Научная статья на тему 'Методы санации остаточной полости при эхинококкэктомии'

Методы санации остаточной полости при эхинококкэктомии Текст научной статьи по специальности «Клиническая медицина»

CC BY
1705
144
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
эхинококкэктомия / остаточная полость / обеззараживание / интраоперационная обработка / методы санации / echinococcectomy / residual cavity / disinfection / intraoperative treatment / rehabilitation methods

Аннотация научной статьи по клинической медицине, автор научной работы — Д. К. Калиева

Для интраоперационной обработки гидатидных кист необходимы высокоэффективные методы, губитель-но влияющие на зародышевые элементы эхинококка. В настоящее время существуют различные методы обеззараживания остаточной полости при проведении эхинококкэктомии. Условно данные методы делятся на химические, физические и биологические. В статье представлены современные методы санации остаточной полости при проведении эхинококкэктомии. Описаны механизмы воздействия химических, физических методов обеззараживания на зародышевые элементы эхинококковой кисты. Представлены положительные и отрицательные стороны каждого описанного метода.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по клинической медицине , автор научной работы — Д. К. Калиева

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

METHODS OF SANITATION OF RESIDUAL CAVITY AT ECHONOCOCCECTOMY

For intraoperative treatment of hydatid cysts need highly effective methods of destructive effect on the embry-onic elements of echinococcus. Nowadays there are various methods of decontamination residual cavity at carrying out of echinococcectomy. Conventionally, these methods are divided into chemical, physical and biological. The article pre-sents the modern methods of sanitation residual cavity at carrying out of echinococcectomy. The mechanisms of action of chemical and physical methods of decontamination on the embryonic elements of hydatid cysts have been described. Positive and negative sides of each of the described method were introduced.

Текст научной работы на тему «Методы санации остаточной полости при эхинококкэктомии»

© Д. К. Калиева, 2016

УДК 616.831-002.951/36-089

Д. К. Калиева

МЕТОДЫ САНАЦИИ ОСТАТОЧНОЙ ПОЛОСТИ ПРИ ЭХИНОКОККЭКТОМИИ

Кафедра хирургических болезней №2 и патологической анатомии Карагандинского государственного медицинского университета (Караганда, Казахстан)

Для интраоперационной обработки гидатидных кист необходимы высокоэффективные методы, губительно влияющие на зародышевые элементы эхинококка. В настоящее время существуют различные методы обеззараживания остаточной полости при проведении эхинококкэктомии. Условно данные методы делятся на химические, физические и биологические. В статье представлены современные методы санации остаточной полости при проведении эхинококкэктомии. Описаны механизмы воздействия химических, физических методов обеззараживания на зародышевые элементы эхинококковой кисты. Представлены положительные и отрицательные стороны каждого описанного метода.

Ключевые слова: эхинококкэктомия, остаточная полость, обеззараживание, интраоперационная обработка, методы санации

При гидатидозном эхинококкозе имеются абсолютные показания к хирургическому лечению [12]. Для интраоперационной обработки гидатидных кист необходимы высокоэффективные методы, губительно влияющие на аце-фалоцисты эхинококка как наиболее устойчивое звено паразита и самого важного фактора в возникновении послеоперационных рецидивов заболевания [7, 25]. По данным сотрудников факультетской хирургической клиники им. Н. Н. Бурденко ММА им. И.М. Сеченова, про-тосколексы эхинококка погибают практически в первые минуты воздействия химическими агентами [17, 20]. Наиболее устойчивым зародышевым элементом эхинококка оказались ацефалоцисты, которые прежде хирургами не контролировались. При этом более устойчивыми оказались гигантские ацефалоцисты (до 3 000 мкм). Именно они ответственны за рецидив заболевания после хирургических вмешательств [24]. Общепринятые в хирургии эхино-коккоза гермициды - формалин, 10 -20% гипертонические растворы хлорида натрия -оказались малоэффективными, так как не приводили к гибели ацефалоцист даже при экспозиции 10-15 мин. Увеличение времени экспозиции (в особенности при применении формалина) повышало токсическое действие препарата на организм человека [7].

