CC BY
8
По нашему мнению, при окислении иодида в иодат в щелочной среде на холоду результаты являются более правильными, а при окислении иодида в иодат в кислой ■среде при нагревании несколько занижены. По всей вероятности, некоторая часть иодида окисляется в кислой среде до свободного иода, который улетучивается при кипячении.
Мы изучали также влияние концентрации кислоты на точность определения иода ■в иодированной соли (95 анализов).
Опыты, проведенные в нейтральной среде (pH = 7) без добавления кислоты, дали результаты с ошибкой —1,6%. Такие же примерно результаты были получены при добавлении небольшого количества от 0,05 до 1 мл 1 н. соляной кислоты (pH = 2—3,3).
При добавлении большего количества кислоты ошибка заметно возрастает. Так, при прибавлении 2 мл 1 н. соляной кислоты ошибка равна — 4,3%, а при прибавлении 4 мл достигает 50,72%. Следовательно, точные результаты можно получить в нейтральной и слабокислой среде. При избытке кислоты получаются заниженные результаты.
Длительность кипячения раствора также влияет на определение, так как повышается кислотность раствора. При кипячении раствора в течение 10 минут получаются •правильные результаты (ошибка — 0,4%), а при кипячении 30 минут ошибка достигает 74,52%.
На основании всех проделанных исследований мы предлагаем следующий метод определения иодида: 100 г средней пробы иодированной соли растворить в 500 мл де-стиллированной воды и отфильтровать; 100 МЛ полученного раствора перенести в коническую колбу емкостью 250 мл с притертой пробкой, прибавить туда 4 мл 0,1 н. раствора щелочи (NaOH или КОН) и 1 мл насыщенной бромной воды, после чего тщательно перемешать/ затем прибавить 1 мл 1 н. раствора соляной кислоты, снова перемешать, прибавив 5—10 капель 5% раствора фенола, и добавить 1 мл фосфорной кислоты (удельный вес 1,6—1,7) для связывания трехвалентного железа.
После эюго прибавить 4 мл 5% раствора иодистого калия, быстро закрыть притертой пробкой и поставить з темное место на 3 минуты и, наконец, оттитровать t),005 н. раствором тиосульфата натрия в присутствии крахмала. Количество иодистого калия (в мг на 1 кг соли) рассчитать по следующей формуле:
а ■ 0,1 058 - 1 ООО
где п — количество израсходованного 0,005 н. раствора тиосульфата натрия; 1,3 —
коэфициент пересчета количества иода в иодистый калий. 1мл 0,005 н. раствора тиосульфата соответствует 0,1058 мг иода.
В. Г. Вейсман, Э. Я. Сумцова, В. Н. Пентковская
Паровой способ дезинфекции вещей, зараженных
дерматофитами
Из Московской городской дезинфекционной станции
Камерное обеззараживание вещей, зараженных дерматофитами, производится по временной инструкции, разработанной Центральным научно-исследовательским дезинфекционным институтом совместно с центральным кожно-венерологическим институтом. По этой инструкции, при обработке вещей в паровой камере при температуре 110—112° и загрузке 40—50 кг вещей на 1 м3 камеры для эффективной дезинфекции необходима экспозиция Р/г часа.
Такая длительная экспозиция ограничивает пропускную способность камеры и увеличивает амортизацию вещей. Как известно, даже однократная обработка в паровой камере снижает качество вещей на 10—30%. Поэтому появилась необходимость пересмотреть инструктивное указание о паровом методе обеззараживания.
Наши опыты по разработке методики дезинфекции паровым методом вещей, зараженных дерматофитами, с укороченной экспозицией проводились в дезинфекционных камерах системы Крупина и Рубнера, работающих с избыточным давлением в 0,5 атмосферы.
Работа проводилась по следующей методике. В паровую дезинфекционную камеру равномерно загружали вещи из расчета 40—50 кг на 1 м3 камеры. В 10 опытах в камеру загружали вещи в мешках и матрацы без мешков. В остальных 13 опытах загружали только матрацы. Между вещами закладывали тест-объекты и максимальные термометры по общепринятой схеме Московской городской дезинфекционной станции, т. е. в 15 точках, в трех плоскостях. Всего тест-объектов и термометров закладывали 15, 16-й тест был контрольным.
Дезинфекцию вещей проводили насыщенным, текучим паром под избыточным давлением 0,5 атмосферы и при температуре 110—-112° (по наружным термометрам).
Тест-объектами служили волосы и чешуйки с пораженных участков кожи и волосистой части головы больных микроспорией и трихофитией. Волосы и чешуйки складывали в бумажные пакеты. Бумажный пакет помещали в хлопчатобумажный мешочек вместе с максимальным термометром, и в таком виде тесты закладывали в камеру.
Патологический материал получали в лаборатории микологического диспансера Москвы. После обработки тесты возвращали в ту же лабораторию для посева. Посевы делали на жидкую и твердую среду Сабуро, после чего их выдерживали в термостате при температуре 28—30° в течение 2'/г—З'/а месяцев.
При проведении опытов мы пользовались патогенным материалом с возбудителем» человеческой трихофитии — фиолетовым и кратеровидным трихофитоном (Trichophyton violaceum, Trichophyton crateriforme) и животного происхождения — гипсовым трихофитоном (Trichophyton gypseum), а также патогенным материалом с возбудителем человеческой микроспории — ржавым микроспорумом (Microsporon ferrugineum) и кошачьим— пушистым микроспорумом (Microsporon lanosum).
