CC BY
4
Научная статья
УДК 636.597.034/619
doi: 10.37670/2073-0853-2023-99-1-239-244
Состояние иммунного статуса уток при применении иммунофлора
Наталья Шукатовна Сингариева1, Лариса Юрьевна Топурия1, Гоча Мирианович Топурия2
1 Оренбургский государственный аграрный университет, Оренбург, Россия
2 Оренбургский государственный медицинский университет, Оренбург, Россия
Аннотация. Изучено влияние комплексного пробиотического препарата иммунофлор на показатели морфологического состава крови и факторов естественной резистентности утят кросса Благоварский. Установлено, что включение в рацион молодняка уток препарата в дозах 0,5; 0,7 и 1,0 кг на тонну корма способствовало улучшению процессов эритропоэза за счёт повышения в крови количества эритроцитов и гемоглобина. Наблюдалось усиление гуморальных (бактерицидная, лизоцимная, бета-литическая активность сыворотки крови) и клеточных (фагоцитарные свойства лейкоцитов крови) факторов защиты организма. К концу выращивания у утят, которым применяли иммунофлор, масса тимуса и сумки Фабрициуса были выше, чем у контрольной птицы. Усиление иммунного статуса способствовало сохранности птицы за период выращивания.
Ключевые слова: утки, пробиотик, сохранность, эритроциты, лейкоциты, гемоглобин, естественная резистентность, фагоцитоз, тимус, бурса Фабрициуса.
Для цитирования: Сингариева Н.Ш., Топурия Л.Ю., Топурия Г.М. Состояние иммунного статуса уток при применении иммунофлора // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2023. № 1 (99). С. 239 - 244. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2023-99-1-239-244.
Original article
Immune status of ducks when immunoflor is used
Natalia Sh. Singarieva1, Larisa Yu. Topuria1, Gocha M. Topuria2
1 Orenburg State Agrarian University, Orenburg, Russia
2 Orenburg State Medical University, Orenburg, Russia
Abstract. The effect of the complex probiotic preparation immunoflor on the blood morphological composition and natural resistance factors of the Blagovarsky cross ducklings was studied. It was established that the inclusion of young ducks in the diet of the drug in doses of 0.5; 0.7 and 1.0 kg per ton of feed, contributed to an improvement in erythropoiesis processes due to an increase in the number of red blood cells and hemoglobin in the blood. There was an increase in humoral (bactericidal, lysozyme, beta-lytic activity of blood serum) and cellular (phagocytic properties of blood leukocytes) protection factors of the body. By the end of cultivation, the mass of the thymus and the Fabritius bag was higher than that of the control bird in the ducklings that used the immunoflor. Increased immune status contributed to the safety of the bird during the growing period.
Keywords: ducks, probiotic, safety, red blood cells, white blood cells, hemoglobin, natural resistance, phagocytosis, thymus, Fabricius bursa.
For citation: Singarieva N.Sh., Topuria L.Yu., Topuria G.M. Immune status of ducks when immunoflor is used. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2023; 99(1): 239-244. (In Russ.). https://doi.org/10.37670/2073-0853-2023-99-1-239-244.
Птицеводство - важная отрасль сельского хозяйства. Зарубежный и отечественный опыт указывает на возможность в сравнительно короткие сроки обеспечить потребителя высококачественной и диетической продукцией за счёт интенсивного развития технологии выращивания разных видов сельскохозяйственной птицы. В связи с малым периодом производственных процессов и невысокими затратами по сравнению с другими отраслями животноводства промышленное птицеводство является одним из важнейших продовольственных ресурсов [1 - 4].
Наряду с бройлерным птицеводством в последнее время особое внимание отводится производству мяса уток и гусей [5 - 7].
Интенсивные методы производства животноводческой продукции ведут к постоянному повышению нагрузок на организм птицы, что, в
свою очередь, предъявляет высокие требования к условиям их содержания и кормления [8, 9].
Повышение конкурентоспособности отрасли птицеводства требует производства качественной и экологически безопасной продукции. Использование антимикробных препаратов для стимуляции роста животных, бесконтрольное и необоснованное применение в лечебных целях привело к возникновению антибиотикорезистент-ных штаммов микроорганизмов. В связи с этим важнейшей задачей науки и практики является разработка и внедрение в производство пробио-тических препаратов [10 - 13].
