CC BY
8
Литература 2. Руководство по гигиене водоснабжения / Черкинский
С. Н., Беляев Н. И., Гадович Р. Д. и др. — М., 1975.— 1. Рекомендации по обеззараживанию воды, дезинфекции С. 181.
подсобных помещений и санитарному режиму эксплуа- 3. СНиГ! П-76—78 «Спортивные сооружения».
тацИИ купально-плавательных бассейнов.—М., 1976. Поступила 24.10.86
УДК 613.68-07: [628.31:576.895.11:628.34
И. А. Романенко, 3. М. Шкавро, А. В. Пронина, А. В. Саяпин,
С. С. Маслов
ОБЕЗЗАРАЖИВАНИЕ СУДОВЫХ СТОЧНЫХ ВОД ОТ ЯИЦ
ГЕЛЬМИНТОВ
Институт медицинской паразитологии и тропической медицины им. Е. И. Марциновско-
го Минздрава СССР, Москва
В соответствии с Международной конвенцией по предотвращению загрязнения моря (1973 г.) морские суда должны быть оборудованы установками по очистке и обеззараживанию сточных вод. В связи с тем что сточные воды, помимо минеральных и органических загрязнений, содержат бактерии (103—10м микробных клеток в 1 л), а также яйца гельминтов [4], их обеззараживание является обязательным этапом любой технологии очистки [9].
Поиски способов обеззараживания хозяйственно-фекальных вод на судах предпринимались неоднократно. Предложения сводились в основном к применению 2,5— 5 % хлорной извести либо 10 % карболовой кислоты [2]. При нагревании стоков до 40 °С обезвреживающие свойства хлора можно увеличить в 3—4 раза [6].
Для выяснения действия температуры 45—60 °С на жизнеспособность яиц описторхисов проведена серия специальных опытов [7, 8]. Показано, что при температуре 40— 45 °С гибель яиц начинается через 90 мин после начала их прогрева. При 45 °С гибель яиц наступает через 45 мин, при 50 °С — через 20 мин, а при 60 °С — через 5 мин.
Параллельно проводились эксперименты для выяснения гельминтоцидного действия хлорной извести, карболовой кислоты и лизола в концентрациях 1—5—10 %. Полная гибель всех яиц описторхисов при действии хлорной извести в указанных концентрациях на чистую культуру достигалась через 3—10 мин, карболовой кислоты — через 30— 120 мин. лизола — через 90—180 мин.
Опыты, проведенные в лабораторных условиях, и натурные испытания показали, что прогрев сточных вод при температуре 55—60 °С в течение 10—12 ч гарантирует обеззараживание яиц гельминтов и возбудителей острых кишечных инфекций [5].
Наши исследования по изучению воздействия активного хлора в сочетании с повышенной температурой на яйца аскарид, власоглавов, лентеца широкого и описторхисов показали, что при температурной обработке стоков до 40 °С, дозах активного хлора 20—25—30 мг/л и экспозиции 30—60—90 мин погибают все яйца гельминтов, кроме яиц аскариды человека. В последнем случае количество жизнеспособных яиц в стоке зависело от дозы активного хлора, экспозиции и колебалось при дозе активного хлора 20—30 мг/л и экспозиции 30 мин от 47,2 до 56,1 %, при экспозиции 60 мин от 23,7 до 31,5 %, 90 мин от 10,9 до 18,6 %. Гибель всех яиц гельминтов при указанных режимах работы установки достигалась при экспозиции 120 мин. Прогрев стоков до 50 °С при указанных выше дозах активного хлора и экспозиции приводил к гибели всех яиц гельминтов, а при действии более высокой температуры (60°С) происходила их гибель без обработки стоков активным хлором [12].
По данным литературы, озон обладает овицидными свойствами в отношении яиц аскарид и власоглавов: полная гибель яиц этих видов гельминтов достигается при дозе озона от 209,4 до 357,6 мг/л и экспозиции 60— 180 мин [4]. Наши исследования [3] показали, что яйца лентеца широкого и описторхисов обладают значительно меньшей резистентностью к озону, чем яйца аскарид. Так,
озон в дозе 25 мг/л при времени контакта 40 мин обеспечивает полную гибель яиц лентеца широкого и описторхисов в сточной воде, в то время как яйца аскарид даже при дозе озона 30 мг/л и экспозиции 90 мин погибали в 36,3±2 % случаев.