Присутствие грибка в использованном материале было предварительно проверено-микроскопически и при помощи посевов.
Всего проведено 15 опытов с пушистым микроспорумом, ржавым—2, фиолетовым трихофитоном — 5, гипсовым — 1 и кратеровидным — 3. В 3 опытах тесты были смешанные, т. е. среди 15 заложенных пакетов часть содержала один вид грибка, часть — другой вид грибка.
К воздействиям внешней среды грибки крайне устойчивы.
По литературным данным (Рейф, Щербатых, Малышев) патогенный материал, хранившийся в течение нескольких лет (от 1 до 10 лет), давал при посеве рост. Зараженные этим материалом животные давали характерную клиническую картину заболевания.
Об устойчивости грибков к повышенной температуре имеются разноречивые данные. По указаниям Кашкина, Степанищевой и Юшкова, грибки в патогенном материале погибают при кратковременном кипячении (3 минуты, по Степанищевой; 1—2 минуты, по Юшкову). При 80° они погибают через 5—10 минут (Щербатых), а при 75°, по данным Юшкова, через 10 минут.
В литературе имеются указания (Юшков) о том, что дерматофиты по сравнению с бактериями гораздо легче гибнут от воздействия физико-химических факторов.
Всего нами проведено 23 опыта, из них 18 с экспозицией 30 минут, 4—с экспозицией 20 минут и 1 — с экспозицией 10 минут. В одном из 4 опытов с 20-минутной экспозицией в камеру одновременно с микроспорумом были заложены тесты золотистого стафилококка. Термоустойчивость золотистого стафилококка при температуре 60"— 15 минут.
Таблица 1
Название патогенного Сиотема X S й = 2 X = Е 5 о га Время пребывания тестов в термостате (в днях) Дезинфекционный эффект (в процентах)
материала камеры кар ч т >> ° « 1 d -a х С i» при первом посеве при пересеве через год при пер вом посеве при персе еве
Микроспорум пушистый Рубнера 30 41-43 82-83 100 100
То же Крупина 30 30 98 100 100
Трихофитон фиолетовый и кратеровидный Рубнера 30 34-41 86-99 100 100
Микроспорум пушистый » 20 38 105 100 100
То же я 10 31 104 . Л . 100 100
Примечание. Во всех ответах норма загрузки камеры равна 50 кг/м3.
Результаты опытов по дезинфекции паровым способом вещей, зараженных дерма-тофитами, приведены в табл. 1 и 2.
Из табл. 1 видно, что в 7 опытах патогенный материал был посеян дважды. Первый раз посеянный материал находился в термостате в течение 1—\1/2 месяцев..
Через год тот же материал, хранившийся в бумажных пакетах, был повторно посеян и выдерживался в термостате 2'/з—З'/г месяца. Как при первом посеве, так и при втором роста не наблюдалось.
Таблица 2
Название патогенною материала
Система камеры
X л а н
5
К га
О)
о.
- к
X
08 I
2 га
о» аз
СО «с
и
^ 5 о,
2 н 2
Микроспорум пушистый То же
Микроспорум пушистый и ржавый
Микроспорум пушистый (с кошки)
Микроспорум ржавый Трихофитон фиолетовый То же
Трихофитон гипсовый Золотистый стафилококк Трихофитон кратеровидный
Рубнера Крупина Рубнера
Прохорова
Крупина Рубнера Крупина Рубнера
30 30 30
30
30 30 30
го 20 20
58,98,110.115 79-110 114
70
78
70,83 92
79 6
94
Примечание. Норма загрузки на 1 м3 камеры равна 40—50 кг/м3.
Как видно из табл. 2, материал остальных 16 опытов был посеян только один раз и находился в термостате от 2'/г ДО З'/г месяцев (в одном опыте 2 месяца). Эти опыты дали также удовлетворительные результаты. Заложенные в камеру тесты золотистого стафилококка в одном опыте с 20-минутной экспозицией также не дали роста.
Наша работа не дает ответа на вопрос, какова же наименьшая экспозиция для гибели патогенных грибков при обработке в паровой камере. Необходимость остановиться на экспозиции 30 минут обусловлена тем, что обычно в предкамерном загрузочном помещении могут находиться вещи, зараженные другими микробами, для гибели которых, по существующим официальным инстоукциям, необходима экспозиция 30—40 минут. Поэтому дальнейшее снижение экспозиции при обработке вещей, зараженных дерматофитами, привело бы к необходимости изолировать эти вещи при хранении.
Кроме того, экспозиция меньше 30 минут не позволила бы при отсутствии достаточного количества вещей, зараженных дерматофитами, догружать камеру другими вещами. Однако 30-минутная экспозиция при обработке вещей, зараженных дерматофитами, возможно, не является наименьшей, о чем говорят наши опыты с 20- и 10-минутной экспозицией.
Выводы
1. При паровом методе дезинфекции вещей, зараженных дерматофитами — возбудителями микроспории и трихофитии, полуторачасовая экспозиция является явно завышенной.
2. 30-минутная экспозиция при паровом методе дезинфекции вещей, зараженных возбудителями микроспории и трихофитии, при температуре 110—112° по наружным термометрам, избыточном давлении 0,5 атмосферы и загрузке 40—50 кг вещей на 1 м' камеры дает хороший дезинфекционный эффект.
-к -к -к