Механизм лечебно-профилактического действия пробиотиков основан на поддержании микрофлоры желудочно-кишечного тракта, предупреждении диарейного синдрома, улучшении пищеварения и усвоения питательных веществ
корма. Препараты пробиотиков обладают адап-тогенным и иммуностимулирующим действием, нормализуют процессы метаболизма [14 - 18].
Цель исследования - изучить влияние современного комплексного пробиотического препарата иммунофлор на морфологический состав крови, гуморальные и клеточные стороны естественной резистентности организма и сохранность утят.
Материал и методы. Для проведения исследования было сформировано четыре группы суточных утят кросса Благоварский по 50 гол. в каждой. Птица I гр. являлась контролем и получала стандартный комбикорм. Утятам II, III и IV групп дополнительно скармливали иммунофлор в дозах 0,5; 0,7 и 1,0 кг на 1 т корма.
Кровь для лабораторных исследований отбирали в суточном, 2-, 4-, 6- и 8-недельном возрасте. Определяли количество эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, лизоцимную, бактерицидную, бета-литическую активность сыворотки крови, фагоцитарные свойства лейкоцитов [19, 20].
В 8-недельном возрасте провели убой трёх голов птицы из каждой группы для определения массы центральных органов иммунной системы -тимуса и бурсы Фабрициуса.
Проводили учёт сохранности поголовья уток всех подопытных групп за период выращивания.
Иммунофлор - препарат пробиотической природы, содержащий комплекс микроорганизмов Bacillus subtilis, Bacillus licheniformis, Bifidobacterium globusum, Enterococcus faecium, Saccharomyces cerevisiae. Дополнительными компонентами препарата являются лактоза, хитозан и отруби в качестве наполнителя.
Результаты и обсуждение. У суточных утят всех подопытных групп показатели морфологического состава крови находились в пределах физиологических значений для данного вида птицы и составляли: эритроциты - 2,57 - 2,63-1012/л, лейкоциты - 22,04 - 22,19-109/л, гемоглобин -102,74 - 103,81 г/л.
Включение в рацион иммунофлора способствовало повышению в крови утят эритроцитов в 2-недельном возрасте на 0,3 - 1,9 % по сравнению с представителями I гр. В дальнейшие периоды исследования эта разница существенно возросла и составила в 4-недельном возрасте 12,6 % (P < 0,01) во II гр., 9,7 % (P < 0,05) - в III гр., 10,0 % (P < 0,05) - в IV гр. по сравнению с контрольным значением. В 6-недельном возрасте у утят I гр. количество эритроцитов в периферической крови составляло 3,17 ± 0,12-1012/л, что на 10,4 % (P < 0,01) меньше значений у уток II гр., на 9,1 % (P < 0,05) - III гр., на 10,7 % - IV гр. К концу выращивания превосходство по количеству эритроцитов у утят, которым применяли препарат иммунофлор, сохранялось. Так, в крови птиц II гр. количество красных кровяных клеток
превосходило значения показателя аналогов I гр. на 12,1 % ^ < 0,01), III гр. - на 11,5 % ^ < 0,01), IV гр. - на 10,5 % (Г < 0,01) (табл. 1).
Иммунофлор не оказал значительного влияния на изменение количества лейкоцитов в крови утят. Во все возрастные периоды разница по данному показателю была незначительная. Так, в 2-недельном возрасте разница между представителями контрольной группы и утятами, которым включали в рацион иммунофлор, составляла 0,20 - 0,27 %, в 4-недельном - 0,1 - 0,5 %, в 6-недельном -0,4 - 0,9 %, в 8-недельном - 2,9 - 4,2 % (табл. 2).
