromatography-electrospray ionisation mass spectrometry. Food Chem. 2011. V. 127. N 3. P. 1370-1377. DOI: 10.1016/j.foodchem.2011.01.103.
12. Moldoveanu S.C., Kiser M. Gas chromatography/mass spectrometry versus liquid chromatography/fluorescence detection in the analysis of phenols in mainstream cigarette smoke. J. Chromatography A. 2007. V. 1141. N 1. P. 90-97. DOI: 10.1016/j.chroma.2006.11.100.
Впервые предложена методика экстрак-ционно-цветометрического определения фенола (НГОС = 110-6 М) в модельных растворах на примере исследуемой системы, основанная на зависимостях интенсивности цветометрического канала Я, площади (5) и периметра (Р) ЛД от концентрации или ^с(фенола) на уровне единиц ПДК.
REFERENCES
1. Zhestovskaya E.S., Doronin S.Yu. "Cloud point" micellar ecxtraction as a mode for phenols concentration. Butlerov. Soobshch. 2016. V. 45. N 2. P. 66-81 (in Russian).
2. Pourreza H., Rastegarzadeha C. Determination of Allura red in food samples after cloud point extraction using mixed micelles. Food Chem. 2011. V. 126. Is. 3. P. 1465-1469. DOI: 10.1016/j.foodchem.2010.11.158.
3. Mukherjee P., Padhan S.K., Dash S. Clouding behavior in surfactant systems. Adv. Colloid Interface Sci. 2011. V. 162. Is. 1-2. P. 59-79. DOI: 10.1016/j.cis.2010.12.005.
4. Shachneva E.Yu., On'kova D.V., Serekova S.M. Methods for the determination of phenols in environmental objects. Astrakhan. Vestn. Ekologich. Obrazovaniya. 2013. V. 26. N 4. P. 138-142 (in Russian).
5. Gavrilin M.V., Popova O.I., Gubanova E.A. Phenolic compounds of the aerial part of clary sage (SalviaSclarea L.), cultivated in the Stavropol Territory. Khim. Rastit. Syr'ya. 2010. N 4. P. 99-104 (in Russian).
6. Sursyakova V.V., Burmakina G.V., Rubailo A.I. Development of methods for the determination of phenols in drinking and natural waters by capillary electrophoresis and high performance liquid chromatography. Zhurn. Sibir. Fed. Unta. 2010. V. 3. N 3. P. 268-277 (in Russian).
7. Hong-Wei Wu, Mei-Lan C., Dan S., Zhu Yan. Determination of Resorcinol and Phloroglucinol in Environmental Water Samples Using Ion Chromatography with Chemilumines-cence Detection. Chin. J. Analyt. Chem. 2012. V. 40. N 11. P. 1747-1751. DOI: 10.1016/S1872-2040 (11) 60588-4.
8. Gavin Q.W., Ramage R.T., Waldman J.M., She J. Development of HPLC-MS/MS method for the simultaneous determination of environmental phenols in human urine. Intern. J. Environ. Anal. Chem. 2014. V. 94. N 2. P. 168-182. DOI: 10.1080/03067319.2013.814123.
9. Zarejousheghania Z., Moderb M., Borsdorf H. A new strategy for synthesis of an in-tube molecularly imprinted polymer-solid phase microextraction device: Selective off-line extraction of 4-ni-trophenol as an example of priority pollutants from environmental water samples. Analyt. Chim. Acta. 2013. V. 798. P. 48-55. DOI: 10.1016/j.aca.2013.08.038.
10. Ovchinnikov D.V., Kosyakov D.S., Ulyanovskiy N.V. Determination of lignin-related phenols by high performance liquid chromatography. Anal. Kontrol. 2014. V. 18. N 3. P. 302-309 (in Russian). DOI: 10.15826/analitika.2014.18.3.006.
11. Liu P., Kallio H., Lu D., Zhou C., Yang B. Quantitative analysis of phenolic compounds in Chinese hawthorn (Crataegus spp.) fruits by high performance liquid chromatography-electrospray ionisation mass spectrometry. Food Chem. 2011. V. 127. N 3. P. 1370-1377. DOI: 10.1016/j.foodchem.2011.01.103.
12. Moldoveanu S.C., Kiser M. Gas chromatography/mass spectrometry versus liquid chromatography/fluorescence detection in the analysis of phenols in mainstream cigarette smoke. J. Chromatography A. 2007. V. 1141. N 1. P. 90-97. DOI: 10.1016/j.chroma.2006.11.100.