Наиболее перспективным методом обеззараживания сточных вод морских судов является обработка их гидр-оксидом кальция. Этот реагент обладает не только обеззараживающими свойствами, но и одновременно может выполнять роль коагулянта (при наличии в сточных водах двухвалентных металлов) [10]. Обеззараживающее действие извести обусловлено щелочным характером среды (рН более 11,0). Ионы Са2+ в щелочной среде взаимодействуют с аминокислотами, содержащими карбоксильные группы, и переводят их в осадок. Этот процесс резко интенсифицируется в присутствии ионов магния в концентрации более 3 мг-экв/л. Для создания такой концентрации ионов магния в сточной воде к ним необходимо добавить морскую воду, что легко обеспечивается использованием забортной воды для смыва унитазов, мытья полов. Содержащиеся в морской воде бикарбонаты и хлориды магния реагируют с известью, образуя малорастворимые гидроксиды магния, оказывающие коагулирующее действие.
При использовании в качестве коагулянта продуктов гидролиза солей магния исключается необходимость в хранении на судне коагулянтов. В отличие от других коагулирующих реагентов при введении ионов магния и щелочи нет необходимости в строгой их дозировке: требуется только обеспечить рН более 11,0 и содержание ионов магния не менее 3 мг-экв/л. Воду, очищенную этим методом, можно сбрасывать за борт, так как ее высокая щелочность способствует протеканию процессов самоочищения в водоеме [1]. Скоагулированные загрязнения (шламы) отделяют от воды и перекачивают в другую емкость, не снижая их щелочность. В этой емкости шламы выдерживают 24 ч и сбрасывают за борт. На судах подогретую воду, полученную после охлаждения оборудования, следует использовать для обогрева емкости, в которой хранится шлам, что интенсифицирует процесс отмирания патогенной микрофлоры и яиц гельминтов [11].
Анализ данных литературы и результаты наших исследований позволили разработать рекомендации по созданию установок для обеззараживания сточных вод речных и морских судов.
Литература
1. Винберг Г. Г., Остапеня П. В., Сивко Т. Н. //Очистка сточных вод в биологических прудах.—М., 1957. — С. 38—43.
2. Дроздов В. //.//Мед. паразитол. — 1962. — № 3. — С. 323—326.
3. Канцан В. Н., Романенко Н. А., Козлова М. В. // Съезд эпидемиологов, микробиологов и паразитологов Азербайджана, 5-й: Материалы. — Баку, 1980. — С. 172—174.
4. Кебина В. Я., Чайкин И. ЯКонстантинов Ю. А. //
Научно-техническая конф. по использованию сточных вод в сельском хозяйстве: Материалы. — М., 1979, С. 12—14.
5. Романеико Н. А. Санитарная гельминтология. — М., 1982.
6. Романов И. В. // Всесоюзное о-во гельминтологов: Науч. конф.: Материалы. — М., 1964. — Ч. 2. — С. 91—97.
7. Сидоров Е. Г. //Материалы научных работ по вопросам гигиены водного транспорта (за 1964—1965 гг.).— М., 1966.— С. 87—88.
8. Сидоров Е. Г.// Здравоохр. Казахстана. — 1968.— № 1, —С. 11 — 13.
9. Средства очистки жидкостей на судах/Иванов И. А., Александров А. Т., Веселов Ю. С. и др. — Л., 1984.
10. Шкваро 3. II., Медведев М. И. //Сан. техника.— 1977. — № 7. —С. 98—100.
11. Шкавро 3. Н., Кульский Л. А., Медведев М. И. и др.//Химия и технол. воды.— 1983.—Т. 5, № 3.— С. 271—275.
12. Эльпинер «77. И., Розвал К. С., Константинов Ю. А. и др.//Гиг. и сан.— 1976. — № 1. —С. 19—22.
Поступила 21.11.86
УДК 614.876:546.799.4.02.239]-06: [615.285.7:547.2411.0991-07:616-008.949.5:546.799.4.02.239
Г. В. Халтурин, О. В. Кузьменко
МЕТАБОЛИЗМ ПЛУТОНИЯ-239 В ОРГАНИЗМЕ КРЫС ПРИ ВНУТРИМЫШЕЧНОМ ПОСТУПЛЕНИИ ЕГО В КОМПЛЕКСЕ
С ТРИБУТИЛФОСФАТОМ
%
Метаболизму 23УРи при поступлении его в организм в виде комплекса с трнбутилфосфатом (ТБФ) посвящены единичные публикации [1, 4, 5]. В работе [8] было пока-•зано, что через 30 дней после поступления раствора дан-. пого комплекса в н-додекане через колотые раны содержание Ри в скелете составило 10 %, а в печени — 0,2— 0,5 % от введенного количества. Но небольшие сроки исследования и количество подопытных животных не позволяют получить более полное представление о влиянии ТБФ на поступление и поведение 239Ри в организме.
