CC BY
61
Физико-химическая биология Вестник Нижегородского '/ниверситета им. Н.И. Лобачевского, 2010, № 2 (2), с. 544-549
УДК 581.1
ПРООКСИДАНТНО - АНТИОКСИДАНТНЫЙ СТАТУС ХЛОРОПЛАСТОВ ГОРОХА ПРИ ДЕЙСТВИИ СТРЕССИРУЮЩИХ АБИОТИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ СРЕДЫ:
1. ПРОДУКЦИЯ АКТИВНЫХ ФОРМ КИСЛОРОДА И ЛИПОПЕРОКСИДАЦИЯ
© 2010 г. Щ.Н. Курганова, И.В. Балалаева, А.П. Веселов, Ю.В. Синицына,
ЕА. Васильева, М.И. Цыганова
Нижегородский госуниверситет им. Н.И. Лобачевского kfr@bio.unn.ru
Поступила в редакцию 02.10.2009
Проведен анализ продукции активных форм кислорода, скорости перекисного окисления липидов пластид при действии гипертермии, экзогенного Н2О2, гербицида параквата. Окислительный стресс -универсальная реакция хлоропластов на исследованные стрессоры, зависящая, однако, от природы и интенсивности воздействия. Вероятно, увеличение скорости перекисного окисления липидов обусловлено не только ростом продукции активных форм кислорода, но и соотношением 02- /Н2О2.
Ключевые слива: Pisum sativum L., хлоропласты, активные формы кислорода, перекисное окисление липидов.
Введение
Взаимодействие растений с разнообразными факторами окружающей среды представляет собой одну из наиболее актуальных проблем современной физиологии растений. В настоящее время не вызывает сомнений существование значительной качественной аналогии ответных реакций растений на различные экстремальные воздействия [1-4].
Однако вопрос о механизмах, лежащих в основе универсальности фитостресса, остается открытым. В качестве одного из универсальных звеньев стрессового ответа может рассматриваться окислительный стресс, развитие которого к настоящему времени показано при действии на растение засухи, засоления, гипо- и гипертермии, вирусной и бактериальной инфекции [5]. В фототрофных тканях окислительный стресс, характеризующийся усилением продукции активных форм кислорода (АФК), в первую очередь связан с функционированием фотосин-тетической электрон-транспортной цепи хлоро-пластов [6-8]. Увеличение продукции АФК приводит к активации окислительных процессов, в том числе перекисного окисления липидов (ПОЛ), протекающего в норме на определенном стационарном уровне. Интенсификация ПОЛ способствует изменению свойств липидного матрикса мембран и модификации клеточного метаболизма, что обусловливает важность поддержания определенной скорости данного процесса в экстремальных условиях [6, 9, 10].
С целью выявления общих и специфических черт развития окислительного стресса в растительной клетке исследовано воздействие стрессоров, заведомо различающихся по механизму влияния на продукцию АФК (гипертермии, экзогенного пероксида водорода, параквата).
Материалы и методы
Объектом исследования служила суспензия хлоропластов, изолированных по методу D.L. Amon et al. [11] из 14-дневных растений гороха (Pisum sativum L.) сорта Труженик, выращенных на фильтровальной бумаге, смачиваемой водопроводной водой, в условиях климатической камеры при 22-23°С и 16-часовом световом дне. Хлоропласты выделяли из листьев 2-3 ярусов, считая сверху.
Для создания теплового шока суспензию хлоропластов помещали в термостат при 42°С. Пероксид водорода и паракват (PQ) вносили в концентрациях 10 мМ и 100, 500 мкМ соответственно. Эксперименты проводили при стандартных условиях освещения. Контролем служила не подвергавшаяся воздействиям суспензия хлоропластов. Время экспозиции во всех случаях составляло от 5 до 60 мин. Анализы проводили сразу по окончании экспозиции, минимальный диапазон времени, необходимый для проведения анализа - 5 мин.
Скорость образования O2 оценивали по реакции накопления продукта его взаимодействия с адреналином - адренохрома [12], суммарное
содержание пероксидов - по реакции с солью Мора и роданистым аммонием после предварительного осаждения в суспензии белков и пигментов [13]. Развитие ПОЛ тестировали по уровню начальных (диеновые конъюгаты) и конечных (малоновый диальдегид, МДА) продуктов спектрофотометрически с учетом молярных коэффициентов экстинкции [14]. Содержание белка оценивали по методу Лоури [15].