С конца XIX века были начаты поиски антипаразитарных средств для интраопераци-онного применения [8]. А. А. Бобров использовал 5% раствор карболовой кислоты, Franke - 1% раствор формалина, R. Bourgeon et al. - 5% раствор формалина, И. Г. Скворцов - антибиотики, Г. Д. Дудкевич - 10% раствор формалина, W. Zimmerli, C. Scharma - 10% раствор формалина в смеси с 10% раствором

поваренной соли, W. Bross - сложный раствор, содержащий спирт, формалин, перекись водорода, нитрат серебра, Д. Арнаудов, А. Де-реджан - эфир, P. F. Saidi, Р. Г. Григорянц и соавт. - 5% раствор нитрата серебра, А. Т. Пулатов - 70% этиловый спирт, B. Saade et al. - 0,1% раствор цетремида, С. П. Гайбатов, М. М. Омаров - протеолитические ферменты, J. Djilali - перекись водорода, Б. А. Акматов -горячий (+70 С 0) раствор, Т. Todorov, D. Yurukova, H. Togel, А. А. Эль -Мулля - 30% гипертонический раствор поваренной соли и перекиси водорода, А. А. Мовчун и соавт., Б. С. Турсунов и соавт. - 80-100% глицерин [3, 9, 19, 24, 28, 29, 34, 36]. Наибольшее распространение получил 9% раствор формалина, предложенный С. И. Спасокукоцким [27]. А. А. Бобров для дезинфекции полости кисты и предупреждения рецидивов после вскрытия и удаления ее содержимого предлагал обрабатывать стенки кисты 10% настойкой йода с последующим протиранием марлевыми салфетками.

В настоящее время наиболее часто применяются следующие гермицидные препараты: гипертонический раствор поваренной соли (15-30%), спирт (70 -96%), раствор хлоргекси-дина (0,5 -1%) в спирте, перекись водорода (3,0%). Эти препараты менее токсичны, чем формалин, однако описаны осложнения после использования гипертонического раствора у ребенка с развитием гипернатриемии и летальным исходом [35]. Некоторые авторы предлагают использовать 50 С0 спиртовой раствор празиквантеля (5 мг/мл), «йокса» (1:40), 0,1% раствор хлористого кальция, хлоргекси-дина биглюконат в низких концентрациях (0,4%) [13, 37]. Недостатками большинства

препаратов является необходимость длительной экспозиции в полости кисты и возможное разведение препарата в процессе экспозиции со снижением его эффективной концентрации [30]. Хотя 2 -5% раствор формалина в глицерине остается наиболее популярным противо-паразитарным средством, его применение нередко сопровождается образование инфильтратов, тахикардией, снижением артериального давления, явлениями токсического шока и т. д. Некоторые хирурги используют более концентрированные растворы формалина 15 -40%, в связи с чем отравления больных наблюдаются чаще и описан ряд летальных исходов [5]. Формалин и йод относятся к химическим веществам раздражающего и прижигающего действия, которые могут вызывать повреждение окружающей паразита ткани и тем самым привести к различным послеоперационным осложнениям, а также проявляют токсическое действие на организм в целом [3]. Отмечены тяжелые последствия системной и би-лиарной абсорбции концентрированного раствора сколицидного агента (анафилактический шок, склерозирующий холангит) [22]. По данным Г. Б. Гаджиабакарова (2004) при воздействии 4% раствора формалина в тканях печени возникают дистрофические изменения ге-патоцитов, характерные для гепатита, а также воспалительные изменения вокруг желчевыво-дящих путей. Применение 80% раствора глицерина при нагноении фиброзной капсулы проявляется гепатоксическим и нефротоксиче-ским действием на организм [8]. Ряд авторов применяют 33% раствор перекиси водорода (пергидроль), время экспозиции 7 -10 мин., который обладает выраженным местным прижигающим действием [4]. Результаты сравнительного исследования губительного воздействия гипертонических растворов хлорида натрия и глицерина на зародышевые элементы гидатидного эхинококка показали, что выраженную гермицидную активность проявили 80100% глицерин и 30% гипертонический раствор хлорида натрия, которые вызывали гибель зародышевых элементов на 5 -7 мин экспозиции. Однако внутри формирующихся, не имеющих связи с основной кистой (то есть изолированных) мелких кист гермицид эти препараты своего действия не оказывали, зародышевые элементы оставались жизнеспособными. Губительное действие 80 -100% водного раствора глицерина проявлялось только через 5-6 ч экспозиции [31].

В последнее время для обеззараживания ложа паразита успешно применяются препара-

ты йода: 3 -5% растворы йода с последующей инактивацией его 30% раствором тиосульфата натрия, 1% раствор йодфиксонала [5]. По данным ВОЗ, спирт (70 -95%), солевой гипертонический раствор (15 -20%), раствор цетримида (0,5%) являются наименее токсичными. Для оптимальной эффективности время экспозиции химического агента не должно превышать 15 минут [33]. Однако зафиксированы случаи развития метгемоглобинемии при применении раствора цетримида (0,5%) [38]. Большое количество больных, отсутствие эффективных парази-тотропных химиопрепаратов, высокая летальность эхинококкоза печени - все эти факторы обусловливают актуальность разработки новых эффективных методов лечения [18].