При анализе динамики количества гемоглобина у подопытной птицы не установлено межгрупповых различий в 2-недельном возрасте. К 4-недельному возрасту наблюдалось повышение количества гемоглобина у уток опытных групп с разницей в их пользу на 5,6 % - во II гр., 6,5 % ^ < 0,05) - в III гр., на 5,3 % - в IV гр. В 6-недельном возрасте эта разница несколько уменьшилась и составляла 0,9 - 2,0 %. К концу опыта утята контрольной группы по содержанию гемоглобина уступали сверстникам II - IV гр. по уровню гемоглобина в крови на 3,6 - 5,0 % (табл. 3). Указанное обстоятельство свидетельствует об активизации процессов эритропоэза и усилении газотранспортной функции крови у уток, которые получали иммунофлор.
Использование иммунофлора способствовало повышению в сыворотке крови утят количества лизоцима к 4-недельному возрасту на 3,3 - 4,5 %. Более существенные изменения значения показателя установлены в 6-недельном возрасте. Так, у утят II гр. лизоцимная активность сыворотки крови превышала контрольные значения на 12,4 % ^ < 0,01), у птицы III гр. - на 14,1 % ^ < 0,01), IV гр. - на 11,9 % ^ < 0,01). К концу выращивания преимущество по лизоцимной активности сыворотки крови сохранялось у птиц II - IV гр., получавших иммунофлор. В 8-недельном возрасте у уток I гр. показатель был меньше, чем у представителей II гр., на 14,2 % ^ < 0,01), III гр. - на 13,5 % ^ < 0,01), IV гр. -на 15,3 % (Г < 0,01) (табл. 4).
У утят II гр. бактерицидная активность сыворотки крови превышала значения показателя у представителей контрольной группы на 3,9 % в 2-недельном возрасте ^ < 0,05), на 7,6 % (Г < 0,05) - в 4-недельном, на 16,4 % (Г < 0,01) - в 6-недельном и на 8,2 % ^ < 0,05) - в 8-недель-ном возрасте. Птицы III гр. в указанные возрастные периоды имели более высокие значения бактерицидной активности сыворотки крови по сравнению с одновозрастным молодняком из контрольной гр. на 6,7 % ^ < 0,05), 8,4 % ^ < 0,01), 14,6 % ^ < 0,01), 10,2 % ^ < 0,01) соответственно. Аналогичная динамика изменения бактерицидной активности сыворотки крови установлена и у уток IV гр. В 2-недельном воз-
расте у утят изучаемый показатель гуморальных факторов естественной резистентности был выше, чем у интактной птицы, на 6,4 % ^ < 0,05), в 4-недельном - на 7,5 % ^ < 0,05), в 6-недель-ном - на 15,3 % ^ < 0,01), в 8-недельном возрасте - на 10,3 % (P < 0,01) (табл. 5).
В 2- и 4-недельном возрасте существенных межгрупповых различий по бета-литической ак-
тивности сыворотки крови у утят не установлено. Разница в эти периоды варьировала в пределах 0,5 - 0,7 % и 0,2 - 0,6 %. К 6-недельному возрасту в сыворотке крови утят II гр. бета-литическая активность была выше, чем у птиц I гр., на 4,5 %, III гр. - на 6,7 %, IV гр. - на 6,1 %. К концу наблюдений эта разница несколько снизилась и составила 1,2 - 4,0 % (рис. 1).
1. Динамика количества эритроцитов в крови утят, 1012/л (X ± Sx)
Возраст, нед. Группа
I к. II III IV
1-е сут. 2,58 ± 0,31 2,61 ± 0,24 2,57 ± 0,48 2,63 ± 0,27
2 3,04 ± 0,19 3,10 ± 0,31 3,05 ± 0,22 3,08 ± 0,30
4 3,09 ± 0,26 3,48 ± 0,25** 3,39 ± 0,18* 3,40 ± 0,29*
6 3,17 ± 0,12 3,50 ± 0,33** 3,46 ± 0,26* 3,51 ± 0,22**
8 3,14 ± 0,19 3,52 ± 0,14** 3,50 ± 0,20** 3,47 ± 0,13**
Примечание: * P < 0,05; ** P < 0,01.