В работе использовали Трис (трис-
(оксиметил)-аминометан) фирмы «1С# Biomedi-саЬ» (США), остальные реактивы - отечественного производства марок «х. ч.» и «ч. д. а.».
На графиках представлены средние арифметические трех-шести независимых опытов, каждый из которых проведен в трехкратной биологической повторности, и их стандартные ошибки. Одна биологическая повторность представляла собой суспензию хлоропластов, полученную из объединенной навески листьев 20 растений. Значимость различий оценивали по критерию Стьюдента с поправкой Бонферрони для множественных сравнений с контролем (уровень значимостир < 0.05) [16].
Результаты и их обсуждение
Наиболее существенным абиотическим фактором, влияющим на растения в природных условиях, является температура окружающей среды. Как следует из рис. 1, повышение температуры до 42°С вызывало увеличение скорости
окисления адреналина (обусловливаемое, в первую очередь, ростом продукции O2 ) в первые
15 мин прогрева примерно в 1.4 раза по сравнению с контролем.
Основная масса O2 в хлоропластах при гипертермии продуцируется в ходе реакции Ме-лера — при фотовосстановлении молекулярного кислорода компонентами акцепторной стороны фотосистемы I, при этом О2 конкурирует с окисленным НАДФ+ [17]. Кроме этого, источниками АФК могут являться водоокисляющий комплекс ФС II и пул пластохинонов [18]. Образующийся О2-утилизируется ферментами так называемого водно-водного цикла («water-water cycle») — мембраносвязанной супероксиддис-мутазой, преобразующей его в Н2О2, восстанавливающийся затем при работе аскорбатперок-сидазы. Реактивация окисляющегося аскорбата происходит за счет монодегидро- и дегидро-аскорбатредуктазы [7, 19].
Нарушение баланса про- и антиоксидантных реакций цикла становится причиной увеличения в пластидах концентрации пероксидов через 15-30 мин гипертермии (рис. 2а). Несмотря на относительно слабые окислительные свойства, опасность данных АФК состоит в их способности генерировать ОН в реакциях Фентона и Хабера - Вайса с участием ионов металлов переменной валентности и О2- [9]. Следствием усиления продукции АФК является развитие окислительной модификации макромолекул,
а сз я ы s п
&
П
оз сз
* S S о X ^
U X
п о
о
а*
о
«
о
2,0
1,8
1,6
1,4
1,2
1,0
0,8
0,6
0,4
0,2
0,0
контроль гипертермия 100 мкМ PQ 500 мкМ PQ
Рис. 1. Скорость продукции О2' (окисления адреналина) хлоропластами гороха при действии различных факторов. (Реакция с адреналином запускалась на 15 минут в суспензии в указанных условиях)
Рис. 2. Содержание пероксидов (а) и накопление продуктов перекисного окисления липидов (б) в хлоропластах при гипертермии
Рис. 3. Динамика содержания Н2О2 (а) и накопление продуктов перекисного окисления липидов (б) в хлоропластах при обработке экзогенным 10 мМ пероксидом водорода
маркером которой наиболее часто служит скорость перекисного окисления липидов. В случае действия повышенной температуры происходило накопление продуктов ПОЛ - диеновых конъюгатов, а через 15-30 мин после начала воздействия - МДА (рис. 2б). Повышение концентрации МДА сохранялось до конца исследуемого периода (60 мин).
Направленное увеличение содержания в пластидах Н2О2 осуществляли путем его введения в конечной концентрации 10 мМ. Основанием для выбора концентрации послужили результаты экспериментов на аналогичной модельной системе [20], согласно которым внесение в суспензию 10 мМ Н2О2, в отличие от бо-
лее низких концентраций, приводило к изменению работы фотосинтетического аппарата пластид, но не вызывало его деструкции. Однако уже через 5 мин после внесения содержание Н2О2 в суспензии составляло не более 45 мкМ, т.е. всего в три раза превосходило исходную эндогенную концентрацию (15 мкМ) (рис. 3а).
Между продукцией АФК и развитием окислительных процессов в клетке или её отдельных компартментах, несомненно, имеется определенная функциональная связь. Вместе с тем, само по себе увеличение концентрации АФК, как это показано при использовании экзогенного пероксида водорода (рис. 3 а), может не приводить к накоплению продуктов ПОЛ (рис. 3б).