Для повышения надежности противопа-разитарной обработки, помимо химических средств, предложено использовать физические методы воздействия - «озвучивание» полости низкочастотным ультразвуком, облучение различными видами лазеров (гелий -неоновый, СО2- лазеры), плазменно -аргоновый коагулятор, пневмотермокоагуляция, обработка паром, плазменным потоком гелия. Применяется, но не получила широкого распространения криодеструкция остаточной полости [30]. В связи с громоздкостью и недоступностью аппаратуры перечисленные выше способы не нашли широкого применения в хирургии эхинококкоза [8]. Предложенная Б. А. Акмато-вым (1987) обработка остаточной полости фиброзной капсулы растворами антисептиков, нагретых до 60-70 С0, имеет ряд существенных недостатков. Этот метод сопряжен с неудобством термостатирования и использования горячих растворов во время сложных полостных операций, особенно при множественных формах эхинококкоза, а также связан с возможностью ожогов органов и тканей оперируемого больного через тонкую фиброзную капсулу обезвреживаемых паразитарных кист или при случайной разгерметизации системы из -за перфузии горячих растворов [2]. Применение высоконапорной гидропрессивной обработки остаточной полости может способствовать травматизации стенок фиброзной капсулы, открытию желчных свищей, желчеистечению, развитию холангита, кровотечению в фиброзную полость, а также неблагоприятно сказываться на сокращении остаточной полости [26]. Применение низкочастотного ультразвука малоэффективно. Это объясняется тем, что в брюшной полости ларвоцисты эхинококка чаще достигают больших размеров и имеют неправильную форму, в результате чего не все-

гда обеспечиваются основные условия губительного действия ультразвука на зародышевые элементы паразита - полное перемешивание жидкой фазы под влиянием этого агента. Неудобство подведения ультразвукового волновода к гидатидной кисте при поддиафраг-мальной локализации и глубоком внутриорган-ном расположении паразита являются еще одним фактором ограничения применения ультразвука [21]. Предложена интраоперацион-ная обработка остаточной полости низкочастотным ультразвуковым воздействием (кавитацией) с санацией раствором 0,05% уре -султана [23]. Попытки обезвреживания зародышевых элементов при хирургическом лечении рентгеновскими и ультрафиолетовыми лучами и воздействия УВЧ не дали обнадеживающих результатов.

Сотрудниками НЦХ им. академика В. Ва-хидова МЗ республики Узбекистан (отделение хирургии печени и желчных путей и лаборатория патологической анатомии) были изучены морфологические изменения, происходящие в фиброзных капсулах после обработки их излучением углекислого лазера и плазменным потоком гелия. Проведенные морфологические исследования показали, что разрушения фиброзной капсулы не происходит, в то же время оба способа обработки капсулы обладают весьма выраженным антипаразитарным действием по отношению к ларвоцистам, которые могли попасть в капсулу или вглубь ее стенки. Однако для полной эффективности данных методов полость кисты предварительно обрабатывали 3% раствором перекиси водорода, 70% раствором этилового спирта. Кроме того, конструкция лазерного скальпеля не позволяет свободно манипулировать в труднодоступных участках печени. К тому же излучение СО 2 -лазера поглощается и рассеивается даже тонким слоем жидкости, снижая его паразитоцид-ный эффект. Для качественной обработки полости приходится постоянно осушать ее марлевыми тампонами. Доказано, что излучение азотного (ультрафиолетового) лазера (УФЛ) и арсенид-галлиевого (инфракрасного) лазера (ИКЛ) на жизнеспособность зародышевых элементов не влияет [32]. Увеличение длительности импульса приводит к значительному возрастанию температуры ткани. В результате формируется зона абляции, окруженная зоной необратимого термонекроза, и расширенная зона коагуляционного повреждения за счет теплопередачи в тканях. Таким образом, выбор глубины абляционного и коагуляционного воздействия, необходимого в каждом конкретном случае, определяется особенностями дли-