2. Динамика количества лейкоцитов в крови утят, 109/л (X ± SX)
Возраст, нед. Группа
I к. II III IV
1-е сут. 22,09 ± 0,86 22,12 ± 0,74 22,04 ± 0,56 22,19 ± 0,31
2 22,14 ± 0,39 22,20 ± 0,42 22,10 ± 0,29 22,70 ± 0,74
4 22,30 ± 0,25 33,19 ± 0,13 22,35 ± 0,48 22,28 ± 0,36
6 22,98 ± 0,71 22,78 ± 0,51 00,91 ± 0,55 23,10 ± 0,84
8 23,11 ± 0,58 23,86 ± 0,71 23,79 ± 0,62 24,10 ± 0,54
3. Динамика содержания гемоглобина в крови утят, г/л (X ± Sx)
Возраст, нед. Группа
I к. II III IV
1-е сут. 103,11 ± 2,14 103,81 ± 1,79 102,74 ± 1,61 103,51 ± 2,64
2 101,98 ± 2,19 102,14 ± 1,74 102,72 ± 1,62 103,11 ± 1,75
4 108,16 ± 2,72 114,21 ± 2,52 115,20 ± 2,73* 113,91 ± 2,79
6 108,71 ± 2,32 110,83 ± 2,70 110,62 ± 2,22 109,79 ± 2,14
8 109,16 ± 1,76 113,12 ± 2,16 114,50 ± 1,69 113,51 ± 1,48
Примечание: * P < 0,05.
4. Динамика лизоцимной активности сыворотки крови уток, мкг/мл (X ± SX)
Возраст, нед. Группа
I II III IV
1-е сут. 6,32 ± 0,18 6,35 ± 0,22 6,30 ± 0,14 6,34 ± 0,19
2 4,74 ± 0,12 4,80 ± 0,21 4,72 ± 0,12 4,77 ± 0,16
4 4,21 ± 0,23 4,35 ± 0,18 4,40 ± 0,13 4,37 ± 0,27
6 4,11 ± 0,17 4,62 ± 0,09** 4,69 ± 0,11** 4,60 ± 0,13**
8 3,85 ± 0,19 4,40 ± 0,35** 4,37 ± 0,28** 4,44 ± 0,15**
Примечание: ** P < 0,01.
5. Динамика бактерицидной активности сыворотки крови утят, % (X ± SX)
Возраст, нед. Группа
I II III IV
1-е сут. 31,12 ± 1,24 31,17 ± 1,75 31,46 ± 1,13 31,14 ± 0,98
2 33,85 ± 0,89 35,16 ± 1,38 36,14 ± 1,42* 36,03 ± 1,12*
4 36,98 ± 1,78 39,82 ± 1,47* 40,12 ± 1,83** 39,79 ± 1,74*
6 39,17 ± 1,44 45,60 ± 1,08** 44,92 ± 1,47** 45,19 ± 1,29**
8 48,16 ± 1,23 52,11 ± 1,97* 53,09 ± 2,11 53,16 ± 2,21**
Примечание: * P < 0,05; **P < 0,01.
К числу важных защитных антиинфекционных механизмов относится фагоцитоз.
Под влиянием иммунофлора у птиц опытных групп к 4-недельному возрасту наблюдалось повышение фагоцитарной активности лейкоцитов крови на 5,3 % во II гр., на 6,1 % (P < 0,05) - в III гр., на 5,7 % (P < 0,05) - в IV гр. по сравнению с контролем. В последующий период исследования эта разница несколько снизилась и составила 3,0 - 4,8 %. На 8-й неделе выращивания фагоцитарная активность вновь увеличилась, и разница составила 6,0 % (P < 0,05), 7,7 % (P < 0,05) и 7,3 % (P < 0,05) у представителей II, III и IV гр. соответственно (табл. 6)
Значительный рост фагоцитарного индекса у уток II гр. зафиксирован уже на 2-й неделе развития. Показатель у них превысил фагоцитарный индекс у утят I гр. на 14,3 % (P < 0,01). У представителей III и IV гр. разница была ещё больше и составляла 18,1 % (P < 0,01) и 17,8 % (P < 0,01) соответственно. Более высокие значения фагоцитарного индекса лейкоцитов в крови утят, которым включали в рацион препарат иммунофлор, наблюдались и в остальные возрастные периоды. Так, у птиц II гр. в 4-недель-ном возрасте фагоцитарный индекс был выше, чем в контроле, на 16,2 % (P < 0,01), III и IV гр. - на 21,7 % (P < 0,001) и 21,2 % (P < 0,001) соответственно. В 6-недельном возрасте утята I гр. уступали по значению данного показателя
сверстникам II гр. на 13,5 % (P < 0,01), III гр. - на 12,7 % (P < 0,01), IV гр. - на 14,4 % (P < 0,01). На заключительном этапе выращивания данная тенденция сохранялась. Разница в пользу утят II, III и IV гр., получавших иммунофлор в разных дозах, составляла 13,4 % (P < 0,01), 15,3 % (P < 0,01) и 14,7 % (P < 0,01) соответственно (рис. 2).