3,0
^ 2,5
5
о ё 2,0
щ ^
Хі
ЕҐ
% 1.0
0,5
0,0
X. П100 МкМ РС> □ 500 мкМ Ру
10
1;
30 60
Время, мш
:о зо 40 Время, МІІН
б
50 60
Рис. 4. Содержание пероксидов (а) и диеновых конъюгатов (б) в хлоропластах при обработке паракватом (PQ)
0.20
0.15
0.10
0.05
10
1:
30
60
Время, лпш 0100 мкМ Р(^> □ 500 мкМ Р(^>
Рис. 5. Содержание малонового диальдегида в хлоропластах при обработке паракватом (PQ)
а
Сравнительно «легкая» реакция хлоропла-стов на 10 мМ Н2О2 определяется наличием в пластидах значительных количеств низкомолекулярных антиоксидантов [21] и согласуется с имеющимися в литературе данными о том, что в стрессовых условиях концентрация эндогенного пероксида, составляющая в норме 1-50 мкМ, способна возрастать до 6-8 мМ [8]. Вышесказанное позволяет высказать предположение об участии Н2О2 в индукции защитных реакций пластид при действии различных по своей природе экстремальных факторов.
Использование двух концентраций фотоди-намического гербицида PQ позволило показать, что ответная реакция хлоропластов может качественно различаться в зависимости не только от типа, но и от интенсивности неблагоприятного воздействия. Введение в суспензию 100 мкМ PQ приводило к некоторому усилению продукции О2 и увеличению содержания пероксидов
до 200% от исходного уровня уже через 5 мин экспозиции и одновременно к резкому росту уровня диеновых конъюгатов (рис. 1, 4).
Концентрация пероксидов существенно снижалась через 30-60 мин, диеновых конъюгатов - через 10 мин. Т акая динамика пероксидов и продуктов ПОЛ, характеризующаяся быстрым отклонением от исходного уровня и последующим не менее быстрым возвращением к нему, по мнению В.А. Барабоя [8], отражает стадии «тревоги» и «адаптации» неспецифического адаптационного синдрома. При этом пиковые уровни пероксидов и диеновых конъюгатов способны играть роль сигнала для активации различных защитных механизмов.
Увеличение концентрации PQ до 500 мкМ приводило к наиболее значительному росту
продукции О2 (рис. 1). Согласно теоретической модели фитостресса как системы возвратного триггера на основе индуктивных механизмов защиты (при участии генома клетки) [22], увеличение интенсивности действующего стрессора способно изменять амплитуду ответа, но не скорость его развития. В то же время в наших экспериментах при большей концентрации гербицида резкого увеличения конъюгации и продукции пероксидов не отмечено (рис. 4). Ответ хлоропластов на обработку паракватом, по-видимому, реализуется за счет иных механизмов активации антиоксидантной системы, чем в целостной клетке, где возможна индукция экспрессии генов соответствующих защитных ферментов. Кроме того, аналогично ситуации, наблюдаемой при введении экзогенного Н2О2,
усиленное образование О2 не сопровождалось
ростом уровней пероксидов и диеновых конъюгатов. При этом содержание МДА повышалось (до 120-140% от исходного уровня) независимо от концентрации параквата (рис. 5), что свидетельствовало о значительном деструктивном эффекте PQ-индуцированного окислительного стресса в хлоропластах.
Вероятно, увеличение скорости ПОЛ при экстремальных воздействиях обусловлено не только гиперпродукцией АФК, но и соотношением О2 / Н2О2. Повышение продукции О2
без изменения содержания Н2О2 (при обработке 500 мкМ PQ), а также внесение экзогенного пероксида водорода в концентрации 10 мМ (т.е. без предварительного увеличения продукции
О 2 ) не вызывало увеличения уровня диеновых
конъюгатов в составе жирных кислот мембранных липидов. Можно предположить, что в развитии радикальных процессов, в частности в индукции накопления диеновых конъюгатов, важно совместное участие АФК.
В отличие от начальных продуктов ПОЛ, накопление MAA происходило практически во всех вариантах опытов. При этом минимальный его уровень отмечался при обработке пероксидом водорода, а максимальный - при гипертермии и введении PQ в суспензию хлоропластов.
Несмотря на высокую универсальность, для стресс-ответа растений характерны и определенные индивидуальные реакции на тот или иной стрессор, зависящие от природы и интенсивности воздействия. Так, окислительный стресс развивался при влиянии всех исследованных в настоящей работе абиотических факторов (рис. 2, З, 4б, 5). В то же время, природа стимула и его интенсивность играли определяющую роль в активации накопления тех или иных продуктов окисления липидов мембран. Лишь одновременное увеличение концентрации супероксидного анион-радикала и пероксида водорода (гипертермия, паракват100 мкМ) сопровождалось накоплением в пластидах начальных продуктов липопероксидации (рис. 2, 4б). При этом повышение содержания MflA можно рассматривать как неспецифическое звено окислительного стресса.
