CC BY
5
но в просоночиом состоянии, должно способствовать усвоению и реализации внушаемых установок.
При проведении беседы с членами семьи заядлого курильщика необходимо сделать акцент на том вреде, который наносит курение здоровью самого курильщика, и на той опасности, которой он подвергает здоровье остальных членов семьи, особенно детей и "женщин. Проводить эту беседу целесообразно в кругу семьи в присутствии курящего. Для этого семью предварительно уведомляют о визите участкового врача и договариваются о наиболее удобном времени посещения. Сам факт прихода врача по поводу разъяснения необходимости отказа от курения поднимает значимость этого мероприятия и настораживает курящих членов семьи.
В семьях, где курят несколько человек, после проведения беседы целесообразно так организовать тактику воздействия, чтобы обеспечить одновременное привлечение всех заинтересованных членов семьи. /
Даже если удалось сформировать у пациента положительную установку в отношении необходимости отвыкания от курения, медицинский персонал должен помнить о нестойком характере сформированной мотивации и неспособности пациента к длительной целенаправленной работе по коррекции этого фактора риска.
Следует, основываясь на индивидуальных осо-
бенностях личности пациента, с учетом интенсивности и длительности курения выбрать наиболее целесообразные формы воздействия: медикаментозное лечение, иглорефлексотерапию и т. д.
В случае, если не удалось убедить пациента в необходимости бросить курить и он категорически отказывается от любых видов воздействия, то необходимо дать ему ряд советов, выполне-
ние которых позволит снизить вредное воздействие табака на организм.
Для оценки деятельности врача и эффективности программы необходимо использовать следующие показатели: 1) распространенность привычки курения; 2) среднее число выкуриваемых сигарет (папирос) на одного курящего; 3) частота новых случаев курения.
Литература
9
1. Киселев А. А., Сибурина Т. А., Камалиев М. А. и др-Инструкция по проведению эксперимента по выявлению и коррекции курения: Учебный модуль для медицинского персонала территориально-терапевтических и сельских врачебных участков.— М., 1987.
2. Малая Э. В. // Сов. здравоохр. — 1979. —№ 5. — С. 32— 34.
3. Цешковский М. С., Милиевская И. JJ. Рекомендации для медицинского персонала по тактике и методам борьбы с курением среди различных групп населения. — М., 1987.
4. Problemy Higieny / Ed. Т. Górski. — Lodz, 1981.
5. Tobacco. A Major International Health Hazard / Eds. D. Zaridze, R. Peto. — Lyon, 1986.
Поступила 24.11.87
f-,
Методы исследования
УДК 6I3.632.4+6I4.72J:[547.391.3+547.264J-074
А. H. Джанджапанян, Э. А. Пизян
ОПРЕДЕЛЕНИЕ МИКРОКОЛИЧЕСТВ БУТИЛАКРИЛАТА
И БУТИЛМЕТАКРИЛАТА В ВОЗДУХЕ
* * ' * .1. •* "«Т.": • 1С . " ЗЫ % *
Филиал ВНИИ гигиены и токсикологии пестицидов, полимеров и пластических масс
Минздрава СССР, Ереван
*
Бутилакрилат и бутилметакрилат применяются в качестве мономеров при получении полимеров, используемых в производстве пластмасс, лаков, красок, эмульсий, клеев.
Известны способы определения веществ в воздухе с применением колориметрических [3, 4] и хроматографических [2, 5] методов анализа. Однако все они недостаточно чувствительны, и их практически нельзя использовать при определении микроколичеств веществ в воздухе жилых и общественных помещений, а также при сани-тарно-химических исследованиях полимерных материалов, выделяющих в воздух вещества в коли-
чествах, соответствующих допустимым уровням (ДУ) выделения из полимерных материалов. ДУ бутилакрилата составляет 0,05 мг/м3, бутил-метакрилата — 0,15 мг/м3 [1].
Анализы проводили на газовом хроматографе «Цвет-106» с пламенно-ионизационным детектором. Были испытаны колонки, заполненные различными наполнителями, при варьировании условий работы прибора — температурных режимов, скорости расхода газов, длины колонок.
Выбранные условия хроматографирования: наполнитель колонки — полимерный сорбент поли-сорб-1 (0,1—0,25 мм); размер колонки 1 мХЗмм;
s
Установка для извлечения веществ ди-этиловым эфиром из трубки-концентратора с одновременным выпариванием
растворителя из экстракта.