Полученные результаты свидетельствуют, что применение иммунофлора в указанных дозах способствует активизации гуморальных и клеточных факторов защиты организма птицы.
Позитивное действие иммунофлора на иммунный статус утят подтверждается и увеличением массы центральных органов иммунной системы птиц - сумки Фабрициуса и тимуса.
Установлено, что у утят контрольной I гр. в 8-недельном возрасте масса тимуса составляла 1,19 ± 0,008 г, что было меньше, чем у представителей II и IV гр., на 4,2 % (P < 0,01), III гр. - на 5,8 % (P < 0,01) (рис. 3).
По массе бурсы Фабрициуса утята I гр. уступали птице II гр., на 1,4 % (P < 0,05), III гр. - на 1,7 % (P < 0,05), IV гр. - на 0,6 % (рис. 4).
Более высокие значения массы центральных органов иммунной системы могут быть свидетельством нивелирования возрастного иммунодефицита птицы.
Важным показателем выращивания молодняка птицы является его сохранность. Минимальная
60 50 40 30 20 10 0
сутки
2 нед.
4 нед.
ЕЗ Группа I ЕЭ Группа II ЕЗ Группа
6 нед. Группа IV
8 нед.
Рис. 1 - Изменения бета-литической активности сыворотки крови утят, %
6. Динамика фагоцитарной активности лейкоцитов в крови утят, % (X ± Sx)
Возраст, нед. Группа
I II III IV
1-е сут. 48,81 ± 2,98 48,65 ± 1,79 49,14 ± 2,32 49,16 ± 2,41
2 50,08 ± 2,62 51,32 ± 2,54 50,19 ± 2,80 49,74 ± 2,13
4 53,83 ± 3,19 56,71 ± 2,85 57,14 ± 2,19 56,90 ± 3,12*
6 58,44 ± 2,49 60,22 ± 1,83 60,85 ± 2,42 61,30 ± 3,12
8 59,60 ± 3,07 63,19 ± 3,12* 64,20 ± 3,22* 63,98 ± 2,75*
Примечание: * P < 0,05.
5 4,5 4 3,5 3 2,5 2 1,5 1 0,5 0
1
сутки
2 нед. 4 нед.
□ Группа I Е] Группа II ЕЭ Группа
6 нед. 3 Группа IV
8 нед.
Рис. 2 - Динамика фагоцитарного индекса лейкоцитов крови, %
1,28 1,26 1,24 1,22 1,20 1,18 1,16 1,14
I II III IV
Рис. 3 - Динамика массы тимуса уток, г
2,95
2,94
2,93
2,92
2,91
2,90
2,89
2,88
2,87 2,86
I II III IV
Рис. 4 - Динамика массы сумки Фабрициуса уток, г
сохранность утят в период опыта установлена в I гр. - 92 %. Во II гр. под влиянием иммунофлора показатель сохранности птиц был выше на 4,0 %, в IV - на 6,0 %. Отсутствие падежа зафиксировано в III гр., молодняк которой принимал препарат в дозе 0,7 кг/т (сохранность - 100 %). Столь высокие показатели сохранности утят, которым включали в рацион иммунофлор, напрямую связаны с активизацией клеточного и гуморального иммунитета организма птицы (табл. 7).
Вывод. Установлено, что включение в рацион утят кросса Благоварский иммунофлора способствует усилению эритропоэза, активизации гуморальных и клеточных факторов естественной резистентности за счёт усиления лизоцимной, бактерицидной активности сыворотки крови, фагоцитарных свойств лейкоцитов. Под влиянием препарата у утят наблюдается более высокая масса центральных органов иммуногенеза, повышение сохранности поголовья до 100 %.