Список литературы
1. Пахомова В.Н. // Цитология. 1995. Т. З7. № 1/2. С. 66-91.
2. Шакирова Ф.М. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и ее регуляция. Уфа.: Гилем, 2001. 161 с.
3. Alexieva V., Ivanov S., Sergiev I., Karanov E. // Bulg. J. Plant Physiol. 200З. Special issue. P. 1-17.
4. Мерзляк М.Н. // Итоги науки и техники. Физиология растений. ВИНИТИ, 1989. Т. 6. 168 с.
5. Noctor G., Foyer C.H. // Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1998. V. 49. P. 249-279.
6. Polle A. // Plant Physiol. 2001. V. 126. P. 445462.
7. Осипов A.fr, Aзизова ОА., Владимиров ЮА. // Усп. биол. хим. 1990. Т. З1. С. 1180-1208.
8. Барабой ВА. // Усп. совр. биол. 1991. Т. 111. № 6. С. 92З-9З2.
9. Clarke S.F., Guy P.L., Burritt D.J., Jameson P.E. // Physiol. Plant. 2002. V. 114. P. 157-164.
10. Iturbe-Ormaetxe I., Escuredo P.R., Arrese-Igor C., Becana M. // Plant Physiol. 1998. V. 116. P. 17З—181.
11. Arnon D.L., Allen M.B., Whatley L.B. // Bio-chim. Biophys. Acta. 1956. V. 20. № 2. P. 449-455.
12. Часов A^., Гордон Л.Х., Колесников О.П., Минибаева Ф.В. // Цитология. 2002. Т. 44. № 7. С. 691-696.
13. Романова ЛА., Стальная И.Д. Современные методы в биохимии. М.: Медицина, 1977. С. 64-66.
14. Курганова Л.Н., Веселов A.^, Гончарова ТА., Синицына Ю.В. // Физиология растений. 1997. Т. 44. № 5. С. 725-7З0.
15. Lowry O.N., Rosenbrough N.J., Tarr A.L., Randall R.J. // J. Biol. Chem. 1951. V. 19З. № 1. P. 265-275.
16. Гланц С. Медико-биологическая статистика. М.: Практика, 1998. 459 с.
17. Синицына Ю.В. Фотохимическая активность и перекисный гомеостаз в хлоропластах растений при гипертермическом воздействии: Дис. ... канд. биол. наук. Н. Новгород: ННГУ им. Н.И. Лобачевского, 2002. 157 с.
18. Badger M.R., von Caemmerer S., Ruuska S., Nakano H. // Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. 2000. V. З55. P. 14З4-1446.
19. Застрижная О.М., Хоробрых А.А., Христин М.С., Климов В.В. // Биохимия. 1997. Т. 62. С. 419-423.
20. Asada K. // Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1999. V. 50. P. 601-639.
21. Иванов Б.И. // Биохимия. 1998. Т. 63. С. 165170.
22. Веселов А.П. // Физиология растений. 2001. Т. 48. № 1. С. 124-131.
PROOXIDANT-ANTIOXIDANT STATE OF PEA CHLOROPLASTS UNDER THE INFLUENCE OF ENVIROMENTAL ABIOTIC STRESSORS.
1. PRODUCTION OF REACTIVE OXYGEN SPECIES AND LIPID PEROXIDATION
L.N. Kurganova, I. V. Balalaeva, A.P. Veselov, Yu. V. Sinitsina, E.A. Vasil’eva,
M.I. Tsiganova
The analysis of production of reactive oxygen species (ROS) and rate of lipid peroxidation in chloroplasts under the influence of high temperature, exogenous hydrogen peroxide and the herbicide Paraquat have been performed. Oxidative stress was shown to be the universal reaction of chloroplasts on investigated stressors. However, the features of the responce were in dependence on the nature and intensity of the influence. It has been suggested that the increase in the lipid peroxidation rate under extreme effects is determined not only by the rise of ROS production but also by the ratio 02- / H202.
Keywords: Pisum sativum L., chloroplasts, reactive oxygen species, lipid peroxidation.
550 [ЛН. Курганова, И.В. Балалаева, А.П. Веселов, Ю.В. Синицына, Е.А. Васильева, М.И. Цыганова