В данной работе представлены результаты исследований распределения 239Ри в организме крыс при внутри-. -мышечном поступлении его в комплексе с ТБФ в сравнении с данными о воздействии нитрата плутония.
Исследования выполнены на 238 крысах-самках линии Вистар с исходной массой 140—160 г, разделенных на
• ¿ группы. Животным 1-й, контрольной, группы радионуклид вводили внутримышечно в виде азотнокислого раство-
.-,ра плутония рН 1,5. Крысы 2-й группы получали 2з9Ри в комплексе с ТБФ (в растворе 100 % ТБФ). Второй раствор •готовили путем экстракции плутония ТБФ из 4,5 М раствора НЫ03. Каждое животное получало однократно 37 кБк 239Ри. Растворы вводили в икроножную мышцу .левой конечности на глубину 5 мм шприцем с иглой и ограничителем. Крыс декапитировали под эфирным наркозом в следующие сроки: 4 и 30 мин, 1, 3, 6 ч, 1, 2, 4, .8, 16, 32, 64, 128, 256, 360, 512 сут. Для радиометрического анализа брали мышечную ткань из места введения, кровь, бедро (правое), печень, почки, надпочечники, яичии-мКи, головной мозг, мышцы. Кровь анализировали в сроки до.16.сут. Биоматериалы разлагали в концентрированной азотной кислоте с перекисью водорода на электроплитке
• или в автоклаве при температуре 210±10°С в течение 2 ч [7]. При расчетах учитывали, что кровь составляет 7,5 %, а жир — 11 % от массы тела [2]. Расчет содержания плутония в скелете проводили путем умножения содержания его в бедре на коэффициент 20. При низком содержании 239Ри в органах и тканях изотоп концентрировали путем соосаждения с фосфатом висмута [3|. Для сбора экскретов каждую крысу помещали в обменную клетку для раздельного сбора мочи и кала. Смывы с клеток присоединяли к моче. Для оценки влияния ТБФ на распределение плутония в организме крыс результаты исследования обрабатывали методом площадей [6] на ЭВМ «Наи-ри-К» и для каждого срока рассчитывали коэффициенты отклонения, равные отношению площадей, полученных в опытах с 239Ри — ТБФ, к площадям в опытах с нитратом 239Ри.
Результаты исследований показывают, что при внутримышечном введении в сочетании с ТБФ 2з9Ри обладает несколько большей транспортабельностью, чем плутоний, введенный в виде нитрата. Как видно из рис. 1, если
через 4 мин после введения нитрата плутония среднее содержание изотопа в крови было 0,03 %, то при введении комплекса ?з9Ри — ТБФ его содержание было в 4,5 раза выше. Максимальное содержание изотопа в крови отмечается на 1—4-е сутки после введения комплекса 239Ри — ТБФ (различие с контролем статистически достоверно).
239Ри депонируется преимущественно в скелете и в меньшей степени в печени, причем изотоп, введенный в виде комплекса с ТБФ, обладает большей подвижностью (рис. 2). Так, через 4 мин в скелете содержится 0,10± ±0,03 % от введенного количества, в то время как при введении нитрата плутония радионуклид обнаруживается лишь через 3 ч в количестве 0,047±0,004 %. В последующие сроки 239Ри, введенный в виде комплекса с ТБФ, значительно быстрее и в больших количествах откладывается в ;скелете. В печени, как.и в скелете, наблюдается постепенное накопление радионуклида. Максимальное содержание изотопа в печени отмечается на 16—256-е сутки при поступлении его в комплексе с ТБФ. Во всех остальных органах содержание 'плутония не превышало 0,05 % от введенного количества. Данные о выведении плутония с экскретами в первые 16 сут исследования представлены в табл:. 1.
Ш1
мин
3 6, ,/ г 4 в 18,
-у---V-'
4 сут
Рис. 1. Содержание 2зэри в КрОВИ ПрИ внутримышечном введении нитрата плутония и комплекса 2зори (¡у) —ТБФ.
По оси абсцисс — время после введения; по оси ординат — содержание элемента (в % от введенной дозы). / — нитрат плутония;
2 — 239Ри _ ТБф>