13. Андреев Ю.А., Черновьянцев М.С., Морозова В.Е.
Идентификация и определение хлорированных фенолов в воде после дериватизации ангидридом монохлоруксус-ной кислоты газохроматографическим методом. Сорбц. и хроматограф. процессы. 2014. Т. 14. № 3. С. 449-457.
14. Танеева А.В., Дмитриева А.В., Новиков В.Ф., Ильин
B.К. Газохроматографическое определение фенолов в поверхностных водах с использованием полиоксиэти-лен бис арсената. Аналитика и контроль. 2020. Т. 24. № 4.
C. 305-314. Б01: 10.15826/апа1Шка.2020.24.4.001.
15. Беланова Н.А., Карпов С.И., Селеменев В.Ф., Чепеле-ваЕ.О., Дроздова Н.В., Афиногенов Ю.П. Оптимизация разделения некоторых флавоноидов методом ТСХ. Сорбц. и хроматограф. процессы. 2011. Т. 11. № 6. С. 905-912.
16. Галимова Д.Ф., Латыпова Г.М. Изучение полифеноль-ных соединений рябины обыкновенной флоры Башкортостана. Изв. Самар. науч. центра РАН. 2011. Т. 13. № 5. С. 33-35.
17. Мяделец М.А., Дутова С.В. Хроматографическое изучение фенольных соединений Со1ипа Оео1(1е8 (Яо8асеае). Растит. мир Азиат. России. 2012. Т. 10. № 2. С. 43-48.
18. Полуэктова Т.В., Коломиец Н.Э., Калинкина Г.И. Хроматографическое исследование изофлавоноидов климактерического сбора. Химия растит. сырья. 2011. № 2. С. 145-148.
19. Иванов В.В., Денисенко О.Н. Полифенольные соединения Горца (рейноутрии) сахалинского. Фунд. исслед. Фарм. науки. 2013. № 10. С. 374-377.
20. Чернова Р.К., Доронин С.Ю. Определение органических аналитов в растворах ПАВ: ионные и мицеллярные эффекты. Саратов: Изд-во Сарат. ун-та. 2017. 200 с.
21. Доронин С.Ю., Жестовская Е.С., Цыгулёва Э.И. Мицеллярно-экстракционное концентрирование и цветометрическое определение некоторых фенолов. Журн. аналит. химии. 2020. Т. 75. С. 502-509. Б01: 10.31857/Б0044450220060079.
22. Хорохордина Е.А., Чан Хай Данг. Методы экстракции фе-нольных экотоксикантов и их определения в материалах и объектах окружающей среды (обзор). Науч. вестн. Воронеж. гос. архит.-строит. ун-та. 2014. Т. 8. № 1. С. 93-105.
23. Рудаков О.Б., Черноусова О.В., Черепахина Р.Г., Рудаков Я.О. Цветометрическое определение минеральных примесей в цементах с использованием мобильных устройств. Аналитика и контроль. 2020. Т. 24. № 2. С. 114-123. Б01: 10.15 826/апаШка.2020.24.2.003.
24. Шульц Э.В., Моногарова О.В., Осколок К.В. Цифровая цветометрия: аналитические возможности и перспективы использования. Вестн. Москов. ун-та. Сер. 2. Химия. 2019. Т. 60. № 2. С. 79-87.
25. Тропынина Л.В., Карташова А.В., Жилина И.В., Романов П.В. Достоверность и информативность показателя «фенольный индекс». Контроль качества продукции. 2012. № 12. С. 27-30.
26. Алукер Н.Л., Лаврентьева А.Л., Суздальцева Я.М. Прямые оптические методы исследования в аналитике фенола. Оптика и спектроскопия. 2020. Т. 128. № 3. С. 435-441. Б01: 10.21883/0Б.2020.03.49072.137-19.
27. Клячина М.Н., Денисова С.А., Вандакурова Ю.А. Использование систем вода-ПАВ-неорганический высалива-тель для экстракционно-фотометрического определения фенола. Вестн. Перм. ун-та. 2014. № 1 (13). С. 70-78.
28. ПНД Ф 14.1.2:1.105-97 Количественный химический анализ вод. Методика выполнения измерений массовой концентрации летучих фенолов в природных и очищенных сточных водах фотометрическим методом после отгонки с водяным паром. М. 1997. 18 с.
