CC BY
6
сказывается на их физическом развитии и состоянии здоровья. Не посещают кружки художественной самодеятельности 48,5 % учащихся. Большинство (86,5%) школьников ложатся спать в рекомендуемое для них время.
Как видно из результатов анкетирования, в режиме дня учащихся, не посещающих группы продленного дня, имеются педагогические и санитарно-гигиенические недостатки. Режим учебных занятий и дня в целом является ведущим фактором в охране здоровья школьников [1, 5, 7, 8], так как существует прямая зависимость между здоровьем детей и их режимом дня [6]. Успеваемость учащихся, посещающих группы продленного дня, была достоверно выше, чем среди школьников, не посещающих эти группы.
Таким образом, целенаправленная работа органов здравоохранения и просвещения, создание благоприятных условий для школ и групп продленного дня, строгое соблюдение режима дня, использование различных лечебно-оздоровитель-
УДК 614.777:615.285.71-074
Широкая химизация сельского хозяйства в современных условиях связана с опасностью гигиенического загрязнения открытых водоемов различными химическими веществами.
Одним из важных вопросов оценки качества воды является надежность исходной информации об уровнях отдельных ингредиентов, присутствующих в воде водоемов.
Для определения хлорофоса в различных средах, в том числе и в воде, имеется ряд методов [1, 2].
В наших исследованиях для обнаружения хлорофоса в воде водоемов с высокой цветностью испытан наиболее специфичный хроматографический метод в тонком слое сорбента [1, 2] с использованием готовых пластинок си-луфол. На хроматографнческие пластинки силуфол наносили стандартные растворы хлорофоса в диэтиловом эфире в количестве от 8 до 20 мкг. Пластинку помещали в хроматографнческие камеры с растворителем, состоящим из смеси гексана и ацетона в соотношении 1:1. После прохождения растворителя на высоту 10 см пластинки вынимали и высушивали.
Учитывая дефицит реактивов азотнокислого серебра, орошение пластинок проводили смесью 2 % раствора резорцина и 10 % раствора карбоната натрия в соотношении 2:3 с последующим нагреванием при температуре 100 °С в течение 10 мин. В этих условиях пластинки темнели и пятна хлорофоса были трудно различимы.
Многочисленные опыты показали, что лучшие результаты получаются при использовании для орошения пластинок силуфол смеси указанных растворов, но в соотно-
ных мероприятий дают положительные результаты, снижают показатели заболеваемости, повышают работоспособность и успеваемость учащихся.
Литература
1. Вайнруб Е. М.. Еременко Г. Н.. Краснянская П. Л. Гигиена обучения детей в школах с продленным днем. — Киев, 1984.
2. Варич Н. И., Сычев А. А. //Охрана здоровья детей и подростков. — Киев, 1974, — Вып. 6.— С. 112—116.
3. Гайдай В. Я., Коропева 3. Г.// Состояние здоровья школьников и организация их обслуживания. — М., 1973.—С. 10—13.
4. Зайцева Л. С. // Здравоохр. Рос. Федерации. — 1979.— № 2, —С. 11 — 14.
5. Молчанова Н. М., Топоркова И. Б. // Гиг. и сан. — 1982. — № 2.—С. 37—40.
6. Неделько В. //.//Там же. — 1976. — № 4. — С. 47—51.
7. Опарин И. А., Зайцева Л. С. //Там же. — 1978.—№ 7,— С. 115-117.
8. Пуляева О. Н.. Полкачева Т. А. // Здравоохр. Рос. Федерации. — 1983. — № 5,—С. 19—21.
8. Сазашок 3. И.// Гиг и сан. — 1982, —№ 4. —С. 39—42.
Поступила 10.02.87
шениях 1 :3 и нагревании в течение 1—2 мин при температуре 80—85 °С.
Извлечение хлорофоса из водной среды проводят из подкисленного серной кислотой раствора, хлороформную вытяжку испаряют при комнатной температуре до полного удаления хлороформа. Сухой остаток растворяют в небольшом количестве днэтилового эфира, выпаривают до объема 0,1—0,2 см» и наносят на хроматографическую пластинку силуфол.