ны волны и техническими характеристиками конкретной лазерной установки. Для полноценной работы необходимо использовать разные типы абляционного воздействия даже в рамках одной процедуры [10]. Ряд авторов предлагают применение местной озонотера-пии. Озон является сильным антимикробным, антивирусным, противогрибковым средством, вызывающим гибель микроогранизмов путем повреждения плазматической мембраны, приводящей к утрате жизнеспособности клеток и способности к размножению. Гибель организмов находится в прямо пропорциональной зависимости от концентрации озона и времени экспозиции. Противопоказанием к применению озона является высокая чувствительность к озону, тромбоцитопения. Оптимальное время воздействия озоном при обработке остаточной полости должно быть не меньше 10 мин [1]. М. А. Кахаров и соавт. предложили проводить перицистэктомию путем «выпаривания» фиброзной капсулы при помощи плазменной установки СУРП -М с гелиевым источником. Мощность, направление плазменной струи и продолжительность контакта регулируется в зависимости от плотности и толщины удаляемой фиброзной оболочки. Недостатком данного метода является образование ожогового струпа, который необходимо постоянно очищать влажными салфетками. При интимном сращении фиброзной капсулы с диафрагмой, близости нижней полой вены участок фиброзной капсулы оставляли и производили ее «выпаривание» до 50% толщины, что снижает эффективность обработки. Также клинические наблюдения показали, что после перицистэк-томии с использованием плазменной установки возможно развитие печеночной недостаточности в ранний послеоперационный период. Причина лежит в пролонгированном действии термического фактора на печеночную паренхиму [16]. Этими же авторами (М. А. Кахаров и соавт., 2003) предложен метод обработки остаточной полости с применением антипаразитарных средств и ультразвуковой кавитации. Авторы использовали модифицированный аппарат «УРСК-7Н-18» или «Узор». После обработки остаточной полости антипаразитарными средствами в течение 3 мин осуществляли ультразвуковую кавитацию через жидкость (гипертонический раствор хлорида натрия), введенную в опорожненную кисту. Как показали исследования, через 30 с после начала процедуры разрушались оболочки сколексов, а через 2 мин они превращались в гомогенную, нежизнеспособную массу. Недостатком данного метода является необходимость примене-

ния химических антипаразитарных средств, которые могут оказать токсическое действие на организм пациента [16]. В 2010 г. сотрудниками ННМЦ г. Астаны (Казахстан) предложен метод использования лечебного высокоинтенсивного фокусированного ультразвука ( High Intensive Focused Ultrasond-HIFU) для дистанционного (неинвазивного) локального направленного воздействия. Согласно разработанной методике, на 3 сут после HIFU-абляции проводится чрескожная пункция эхинококковой кисты [14, 15]. Отрицательными моментами в данном методе являются: необходимость создания искусственного гидроторакса, введение до 800 мл физиологического раствора, что может оказать отрицательное воздействие на гемодинамику. Время воздействия высокоинтенсивным фокусированным ультразвуком зависит от объема кисты, чем больше образование, тем больше время воздействия, тем выше вероятность поверхностных ожогов кожи пациента. При проведении чрезкожной пункции эхинококковой кисты возможно оставление элементов эхинококковой кисты с последующим их нагноением или обызвествлением.

Таким образом, высокая токсичность химических средств обработки остаточной полости, сложность в применении и недостаточная эффективность имеющихся физических методов диктует необходимость поиска новых безопасных и эффективных способов обеззараживания зародышевых элементов эхинококка [3, 6].

ЛИТЕРАТУРА

1 Айдемиров А. Н. Плазменные технологии в хирургии эхинококкоза печени /А. Н. Айдемиров, М. Д. Байрамкулов //Матер. меж-дунар. конф. «Проблемы эхинококкоза ». - Махачкала, 2000. - С. 7-8.

2 Акматов Б. А. Способ обработки полости эхинококковой кисты //Диагностика и лечение эхинококкоза. - Баку, 1987. - С. 57-59.

3 Алиев М. А. Хирургия эхинококкоза легких /М. А. Алиев, О. К. Кулакеев. - Алматы: Медицина баспасы, 2002. -160 с.

4 Амонов Ш. Ш. Результаты хирургического лечения эхинококковых кист печени /Ш. Ш. Амонов, М. И. Прудков, О. Г. Орлов // Новости хирургии. - 2011. - Т. 19, №6. - С. 146-149.

5 Бабашев Б. Б. Химиохирургический способ лечения эхинококкоза человека // Диагностика и лечение эхинококкоза. - Баку, 1987. - С. 64-65.

6 Бетирова Д. Ш. Профилактика рецидивов эхинококкоза печени: Автореф. дис. ...д-ра мед. наук. - А: ННЦХ им А.Н. Сызганова, 2007. - 24 с.

7 Ветшев П. С. Эхинококкоз: современный взгляд на состояние проблемы /П. С. Вет-шев, Г. Х. Мусаев //Анналы хирургической ге-патологии. - 2006. - Т. 11, №1. - С. 111-117.

8 Гаджиабакаров Г. М. Выбор способа антипаразитарной обработки при эхинококкэк-томии печени: Дис. ...канд. мед. наук. - Махачкала: ДГМА, 2004. - 159 с.

9 Гаджиев Ш. М. Оценка методов хирургического лечения эхинококкоза легких по данным ближайших и отдаленных метастазов: Автореф. ...канд. мед. наук. - Баку, 1984. -14 с.