1 — трубка-концентратор с пробой; 2 — приемник; 3 — насадка для подключения к вакууму; 4 — воронка для приливания эфира; 5 — гибкая соединительная трубка; 6 — резиновая пробка с отверстием; 7 — эфирный экстракт.
кя
температура колонки 180°С, испарителя 230°С; скорость потока газа-носителя (азот) и водорода 33 мл/мин, воздуха 330 мл/мин.
В этих условиях время удерживания бутилак-рилата составило 3 мин 20 с, бутилметакрила-та — 8 мин 25 с. Предел обнаружения веществ при вводе в хроматограф 0,5 мкл спиртовых растворов при чувствительности прибора 50-10-12 А составил 0,015 мкг.
Для отбора проб воздуха были испытаны поглотители с этиловым спиртом, активированным углем и полисорбом-1. Установлено, что при использовании двух последовательно соединенных поглотителей, содержащих по 5 мл этилового спирта, можно со скоростью 0,5 л/мин отбирать до 60 л воздуха с обеспечением степени поглощения не менее 96%. Однако применение этилового спирта в качестве поглотительной среды в данном случае нецелесообразно ввиду мешающего влияния пика растворителя при определении малых количеств бутилакрилата. Дополнительное же концентрирование получаемого спиртового раствора путем выпаривания растворителя приводит к значительным потерям анализируемых веществ.
Исходя из этого, в качестве поглотительных сред были испытаны твердые сорбенты — активированный уголь и полисорб-1 с последующим извлечением поглощенных веществ расторителя-ми. Лучшие результаты получены при применении активированного угля марки АГ-3. При использовании 0,5 г последнего и отборе со скоростью 0,5 л/мин до 60 л воздуха происходит практически полное (около 100%) поглощение веществ. Достаточно эффективное поглощение наблюдается также при пропускании того же объема воздуха через 1 г угля со скоростью 1 л/мин
(97—98 %) или через 1,5 г угля со скоростью
2 л/мин (95—97 %).
Для извлечения веществ, адсорбированных на угле, наиболее удобным растворителем оказался диэтиловый эфир, трехкратное пропускание которого в количестве по 10 мл через трубку с углем извлекает не менее 98—99 % определяемых веществ. Кроме того, установлено, что эфирные растворы можно подвергать дополнительному концентрированию путем выпаривания растворителя до минимальных объемов без практических потерь анализируемых веществ. При этом пик растворителя на хроматограмме не мешает определению веществ.
Таким образом, наиболее оптимальными условиями отбора воздуха и подготовки проб к анализу являются следующие: поглотитель — стеклянная трубка с внутренним диаметром 3— 4 мм, наполненная 1,5 г активированного угля марки АГ-3 (размер частиц 0,5—1 мм); скорость'отбора 2 л/мин; объем аспирируемого воздуха до 60 л. Отобранные пробы могут храниться при комнатной температуре в течение 7 сут.
____ - - ■> - • • * *
Для извлечения поглощенных веществ конец трубки с пробой пропускают через резиновую пробку и надетую на приемник (колбочка вместимостью 5—ТО мл) насадку для подсоединения к вакууму и помещают в приемник (см. рисунок). Полученную установку подключают к водоструйному насосу и через свободный конец трубки пропускают чистый диэтиловый эфир. При этом одновременно происходит выпаривание эфира из экстракта. Экстракцию повторяют
3 раза, пропуская каждый раз по 10 мл эфира. По окончании трубку-концентратор удаляют, промывая небольшим количеством эфира его наружные стенки, находившиеся внутри приемника. Полученные объединенные экстракты выпаривают до объема 0,1 мл при 20—25 °С и анализируют вводом 1 мкл раствора в хроматограф.
Пределы обнаружения при отборе 60 л воздуха: в анализируемом объеме — бутилакрилата 0,0072 мкг, бутилметакрилата 0,009 мкг; в воздухе— бутилакрилата 0,012 мг/м3, бутилметакрилата 0,015 мг/м3. Погрешность определения составляет не более ±10%.
Количественное определение проводили методом абсолютной калибровки, используя стандартные растворы веществ в чистом диэтиловом эфире с концентрациями 7—100 мкг/мл. Гра-дуировочный график строили в координатах: высота пика (в мм) — количество вещества (в мкг). Содержание веществ в воздухе (в мг/м3) рассчитывали по известной формуле [2].
Методика применена при санитарно-химиче-ском исследовании полимерного клея, содержащего сополимеры на основе бутилакрилата и бутилметакрилата.
Литература
1. Методические указания по санитарно-гигиеническому контролю полимерных строительных материалов, предназначенных для применения в строительстве жилых и общественных зданий. — М., 1980.