Результаты исследований представлены в таблице.
Таким образом, на основании проведенных исслсдова-
Результаты определения хлорофоса хроматографическим методом в тонком слое сорбента
Внесено, мг Обнаружено, иг Ошибка, %
0,05 0,055 10,0
0,05 0,050 0,00
0,05 0,050 0,00
0,05 0,055 10,0
0,10 ' 0,100 0,00
0,10 0,10 0,00
0,10 0,095 5,0
0,10 0,10 0.00
Краткие сообщения
Ю. В. Новиков, 3. Н. Болдина, Л. В. Кудрин ОПРЕДЕЛЕНИЕ ХЛОРОФОСА В ВОДЕ ВОДОЕМОВ
Московский НИИ гигиены им. Ф. Ф. Эрисмана
ннй унифицирован метод определения хлорофоса в поде, основанный на хроматографическом определении в тонком слое сорбента.
В результате выполненных исследований отработаны условия проведения анализа изучаемого вещества с использованием готовой пластинки силуфол. Предлагаемые приемы снижают трудоемкость способа и повышают воспроизводимость определения.
Поступила 03.02.87
УДК 614.777:547.422.22 + 628.191:547.422.22
Г. В. Толстопятова, В. И. Коркач, И. Р. Бариляк, А. П. Самойлов, О. В. Гудзь, Б. Н. Бычковский
ГИГИЕНИЧЕСКАЯ РЕГЛАМЕНТАЦИЯ ТРИ-, ТЕТРА-, И ПЕНТАЭТИЛЕНГЛИКОЛЕИ В ВОДЕ ВОДОЕМОВ
Киевский научно-исследовательский филиал ГОСНИИХЛОРПРОЕКТа
Литература
1. Методы определения микроколичеств пестицидов / Под ред. М. А. Клисенко. — М„ 1977.— С. 83—86; 3—9; 75— 80; 163—165.
2. Новиков Ю. В., Ласточкина К■ О.. Болдина 3. Н. // Методы определения вредных веществ в воде водоемов. — М., 1981, —С. 358—360.
Гликоли являются малотоксичными соединениями [1]. ЬЭ*) эти лен гликоля (ЭГ) при виутрижелудочном введении крысам составляет 5,5 г/кг, диэтиленгликоля (ДЭГ) — 14,8 г/кг, триэтнленгликоля (ТЭГ)—21,0 г/кг и тетраэти-ленгликоля (ТеЭГ) — 34 г/кг. Основным проявлением гли-колевых интоксикаций является почечная или печеночно-почечная недостаточность [2]. ПДК ЭГ и ДЭГ в воде водоемов установлены [3] на уровне 1 мг/л по санитарно-токсикологическому признаку вредности.
ТЭГ, ТеЭГ и пентаэтиленгликоль (ПЭГ) — жидкости желтоватого цвета, со слабым специфическим запахом, хорошо растворяются в воде и многих органических растворителях.
I В концентрациях до 500 мг/л эти соединения не влияют на органолептические свойства воды (запах, привкус, цветность, пенообразование).
В концентрациях 100 и 10 мг/л ТЭГ, ТеЭГ и ПЭГ повышают окисляемость воды и влияют на процессы аммонификации и нитрификации (повышается содержание азота аммонийного и тормозится накопление азота нитратов). Пороговая концентрация но общесанитарному признаку вредности установлена на уровне 1 мг/л.
ТЭ, ТеЭГ и ПЭГ — практически нетоксичные соединения, так как при введении мышам и крысам однократно максимально возможных доз (8000 и 20 000 мг/кг соответственно) гибели животных не наблюдалось. Морфологическая картина внутренних органов крыс в остром опыте при введении доз 5—20 г/кг свидетельствовала о влиянии изучаемых соединений на паренхиматозные органы: отмечено резкое набухание нефротелия извитых канальцев почек, вакуольная дистрофия и очаговый некробиоз гепа-> тоцитов, выраженное полнокровие всех внутренних органов.