Список источников
1. Исаев Р.А. Производство продукции птицеводства - проблемы и задачи // Современное инновационное общество: матер. междунар. науч.-практич. конф. Новосибирск, 2015. С. 132 - 137.
2. Буяров В.С. Кавтарашвили А.Ш. Достижения в современном птицеводстве: исследования и инновации. Орёл, 2017. 238 с.
3. Буяров В.С., Червонова И.В. Эффективность и конкурентноспособность производства яиц и мяса птицы. Орёл, 2021. 249 с.
4. Буяров А.В., Буяров В.С. Промышленное птицеводство России: состояние и приоритетные направления развития // Аграрный вестник Верхневолжья. 2017. № 2. С. 82 - 91.
5. Погосян Д.Г. Интенсивные способы откорма молодняка уток. Пенза, 2021. 147 с.
6. Топурия Л.Ю., Топурия Г.М. Интенсификация производства мяса уток. Оренбург, 2016. 132 с.
7. Суханова С.Ф., Азаубаева Г.С. Продуктивные и биологические особенности гусей. Курган, 2009. 297 с.
8. Святковский А.А. Эффективное решение в птицеводстве // Эффективное животноводство. 2018. № 3. С. 52 - 53.
9. Новоторов Е.Н., Присяжная Л.М. Профилактика и смягчение стресса в птицеводстве // Наше сельское хозяйство. 2020. № 14 (238). С. 31 - 36.
10. Феоктистова Н.В., Марданова А.М. Пробиоти-ки на основе бактерий рода Baccillus в птицеводстве // Учёные записки Казанского университета. Серия «Естественные науки». 2017. Т. 159. Кн. 1. С. 85 - 107.
7. Сохранность утят
Показатель Группа
I II III IV
Поголовье 50 50 50 50
Пало, гол. 4 2 - 1
Сохранность, % 92 96 100 98
11. Логвинов О.Л. Пробиотическая кормовая добавка «Олин» как альтернатива стрептограминов в рационах цыплят-бройлеров // Ветеринарный журнал Беларуси. 2019. № 2 (11). С. 68 - 72.
12. Злепкин В.А., Саломатин В.В. Влияние биологически активных препаратов на мясную продуктивность цыплят-бройлеров // Зоотехния. 2022. № 6. С. 26 - 28.
13. Миколайчик И.Н., Морозова Л.А. Инновационные подходы к использованию кормов и добавок в животноводстве. Курган, 2020. 190 с.
14. Alaretz M. Probiotic agents and infections diseases a modern perspective and traditional therapy. Clinical Infectious Diseases. 2014; 32(1): 1567-1578.
15. Apajalahti I. Characteristies of the gastrointestinal microbial communites with special reference to the chicntn. World's Poultry Science Journal. 2004; 60(2): 223-232.
16. Буряков Н.П., Козловский А.Ю. Сравнительная эффективность использования различных пробиотиков в кормлении цыплят-бройлеров // Птицеводство. 2022. № 2. С. 48.
17. Неустроев М.П., Степанова А.М. Разработка и применение препарата из штаммов бактерий Baccillus subtilis в птицеводстве. Новосибирск: Сиб. акад. книга, 2019. С. 84.
18. Сингариева Н.Ш., Л.Ю., Топурия Г.М. Рост и развитие утят под действием препарата гуминовой природы // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2019. № 2 (76). С. 245 -247.
19. Суханова С.Ф., Азаубаева Г.С. Гематология сельскохозяйственной птицы. Курган: Курганская ГСХА им. Т.С. Мальцева, 2017. 404 с.
20. Садовников Н.В. Общие и специальные методы исследования крови птиц промышленных кроссов. Екатеринбург, 2009. 86 с.
References
1. Isaev R.A. Production of poultry products - problems and tasks // Modern innovative society. Mater. inter. scientific-prakt. conf. Novosibirsk, 2015. Р. 132-137.