10 Гейнец А. Основные понятия лазерной медицины. Лазерные системы Фотона. -Украина, 2011. - №6. - С. 4-5.

11 Дадвани С. А. Лечение гидатидного эхинококкоза /С. А. Дадвани, О. С. Шкробов, А. Н. Лотов //Хирургия. - 2000. - №8. - С. 27-32.

12 Журавлев В. А. Гидатидозный эхинококкоз печени. Вопросы хирургического лечения /В. А. Журавлев, В. М. Русинов, Н. А. Щербакова //Хирургия. Журн. им. Н.И. Пирогова. -2004. - №2. - С. 51-54.

13 Ибадильдин А. С. Алгоритм диагностики и лечения осложненного эхинококкоза печени /А. С. Ибадильдин, Д. Ю. Кузьмин // Вестн. хирургии Казахстана. - 2012. - №1. - С. 32-33.

14 Иманкулов С. Б. Возможности высокоинтенсивного фокусированного ультразвука в лечении эхинококкоза печени // Ультразвуковая и функциональная диагностика. - 2011. - №5. - 120 с.

15 Инновационный патент. Республика Таджикистан. Способ лечения альвеококкоза и эхинококкоза печени высокоинтенсивным фокусированным ультразвуком ( HIFU) /С. Б. Иманкулов, Г. В. Федотовских, Г. М. Шаймар-данова и др. - 2003. - № 397.

16 Кахаров М. А. Обоснование удаления фиброзной капсулы при эхинококкэктомии из печени /М. А. Кахаров, В. А. Кубышкин, В. А. Вишневский //Хирургия.- 2003. - №1. - С. 31-35.

17 Коваленко Ф. П. Экспериментальные модели эхинококкозов: оптимизация и применение в разработке методов диагностики, профилактики и лечения человека и животных: Автореф. дис. ...д -ра мед. наук. - М., 1998. -22 с.

18 Крапивный А. Ю. Криохирургическое лечение эхинококкоза печени /А. Ю. Крапивный, Л. Ю. Петров //Матер. междунар. 63 науч. студ. конф. им. Н. И. Пирогова. - Томск, 2004 - 320 с.

19 Кротов А. И. Разработка методов химиотерапии альвеококкоза и эхинококкоза /А. И. Кротов, О. Б. Милонов //Хирургия. -1980. -№12. - С. 71-75.

20 Лотов А. Н. Сберегающая хирургия при эхинококкозе печени //Анналы хирургической гепатологии.- 2011. - Т. 16, №4. - С. 11-18.

21 Назаров Ш. К. Диагностика и хирургическое лечение эхинококкоза печени и органов брюшной полости (экспериментально -клиническое исследование): Дис. ...д -ра мед. наук. - М.: ТГМУ, 2005. - 344 с.

22 Нечитайло М. Е. Хирургическое лечение эхинококкоза печени /М. Е. Нечитайло, К. И. Буланов, В. В. Черный, В. Ф. Саенко // Анналы хирургической гепатологии. - 2001. -Т. 6, №1. - С. 40-46.

23 Новое в диагностике и хирургическом лечении осложненного эхинококкоза печени / Т. Г. Гульмурадов, М. Г. Паллаев, Р. Х. Саи-дов //Известия академии наук Республики Таджикистан. Отделение биологических и медицинских наук. - 2006. - №2. - С. 85-90.

24 Ордабеков С. О. Обработка эхинококковой кисты йод -тиосульфатом //Вестн. хирургии. - 1984. - №4. -С. 72-76.

25 Оспанов А. Диагностика и хирургическая тактика при рецидивах эхинококкоза внутренних органов /А. Оспанов, М. У. Жулов-чинов, А. Б. Амантаев //Вестн. хирургии Казахстана. - 2012. - №1. - 23 с.

26 Пархисенко Ю. А. Диагностика и лечение абсцессов печени /Ю. А. Пархисенко, А. А. Глухов, В. В. Новомлинский //Хирургия. -2000. - №8. - С. 35-38.

27 Спасокукоцкий С. И. Оперативное лечение эхинококкоза печени по закрытому способу //Нов. хир. арх. - 1926. - №3. - С. 37-38.

28 Хамидов Л. И. Классификация методов воздействия на зародышевые элементы при эхинококкэктомии /Л. И. Хамидов, Г. М. Гаджиабакаров, М. А. Хамидов //Матер. меж-дунар. науч. -практ. конф. «Проблемы эхинококкоза». - Махачкала, 2000. - С. 122-123.

29 Хохлов Н. Ф. О химической обработке стенок остаточной полости фиброзной капсулы при эхинококкэктомии //Экспериментальная хирургия и анестезиология. - 1966. - №4. - С. 47-49.