2. Муравьева С. ИБабина М. Д., Атласов А. Г., Новикова И. С. Санитарно-химический контроль воздуха промышленных предприятий. — М., 1982, — С. 48—50; 142— 143.
3. Перегуд Е. А., Гернет Е. В. Химический анализ воздуха промышленных предприятий.— Л., 1973. — С. 230—231.
4. Перегуд Е. А. Санитарно-химический контроль воздушной среды.— Л., 1978.— С. 112—113.
5. Рапопорт Л. И., Лепихова С. В., Френкель С. А. и др.// Гигиена применения полимерных материалов. — Киев, 1976.— С. 250—252,
Поступила 28.03.88
УДК 616-008.922.8-074:543.42
3. А. Анисимова, Л. А. Румянцева
СПЕКТРОГРАФИЧЕСКОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ КРЕМНИЯ
В БИОЛОГИЧЕСКОМ МАТЕРИАЛЕ
Московский НИИ гигиены им. Ф. Ф. Эрисмана
При анализе биологического материала с целью определения микроэлементов применяется эмиссионный спектральный анализ, который отличается высокой избирательностью и возможностью определения в одной пробе нескольких элементов одновременно.
Анализ биоматериала спектрографическим методом включает подготовку проб и эталонов, фотографирование спектров проб и эталонов на фотопластинке с помощью спектрографа, фото-метрирование аналитических линий на микрофотометре и определение содержания того или иного элемента путем построения градуировоч-ного трафика и расчета количества элемента в микрограммах на 1 мг золы органа.
Целью настоящей работы являлась разработка методики спектрографического определения кремния в таких органах животных, как сердечная мышца, печень и почки, так как при попадании в организм через желудочно-кишечный тракт он может накапливаться в этих органах.
Спектральному анализу подвергали органы молодых животных — белых крыс-самцов, за-травляемых от рождения до 3,5 мес вытяжками из кремнийорганического полимерного соединения на основе полидиметилсилоксанового каучука СКТН-А с наполнителем аэросилом. Затравку проводили посредством стеклянных поилок. Вытяжки готовили при 250 °С. В вытяжках содержится комплекс химических веществ, в том числе силоксаны и силаны, которые мигрируют из полимерного материала и могут оказывать неблагоприятное воздействие на организм животных. о
Точность результатов анализа в значительной степени зависит от качества эталонов и их соответствия анализируемым пробам лярному и валовому составу.
В настоящее время в связи с аттестацией лабораторий и с учетом требований к метрологическому обеспечению их работы важно применение стандартных образцов, прошедших государственные испытания.
по молеку-
, | • • «»т ^ , • , я ^ > 11 \ ,
В 1982 г. сотрудниками физико-химического института АН УССР разработаны стандартные образцы растворов металлов, в том числе ГСОРМ-5, содержащий раствор кремния. В полиэтиленовой ампуле вместимостью 1 мл содержится 1 мг кремния. Рабочий раствор с содержанием кремния 40 мкг/мл готовили из содержимого ампулы следующим образом: в мерную колбу на 25 мл переносили 1 мл раствора ГСОРМ-5 и доводили до метки специально приготовленной водой, не содержащей кремний. Этанолы с содержанием кремния 2,4 и 8 мкг были приготовлены путем закапывания микропипеткой в электроды на спектроскопическую основу этого рабочего раствора. Подсушивание в процессе закапывания проводили под лампой. Подбор эталонов проводили опытным путем при одновременном фотографировании спектров эталонов разной концентрации и проб золы биоматериала. Кратеры электродов предварительно покрывали пленкой полистирола путем закапывания раствора полистирола в бензоле.
Подготовка проб биоматери'ала заключалась в высушивании и минерализации с целью обогащения проб. Озоление биоматериала проводили в муфельной печи при температуре не выше 450 °С в среднем в течение 6 ч с момента установки тиглей в муфельную печь.
Озоленный биоматериал тщательно растирали в агатовой ступке и помещали в пакетики из кальки. Затем брали точные навески золы органов и графитового порошка марки ОСЧ-7-4 в соотношении 1:3 и перемешивали в течение 30—40 мин в ступке, добиваясь полной однородности смеси. При перетирании добавляли этиловый спирт для лучшего перемешивания компонентов.
По 20 мг смеси помещали в кратеры фасонных графитовых электродов в виде рюмочки (тип IV) и размещали в гнездах штатива в определенной последовательности по группам животных. Шта-тивы-подставки для электродов имеют диаметр 7—8 мм, а диаметр электрода 6 мм. Для уплот-