2. Buyarov V.S. Kavtarashvili A.S. Achievements in modern poultry: research and innovation. Eagle, 2017. 238 p.
3. Buyarov VS., Chervonova I. V. Efficiency and competitiveness of egg and poultry production. Eagle, 2021. 249 p.
4. Buyarov A.V., Buyarov V.S. Industrial Poultry Industry of Russia: State and Priority Areas of Development. Agrarian journal of the upper Volga region. 2017; 2: 82-91.
5. Poghosyan D.G. Intensive methods of feeding young ducks. Penza, 2021. 147 p.
6. Topuria L.Yu., Topuria G.M. Intensification of duck meat production. Orenburg, 2016. 132 p.
7. Sukhanova S.F., Azaubaeva G.S. Productive and biological features of geese. Kurgan, 2009. 297 p.
8. Svyatkovsky A.A. Effective solution in poultry farming. Effective animal husbandry. 2018; 3: 52-53.
9. Novotorov E.N., Prisyushnaya L.M. Prevention and mitigation of stress in poultry farming. Our agriculture. 2020; 238(14): 31-36.
10. Feoktistova N.V., Mardanova A.M. Probiotics based on bacteria of the genus Baccillus in poultry farming. Uchenye Zapiski Kazanskogo Universiteta. Seriya Estestvennye Nauki. 2017; 159(1): 85-107.
11. Logvinov O.L. Probiotic feed additive "Olin" as an alternative to streptogramines in the diets of broiler chickens. Veterinary Journal of Belarus. 2019; 11(2): 68-72.
12. Zlepkin V.A., Salomatin V.V. Effect of biologically active preparations on meat productivity of broiler chickens. Zootechniya. 2022; 6: 26-28.
13. Mikolajchik I.N., Morozova L.A. Innovative approaches to the use of feed and additives in animal husbandry. Kurgan, 2020. 190 p.
14. Alaretz M. Probiotic agents and infections diseases a modern perspective and traditional therapy. Clinical Infectious Diseases. 2014; 32(1): 1567-1578.
15. Apajalahti I. Characteristies of the gastrointestinal microbial communites with special reference to the chicntn. World's Poultry Science Journal. 2004; 60(2): 223-232.
16. Buryakov N.P., Kozlovsky A.Yu. Comparative efficiency of using various probiotics in feeding broiler chickens. Poultry farming. 2022; 2: 48.
17. Neustroev MP, Stepanova AM. Development and use of a preparation from Baccillussubtilis bacterial strains in poultry farming. Novosibirsk: Sib. Acad. book, 2019. P. 84.
18. Singarieva N.Sh., L.Yu., Topuriya G.M. Growth and development of ducklings under the action of a preparation of humic nature. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2019; 76(2): 245-247.
19. Sukhanova S.F., Azaubaeva G.S. Hematology of agricultural poultry. Kurgan: Kurgan GSHA named after T.S. Maltseva, 2017. 404 p.
20. Sadovnikov N.V. General and special methods for studying the blood of birds of industrial crosses. Yekaterinburg, 2009. 86 p.
Наталья Шукатовна Сингариева, кандидат ветеринарных наук, доцент, NatSingariewa@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-5445-6132
Лариса Юрьевна Топурия, доктор биологических наук, профессор, topurialarisa@yamdez.ru, https://orcid.org/0000-0002-7881-2602
Гоча Мирианович Топурия, доктор биологических наук, профессор, golaso@rambler.ru, https://orcid.org/0000-0002-9485-5282
Natalia Sh. Singarieva, Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor, NatSingariewa@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-5445-6132
Larisa Yu. Topuria, Doctor of Biology, Professor, topurialarisa@yamdez.ru, https://orcid.org/0000-0002-7881-2602 Gocha M. Topuria, Doctor of Biology, Professor, golaso@rambler.ru, https://orcid.org/0000-0002-9485-5282
Вклад авторов: все авторы сделали эквивалентный вклад в подготовку публикации. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Contribution of the authors: the authors contributed equally to this article. The authors declare no conflicts of interests. Статья поступила в редакцию 22.11.2022; одобрена после рецензирования 15.12.2022; принята к публикации 10.01.2023.
The article was submitted 22.11.2022; approved after reviewing 15.12.2022; accepted for publication 10.01.2023. -♦-