30 Шевченко Ю. Л. Эволюция методов хирургического лечения эхинококкоза печени / Ю. Л. Шевченко, С. С. Харнас, А. В. Самохвалов //Хирургия. Журн. им. Н.И. Пирогова. -2004. - №7. - С. 49-55.

31 Шевченко Ю. Л. Противорецедивная терапия в хирургическом лечении больных эхинококкозом печени /Ю. Л. Шевченко, С. С. Харнас, Г. Х. Мусаев //Анналы хирургии. -2007. - №5. - С. 35-38.

32 Эхинококкоз органов брюшной полости и редких локализаций: монография /Ф. Г. Назыров, Б. У. Сабиров, А. В. Стреляева и др.

- M.: Megi^MHa, 2004. - 520 c.

33 Abu-Eshy S. A. Clinical characteristics, diagnosis and surgical management of hydatid cysts //WAJM. - 2006. - V. 25, №2. - P. 144152.

34 Aggarwal A. R. Formalin toxiti in hidatid liver disease /A. R. Aggarwal, R. J. Gard // Anaesthesia. - 1983. - V. 38. - P. 662-665.

35 Krige Je. Fatal hypernatraemia after hypertonic saline irrigation of hepatic hydatid cysts /Je. Krige, A. J. Millar, H. Rode //Pediatr. Surg. Int. - 2002. - №18. - P .64-65.

36 Papadimitriou J. Formalin toxicity in hydatid liver disease. Report of 61 cases /J. Papadimitriou, L. Papadimitriou //Eur. J. Respir. Dis. -1983. - V. 64, №3. - P. 217-221.

37 Puryan K. Chlirhexidene gluconate: An ideal scolicidal agent in the treatment of intraperitoneal hydatidosis? /K. Puryan, K. Karadayi, O. Topcu et al. //World J. Surg. - 2005. - №29. - P. 227-230.

38 Shaw J. M. Hydatid disease of the liver / J. M. Shaw, P. C. Bornman, J. E. J. Krige //SAJS.

- 2006. - V. 44, №2. - P. 70-77.

REFERENCES

1 Ajdemirov A. N. Plazmennye tehnologii v hirurgii jehinokokkoza pecheni /A. N. Ajdemirov, M. D. Bajramkulov //Mater. mezhdunar. konf. «Problemy jehinokokkoza». - Mahachkala, 2000.

- S. 7-8.

2 Akmatov B. A. Sposob obrabotki polosti jehinokokkovoj kisty //Diagnostika i lechenie jehinokokkoza. - Baku, 1987. - S. 57-59.

3 Aliev M. A. Hirurgija jehinokokkoza leg-kih /M. A. Aliev, O. K. Kulakeev. - Almaty: Medicina baspasy, 2002. -160 s.

4 Amonov Sh. Sh. Rezul'taty hirurgicheskogo lechenija jehinokokkovyh kist pecheni /Sh. Sh. Amonov, M. I. Prudkov, O. G. Orlov //Novosti hirurgii. - 2011. - T. 19, №6. - S. 146-149.

5 Babashev B. B. Himiohirurgicheskij sposob lechenija jehinokokkoza cheloveka // Diagnostika i lechenie jehinokokkoza. - Baku, 1987. - S. 64-65.

6 Betirova D. Sh. Profilaktika recidivov jehinokokkoza pecheni: Avtoref. dis. ...d-ra med. nauk. - A: NNCH im A.N. Syzganova, 2007. - 24 s.

7 Vetshev P. S. Jehinokokkoz: sovremennyj vzgljad na sostojanie problemy /P. S. Vetshev, G. H. Musaev //Annaly hirurgicheskoj gepatologii. -2006. - T. 11, №1. - S. 111-117.

8 Gadzhiabakarov G. M. Vybor sposoba antiparazitarnoj obrabotki pri jehinokokkjektomii pecheni: Dis. ...kand. med. nauk. - Mahachkala: DGMA, 2004. - 159 s.

9 Gadzhiev Sh. M. Ocenka metodov hirurgicheskogo lechenija jehinokokkoza legkih po

dannym blizhajshih i otdalennyh metastazov: Avtoref. ...kand. med. nauk. - Baku, 1984. -14 s.

10 Gejnec A. Osnovnye ponjatija lazernoj mediciny. Lazernye sistemy Fotona. - Ukraina, 2011. - №6. - S. 4-5.

11 Dadvani S. A. Lechenie gidatidnogo je-hinokokkoza /S. A. Dadvani, O. S. Shkrobov, A. N. Lotov //Hirurgija. - 2000. - №8. - S. 27-32.