ЬОм для морских свинок, установленная методом Дейх-мана и Ле Бланка для ТЭГ и ТеЭГ, составляет 18 750 мг/кг, для ПЭГ — 22 500 мг/кг.
Кумулятивные свойства не выражены. Кожно-резорб-тивным и аллергенным действием указанные соединения не обладают.
Общетоксическое действие веществ на организм животных оценивалось в условиях подострого опыта с введением 1000 мг/кг каждого в течение 20 дней. Доза была выбрана с учетом данных морфологических исследований в остром опыте как не вызывающая структурных нарушений во внутренних органах.
Опыт проведен на белых крысах-самках массой 160— 180 г (по 10 животных в группе).
Исследования проводились через 5, 10, 15 и 20 дней опыта. Результаты подострого эксперимента показали, что изученные соединения вызывали изменения функции печени, почек и ЦНС. Через 10 сут опыта отмечено увеличение содержания гемоглобина и эозинофилов в крови, повышение активности АЛТ сыворотки крови, снижение активности цитохром-с-оксидазы и щелочной фосфатазы
в почках, повышение суммационно-порогового показателя (СПП) при введении всех соединений. Кроме того, ТеЭГ и ПЭГ вызывали фазовые изменения активности ACT в сыворотке крови и повышение содержания гликогена в печени. ТеЭГ также повышал активность ACT и снижал активность АЛТ в печени. При анализе морфологической структуры внутренних органов животных выявлены дистрофические изменения и паренхиме почек и печени, а также полнокровие сосудов внутренних органов. При этом степень выраженности изменений несколько снижалась в ряду от ТЭГ к ПЭГ.
В хроническом эксперименте изучалось действие ТЭГ и ПЭГ. При выборе максимальной недействующей дозы (МИД) учитывались данные литературы по ЭГ и ДЭГ и расчетные данные: МНД = 0,88 lg LDM 3,54.
Расчетная МИД ТЭГ равна 1,83 мг/кг, ТеЭГ— 2,8 мг/кг, ЭГ—1,2 мг/кг, ДЭГ —1,42 мг/кг. Величина МИД, полученная в хроническом опыте для ЭГ и ДЭГ, составляет 0,05 мг/кг |3).
Учитывая близость расчетных величин МИД для этого ряда соединений, снижение острой токсичности в ряду от ЭГ к ПЭГ, в хроническом опыте мы испытывали следующие дозы: для ТЭГ —0,05, 0,5 и 5 мг/кг, для ПЭГ— 0,1, 1 и 10 мг/кг.
Опыт проводился на 240 белых крысах-самцах, распределенных на 4 группы, одна из которых служила контролем. Растворы соединений готовились на дистиллированной воде и вводились в течение 6 мес 5 раз в неделю.
При длительном введении в организм крыс ТЭГ в дозе 5 мг/кг выявлено изменение функционального состояния печени, о чем свидетельствовало снижение активности ACT, АЛТ, цитохром-с-оксидазы, а также содержания гликогена.
О влиянии ТЭГ на функциональное состояние почек свидетельствовало снижение активности щелочной фосфатазы в моче на 2-м и 5-м месяцах опыта и ее повышение на 3-м месяце, снижение активности ЛДГ и повышение активности щелочной фосфатазы.
Введение ТЭГ в дозе 0,5 мг/кг вызывало аналогичные по характеру, но менее выраженные изменения в организме животных, при этом по выбранным тестам значимых изменений по сравнению с контролем не обнаружено.
Длительное введение в организм ПЭГ в дозе 10 мг/кг вызывало изменение активности фагоцитоза, снижение активности ACT и АЛТ в печени, а также содержания гликогена. О влиянии ПЭГ на функцию почек свидетельствовало повышение диуреза на 1-м и 5-м месяцах опыта, повышение активности щелочной фосфатазы и снижение ЛДГ.
Доза ПЭГ 1 мг/кг была пороговой по влиянию на организм животных, 0,1 мг/кг — максимальной недействующей.
Анализ морфологических и гистохимических данных показал, что оба вещества в больших дозах оказывали
