CC BY
18
38
Вестник хирургии Казахстана №2, 2010
Озонированный раствор как средство обеззараживания плодоносных элементов эхинококка
Максут уулу Эрлан
Кыргызская государсвенная медицинская академия им. И.К.Ахунбаева, Городская клиническая больница №1, Бишкек, Кыргызская Республика
Резюме: Представлены результаты обеззараживания плодоносных элементов эхинококкоза озонированными растворами и озонокислородной смесью. Концентрация озона 8-10мкг/мл с экспозицией 5 минут достаточна для 100% гибели сколексов.
Ключевые слова: печень, эхинококкоз, обеззараживание, озон.
Эхинококкоз на сегодняшний день является тяжелым паразитарным заболеванием и продолжает оставаться серьезной медицинской и социальной проблемой. Это определяется тем, что среди паразитарных болезней нет другого поражающего организм так тяжело и в таких разнообразных формах как эхинококкоз[7].
Заболевание эхинококкозом и его рецидивы не имеют тенденции к снижению, более того, в последнее время отмечается распространение эхинококкоза не только среди людей, занимающихся животноводчеством, но и среди городского населения [9].
В хирургии эхинококкоза очень важным этапом операции является полноценное и надежное обеззараживание плодоносных элементов паразита, что обеспечивает профилактику рецидива болезни [3]. В этом отношении в литературе представлено множество методов: это использование горячих растворов, гипертонических растворов поваренной соли, хлористого кальция, глицерина, йода, формалина, физические факторы (лазер, ультразвук и др.). Но по мере накопления материала было установлено, что одни из них малоэффективны, а другие токсичны для организма.
Одним из дискутабельных вопросов в хирургии эхино-коккоза является роль резидуальной фиброзной капсулы кисты в развитии рецидивов и гнойных осложнений [1,6].
Фиброзная капсула эхинококковой кисты представляет собой многокомпонентную тканевую структуру, состоящую из нескольких, переходящих друг на друга слоев: Слой некроза, грануляционный и фиброзно-сосудистый. Выраженность каждого из них значительно варьирует при различных состояниях и локализации кисты. Фиброзно-сосудистый слой при неосложненной кисте имеет толщину до 1мм, а при активации баръерно-защитной функции в перикистоз-ной ткани он может увеличиваться до 2мм и более [5].
Как отмечено в ряде публикаций, с течением времени фиброзная капсула может пропитываться зародышевыми элементами паразита [2,4,8] и микробными телами [6],что обуславливает ряд проблем послеоперационного периода.
Городская клиническая больница №1 располагает универсальным аппаратом «CHANS» СХ-01 для получения озона, озонокислородной смеси. Озонированные растворы используются в профилактике и лечении гнойно-воспалительных заболеваний. Получен хороший результат. Кроме того, в литературе имеются сообщения о том, что озон обладает многокомпонентным действием, в частности, бактерицидным и мы в своей работе пытались исследовать его антипаразитарное действие.
Ozonized solution as remedy for disinfecting infectious of elements at ehinococc. Maksut uulu Erlan
Sammary: In clause results of disinfecting infections elements ehinococc by ozonized solutions a mix are submitted. Conce-tration of ozone of 8-10mkg/ml with an exposition 5 minutes is sufficient for 100% of destruction scolex. Key words: a liver, ehinococc, disinfecting, ozone.
Цель исследования
- оценить антипаразитарное действие озона на плодоносные элементы эхинококка.
Материалы и методы исследования
Под наблюдением было 30 больных прооперированные с неосложненным эхинококкозом печени различной локализации. Мужчин было - 13, женщин - 17, Возраст колебался от 22 до 60 лет.
В обследовании больных, помимо общеклинических исследований (общий анализ крови и мочи, ЭКГ рентгенография грудной клетки), использованы и специальные методы - это УЗИ, КТ, реакция Казони.
Для определения влияния озона на плодоносные элементы паразита
мы выполнили исследование содержимого кист сначала in vitro: В пробирки набирали эхинококковую жидкость 3 мл и добавляли 3 мл озонированного раствора (NaCl 0,9%) с различной концентрацией и исследовали через 1,3,5,8,10 минут. Морфологические изменения сколексов до и после обработки испытуемыми растворами осуществляли микроскопией для определения жизнеспособности по наличию подвижности сколексов и по их окрашиванию 0,1% раствором эозина.