12 Zhuravlev V. A. Gidatidoznyj jehinokok-koz pecheni. Voprosy hirurgicheskogo lechenija / V. A. Zhuravlev, V. M. Rusinov, N. A. Shherbako-va //Hirurgija. Zhurn. im. N.I. Pirogova. - 2004. -№2. - S. 51-54.

13 Ibadil'din A. S. Algoritm diagnostiki i lechenija oslozhnennogo jehinokokkoza pecheni / A. S. Ibadil'din, D. Ju. Kuz'min //Vestn. hirurgii Kazahstana. - 2012. - №1. - S. 32-33.

14 Imankulov S. B. Vozmozhnosti vysokointensivnogo fokusirovannogo ul'trazvuka v lechenii jehinokokkoza pecheni //Ul'trazvukovaja i funkcional'naja diagnostika. - 2011. - №5. - 120 s.

15 Innovacionnyj patent. Respublika Ta-dzhikistan. Sposob lechenija al'veokokkoza i jehinokokkoza pecheni vysokointensivnym fokusiro-vannym ul'trazvukom (HIFU) /S. B. Imankulov, G. V. Fedotovskih, G. M. Shajmardanova i dr. -2003. - № 397.

16 Kaharov M. A. Obosnovanie udalenija fibroznoj kapsuly pri jehinokokkjektomii iz pecheni /M. A. Kaharov, V. A. Kubyshkin, V. A. Vishnevskij //Hirurgija. - 2003. - №1. - S. 31-35.

17 Kovalenko F. P. Jeksperimental'nye modeli jehinokokkozov: optimizacija i primenenie v razrabotke metodov diagnostiki, profilaktiki i lechenija cheloveka i zhivotnyh: Avtoref. dis. ...dra med. nauk. - M., 1998. - 22 s.

18 Krapivnyj A. Ju. Kriohirurgicheskoe lech-enie jehinokokkoza pecheni /A. Ju. Krapivnyj, L. Ju. Petrov //Mater. mezhdunar. 63 nauch. stud. konf. im. N. I. Pirogova. - Tomsk, 2004 - 320 s.

19 Krotov A. I. Razrabotka metodov himioterapii al'veokokkoza i jehinokokkoza /A. I. Krotov, O. B. Milonov //Hirurgija. -1980. - №12.

- S. 71-75.

20 Lotov A. N. Sberegajushhaja hirurgija pri jehinokokkoze pecheni //Annaly hirurgicheskoj gepatologii. - 2011. - T. 16, №4. - S. 11-18.

21 Nazarov Sh. K. Diagnostika i hirur-gicheskoe lechenie jehinokokkoza pecheni i or-ganov brjushnoj polosti (jeksperimental'no-klinicheskoe issledovanie): Dis. ...d-ra med. nauk.

- M.: TGMU, 2005. - 344 s.

22 Nechitajlo M. E. Hirurgicheskoe lechenie jehinokokkoza pecheni /M. E. Nechitajlo, K. I. Bulanov, V. V. Chernyj, V. F. Saenko //Annaly hirurgicheskoj gepatologii. - 2001. - T. 6, №1. -S. 40-46.

23 Novoe v diagnostike i hirurgicheskom lechenii oslozhnennogo jehinokokkoza pecheni / T. G. Gul'muradov, M. G. Pallaev, R. H. Saidov // Izvestija akademii nauk Respubliki Tadzhikistan. Otdelenie biologicheskih i medicinskih nauk. -2006. - №2. - S. 85-90.

24 Ordabekov S. O. Obrabotka jehinokok-kovoj kisty jod-tiosul'fatom //Vestn. hirurgii. -1984. - №4. -S. 72-76.

25 Ospanov A. Diagnostika i hirurgicheska-ja taktika pri recidivah jehinokokkoza vnutrennih organov /A. Ospanov, M. U. Zhulovchinov, A. B. Amantaev //Vestn. hirurgii Kazahstana. - 2012. -№1. - 23 s.

26 Parhisenko Ju. A. Diagnostika i lechenie abscessov pecheni /Ju. A. Parhisenko, A. A. Gluhov, V. V. Novomlinskij //Hirurgija. - 2000. -№8. - S. 35-38.

27 Spasokukockij S. I. Operativnoe lechenie jehinokokkoza pecheni po zakrytomu sposobu // Nov. hir. arh. - 1926. - №3. - S. 37-38.

28 Hamidov L. I. Klassifikacija metodov vozdejstvija na zarodyshevye jelementy pri jehinokokkjektomii /L. I. Hamidov, G. M. Gadzhia-bakarov, M. A. Hamidov //Mater. mezhdunar. nauch.-prakt. konf. «Problemy jehinokokkoza». -Mahachkala, 2000. - S. 122-123.