13. Andreev Yu.A., Chernovyantsev M.S., Morozova V.E.
Identification and determination of chlorinated phenols in water after derivatization with monochloroacetic acid anhydride by gas chromatography method. Sorbts. Khromatograf. Prots. 2014. V. 14. N 3. P. 449-457 (in Russian).
14. Taneeva A.V., Dmitrieva A.V., Novikov V.F., Ilyin V.K. Gas chromatographic determination of phenols in surface waters using polyoxyethylene bis arsenate. Anal. Kontrol. 2020. V. 24. N 4. P. 305-314 (in Russian). DOI: 10.15826/analitika.2020.24.4.001.
15. Belanova N.A., Karpov S.I., Selemenev V.F., Chepeleva E.O., Drozdova N.V., Afinogenov Yu.P. Optimization of the separation of some flavonoids by TLC. Sorbts. Khromatograf. Prots. 2011. V. 11. N 6. P. 905-912 (in Russian).
16. Galimova D.F., Latypova G.M. Study of polyphenolic compounds of mountain ash in the common flora of Bashkortostan. Vestn. Samar. Nauch. Tsentra RAN. 2011. V. 13. N 5. P. 33-35 (in Russian).
17. Myadel M.A., Dutova S.V. Chromatographic study of phenolic compounds Coluria Geoides (Rosaceae). Rastit. Mir Asiat. Rossii. 2012. V. 10. Is. 2. P. 43-48 (in Russian).
18. Poluektova T.V., Kolomiets N.E., Kalinkina G.I. Chromatographic study of climacteric isoflavonoids. Khim. Rastit. Syr'ya. 2011. N 2. P. 145-148 (in Russian).
19. Ivanov V.V., Denisenko O.N. Polyphenolic compounds of the Highlander (Rhynoutria) Sakhalin. Fund. Issled. Farm. Nauki. 2013. N 10. P. 374-377 (in Russian).
20. Chernova R.K., Doronin S.Yu. Determination of organic analytes in surfactant solutions: ionic and micellar effects. Saratov: Izd-vo Sarat. University. 2017. 200 p. (in Russian).
21. Doronin S.Yu., Zhestovskaya E.S., Tsyguleva E.I. Micellar-extraction concentration and colorimetric determination of some phenols. Zhurn. Analyt. Khim. 2020. V. 75. P. 502-509 (in Russian). DOI: 10.31857 / S0044450220060079.
22. Khorokhordin E.A., Chan Hai Dang. Methods for the extraction of phenolic ecotoxicants and their determination in materials and environmental objects (review). Nauch. Vestn. Voronezh. Gos. Arkhit-stroit. Un-ta. 2014. V. 8. N 1. P. 93-105 (in Russian).
23. Rudakov O.B., Chernousova O.V., Cherepakhina R.G., Rudakov Ya.O. Colorimetric determination of mineral impurities in cements using mobile devices. Anal. Kontrol. 2020. V. 24. N 2. P. 114-123 (in Russian). DOI: 10.15826/analitika.2020.24.2.003.
24. Shultz E.V., Monogarova O.V., Oskolok K.V. Digital colorim-etry: analytical capabilities and prospects for use. Vestn. Moskov. Un-ta. Ser. 2. Khimiya. 2019. V. 60. N 2. P. 79-87 (in Russian).
25. Tropynina L.V., Kartashova A.V., Zhilina I.V., Romanov P.V. Reliability and information content of the "phenolic index" indicator. Kontrol Kachestva Produktsii. 2012. N 12. P. 27-30 (in Russian).
26. Aluker N.L., Lavrentyeva A.L., Suzdaltseva Ya.M. Direct optical research methods in phenol analytics. Opt. Spectros-kop. 2020. V. 128. N 3. P. 435-441 (in Russian). DOI: 10.21883/0S.2020.03.49072.137-19.
27. Klyachina M.N., Denisova S.A., Vandakurova Yu.A. The use of water-surfactant-inorganic salting-out systems for the extraction-photometric determination of phenol. Vestn. Perm. Un-ta. 2014. N 1 (13). P. 70-78 (in Russian).
28. PND F 14.1.2: 1.105-97 Quantitative chemical analysis of waters. Technique for measuring the mass concentration of volatile phenols in natural and treated wastewater by the photometric method after stripping with steam. M. 1997. 18 p. (in Russian).
Поступила в редакцию (Received) 04.05.2021 Принята к опубликованию (Accepted) 24.06.2021