Далее мы продолжили исследование в период обработки кист в момент операции. После пункции кисты с учетом принципов апаразитарности проводили барбатирование содержимого кисты озонокислородной смесью, при этом каждые 3-5 минут брали содержимое на определение жизнеспособности сколексов. После эвакуации жидкости электроотсосом и удаления хитиновой оболочки производили смыв стенок остаточной полости, делали мазки с окрашиванием эозином. Затем дополнительно полость обрабатывали озонированным раствором с концентрацией озона 8-10мкг/мл. После эвакуации озонированного раствора, заново делали мазок и исследовали жизнеспособность сколексов путем микроскопии. Также делали смывы раны.
Результаты и их обсуждения
При исследовании на жизнеспособность сколексов in vitro, установлено, что концентрация озона в 4-5мкг/мл достаточна с экспозицией 5 минут для 100% их гибели. (Табл.1)
При исследовании содержимого кист после 5 минутного барбатирования озонокислородной смесью установлена 100% гибель сколексов при концентрации озона 4-5 мкг/мл. Что касается более высокой концентрации озона (6-8мкг/
Журнал Национального научного центра хирургии им. А.Н. Сызганова
39
мл, 8-10мкг/мл), то на 3 минуте все плодоносные элементы погибали. А при 5 минутной экспозиции появляется возможность пропитывания раствора в фиброзную капсулу и тем самым пагубно влиять на зародышевые элементы эхинококка и микробные тела, что и предупреждает развитие рецидива заболевания.
Результаты исследования действия озонированных растворов на зародышевые элементы эхинококка (in vitro).
Концентр. озона Экспозиция в минутах, % погибших протоско-лексов
1 мин. 3мин. 5мин. 8мин. 10мин.
3мкг/мл 35% 44% 70% 100% 100%
4-5мкг/мл 55% 90% 100% 100% 100%
6-8мкг/мл 90% 100% 100% 100% 100%
8-10мкг/мл 90% 100% 100% 100% 100%
Больные оперированные с использованием вышеуказанной методики наблюдались в течение одного года. При контрольном обследовании мы не обнаружили случаев рецидива. Наблюдение за ними продолжено.
Литература
1.Агаев Р.М. Преимущества лазерного облучения остаточной полости после эхинококкэктомии печени //Анналы хирургической гепатологии. - 2002. -Т. 7, №1. -С 301. Алиев М.А., Сейсембаев М.А., Байбеков И.М.,и др. Эхинококкоз печени и его хирургическое лечение //Хирургия.- 1999.-№3. -С. 15-17.
Вафин А.З. Апаразитарность хирургических вмешательств и антипаразитарность при эхинококкозе //Хирургия. - 1993. -№4. - С. 70-74.
Дедерер Ю.М., Крылова Н.П. Хирургическое лечение эхинокок-коза печени//Хирургия. - 1977. -№9. -С.23-28. Исламбеков Э.С., БайбековИ.М. Ультраструктура капсулы паразита и прилегающей к ней ткани при эхинококкозе легких //Мед. Паразитология и паразитарные болезни. -1982. Т. 60, №5. -С.27-30.
Кахаров М.А., Кубышкин В.А., Вишневский В.А., и др. Обоснование удаления фиброзной капсулы при эхинококкэктомии из печени //Хирургия. - 2003. -№1. -С. 31-35. Нишанов Х. Т. Совершенствование методов диагностики и хирургического лечения эхинококкоза печени. Дис. д-ра мед. наук, 1992.
Шульга Л.Ф., Вдовин Р.П., Ленартович А.К. Наблюдение эхинококкоза печени у ребенка //Клин. хирургия. - 1990. -№6. - С. 56. Яроцкий Л. С. Эпидемиолого - эпизоотологические особенности эхинококкозов и методологические основы эпидемиологического надзора за ними //Эхинококкозы. - М., 1990. - С. 5-15.