29 Hohlov N. F. O himicheskoj obrabotke stenok ostatochnoj polosti fibroznoj kapsuly pri jehinokokkjektomii //Jeksperimental'naja hirurgija i anesteziologija. - 1966. - №4. - S. 47-49.

30 Shevchenko Ju. L. Jevoljucija metodov hirurgicheskogo lechenija jehinokokkoza pecheni /Ju. L. Shevchenko, S. S. Harnas, A. V. Samoh-valov //Hirurgija. Zhurn. im. N.I. Pirogova. -2004. - №7. - S. 49-55.

31 Shevchenko Ju. L. Protivorecedivnaja terapija v hirurgicheskom lechenii bol'nyh je-hinokokkozom pecheni /Ju. L. Shevchenko, S. S. Harnas, G. H. Musaev //Annaly hirurgii. - 2007. -№5. - S. 35-38.

32 Jehinokokkoz organov brjushnoj polosti i redkih lokalizacij: monografija /F. G. Nazyrov, B. U. Sabirov, A. V. Streljaeva i dr. - M.: Medicina, 2004. - 520 s.

33 Abu-Eshy S. A. Clinical characteristics, diagnosis and surgical management of hydatid cysts //WAJM. - 2006. - V. 25, №2. - P. 144-152.

34 Aggarwal A. R. Formalin toxiti in hidatid liver disease /A. R. Aggarwal, R. J. Gard // Anaesthesia. - 1983. - V. 38. - P. 662-665.

35 Krige Je. Fatal hypernatraemia after hypertonic saline irrigation of hepatic hydatid cysts /Je. Krige, A. J. Millar, H. Rode //Pediatr. Surg. Int. - 2002. - №18. - P .64-65.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

36 Papadimitriou J. Formalin toxicity in hydatid liver disease. Report of 61 cases /J. Papadimitriou, L. Papadimitriou //Eur. J. Respir. Dis. -1983. - V. 64, №3. - P. 217-221.

37 Puryan K. Chlirhexidene gluconate: An ideal scolicidal agent in the treatment of intraperitoneal hydatidosis? /K. Puryan, K. Karadayi, O.

Topcu et al. //World J. Surg. - 2005. - №29. - P. 227-230.

38 Shaw J. M. Hydatid disease of the liver / J. M. Shaw, P. C. Bornman, J. E. J. Krige //SAJS. - 2006. - V. 44, №2. - P. 70-77.

Поступила 15.07.2016

D. K. Kaliyeva

METHODS OF SANITATION OF RESIDUAL CAVITY AT ECHONOCOCCECTOMY

Department of surgical diseases №2 and pathological anatomy of Karaganda state medccal universtty

(Karaganda, Kazakhstan)

For intraoperative treatment of hydatid cysts need highly effective methods of destructive effect on the embryonic elements of echinococcus. Nowadays there are various methods of decontamination residual cavity at carrying out of echinococcectomy. Conventionally, these methods are divided into chemical, physical and biological. The article presents the modern methods of sanitation residual cavity at carrying out of echinococcectomy. The mechanisms of action of chemical and physical methods of decontamination on the embryonic elements of hydatid cysts have been described. Positive and negative sides of each of the described method were introduced.

Key words: echinococcectomy, residual cavity, disinfection, intraoperative treatment, rehabilitation methods

Д. К. Калиева

ЭХИНОКОККЭКТОМИЯ КЕЗ1НДЕ КАЛДЫК КУЫСЫН САНАЦИЯЛАУ ЭД1СТЕР1

КараFанды мемлекеттк медициналык университетмщ №2 хирургиялык аурулар жэне патологиялык анатомия кафедрасы (КараFанды, Казахстан)

Гидатид™ кисталарды интраоперациялык ендеу Yшiн эхинококктын енд1 пайда болран элементтер1не елеул1 эсер ете™ жорары ти1мд1 эд1стер кажет. К,аз1рп уакытта эхинококкэктомия жYргiзу кез1нде калдык куысын залалсыздандырудын эртYрлi эд1стер1 бар. Шартты тYPде бул эд1стер химиялык, физикалык жэне биологиялык болып бел1нед1. Макалада эхинококкэктомия жYргiзу кез1нде калдык куысын санациялаудын каз1рп заманры эд1стер1 усынылран. Эхинококкалык кисталардын енд1 пайда болран элементтер1не химиялык жэне физикалык эсер етудН тет1ктер1 сипатталран. 6рб1р суреттелген эд1спн жарымды жэне жарымсыз жактары усынылран.

Клт сездер: эхинококкэктомия, калдык куысы, залалсыздандыру, интраоперациялык ендеу, санация эд1стер1

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.