CC BY
535
Uk
?QGI»IMCr)lR ЛА^ЗИТОЛЧГЯЧЕСКИЙ ЖУРНАЛ
B13SSKM JD333!M!11 135 Г'ПЯЕЗТГ-CtY
Том 39 Выпуск 1/2017
ЭКОЛОГИЯ И БИОЛОГИЯ ПАРАЗИТОВ
Поступила в редакцию: 07.07.2015 УДК 619:616.995.1
Принята в печать: 10.03.2017 DOI: 10.17513/пр.254
Для цитирования:
Долбин Д. А., Хайруллин Р. З. Устойчивость яиц гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды (обзор литературы) // Российский паразитологический журнал. - М., 2017. - Т. 39. - Вып. 1. - С. 14-19
For citation:
Dolbin D. A., Khayrullin R. Z. Resistance of helminth eggs to unfavorable physical, chemical and biological factors of the environment. (Literature review) // Russian Journal of Parasitology, 2017, V. 39, Iss. 1, pp. 14-19
Устойчивость яиц гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды
(обзор литературы)
Долбин Д. А., Хайруллин Р. З.
Казанский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии Роспотребнадзора, 420015, г. Казань, ул. Б. Красная, 67, e-mail: [email protected].
Реферат
Цель исследования - сделать анализ литературных источников по устойчивости яиц некоторых видов гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды.
Материалы и методы. Проанализированы литературные источники по изучению устойчивости яиц некоторых видов гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды.
Результаты и обсуждение. За 2 с погибают в воде яйца Parascaris equorum и Ascaris suum, Ascaridia galli, A. lumbricoides при температуре соответственно 70-80 °С, 55, 65 °С. Высушивание яиц P equorum при температуре 30-36 °С приводит их к гибели через 3-5 сут. При температуре 70 °С яйца P. equorum и аска-ридий погибают через 15 мин. Низкие температуры воздуха по-разному действуют на яйца гельминтов. При отрицательных температурах приостанавливаются обменные процессы и развитие яиц P. equorum. Наиболее часто для уничтожения яиц гельминтов используют концентрированную серную кислоту, соляную, азотную, карболовую кислоты, креолин, хлорную известь, дихлорэтан, крезол и т. д. Для 100%-ного ингибирова-ния развития яиц аскарид можно применять 3 и 5%-ные растворы дезинфицирующих препаратов «Биор-Н», «Велторган» и «Амоцид».
С целью уничтожения яиц свиной аскариды был предложен метод очистки сточных вод с применением фитопланктона Clorella vulgaris и Scenedesmys obliguus. Очищенная в биопрудах сточная жидкость полностью очищается от яиц гельминтов. Установлено губительное влияние на яйца гельминтов ризосферы бархатцев, календулы, ячменя, проса. Различные простейшие организмы также оказывают влияние на выживаемость яиц гельминтов. Так, Amoeba verrucosa способна захватывать яйца аскарид и свободные личинки, вышедшие из яиц. Хищные инфузории Bursaria truncatula, Stylonichia mytilus и Stentor sp. поглощают яйца аскарид, корацидиев широкого лентеца и мирацидиев печеночной двуустки и полностью переваривают их в течение 24-72 ч. В элиминации яиц гельминтов принимают участие олигохеты, ресничные черви, водные насекомые, ракообразные и моллюски.
Ключевые слова: яйца, гельминты, устойчивость, элиминация, факторы окружающей среды, методы борьбы.
Качественная очистка помещений от навоза, помета обеспечивает удаление основной массы инвазионного начала. Однако накапливающиеся постепенно яйца, личинки гельминтов, ооцисты и цисты простейших на полах, стенах, возле кормушек способны длительное время сохранять жизнеспособность, достигая инвазионной стадии и вызывая заражение животных.
Несмотря на необходимость проведения указанного мероприятия, чаще всего им пренебрегают. В значительной степени это обусловлено отсутствием или недостатком дезинвазионных средств. Вместе с тем в литературе сформулирована следующая концепция: основу профилактики паразитозов животных составляют интегрированные мероприятия, включающие применение биологических, технологических, экологических, санитарных, а также иммунобиологических, генетических и регулирующих методов при минимальном использовании химических средств [3].
\
ЭДЗЗМЯСКИМ НЯгаЗИТОЛОПЯЧЕСКМН ЖУ!
ЕИЗЕКМ ¿0Щ2ЯЯ1 THF
//S
Volume SS Issue 1/2017
Разработка средств дезинвазии основывается на знании параметров резистентности возбудителей к естественным и искусственным физико-химическим и биологическим факторам. Известно, что выживаемость возбудителей паразитозов зависит как от интенсивности воздействия, так и от способности биологической защиты эктогенных стадий паразитов, связанной со структурой оболочек. Разные возбудители неодинаково относятся к тем или иным средствам воздействия. Литературные данные свидетельствуют о том, что яйца большинства видов нематод, трематод, цестод и акантоцефал имеют слаборазвитую защитную систему оболочек. Исключение составляют яйца аскаридат [4].
Касаясь структуры сферы, окружающей зародыш, многие авторы называют общую оболочку яйца скорлупой. В части ее строения большинство сходится во мнении, что у яиц нематод - представителей аскаридат, трихоцефалят и стронгилят имеется четыре оболочки [5]. Это подтверждено на электронно-микроскопическом уровне на примере яиц аскаридий [6]. Более ранними исследованиями у яиц аскаридат отмечено три основных оболочки: эпителиальная, глянцевитая и волокнистая. Из них последняя - липоидная, растворимая эфиром, хлороформом, кислотами жирного ряда. Она пропускает воду, но задерживает соли и другие вещества.
Установлено сходство строения скорлупы яиц аскаридат и трихоцефалят. У тех и других плотная средняя оболочка, которая защищает зародыш от неблагоприятных факторов, и она намного мощнее таковой у яиц стронгилят. Это обстоятельство определяет наибольшую устойчивость яиц указанных видов гельминтов к факторам среды и позволяет использовать их в качестве тест-объектов при разработке средств дезинвазии.
Сведения по резистентности возбудителей паразитарных болезней, находящихся на стадиях яйца, необходимы при изыскании и разработке средств дезинвазии. Значительный интерес представляет сравнение устойчивости разных видов нематод с устойчивостью Neoascaris vitulorum. В этой связи представляют интерес данные о влиянии температуры, высушивания, физических и химических средств на яйца и личинки некоторых видов гельминтов.
Яйца нематод (Parascaris equorum, Ascaris suum) погибают в воде при температуре 60 °С за 25-30 с, а при 70-80 °С - за 2 с, яйца Ascaridia galli в воде при температуре 45 °С - за 2 ч, при 55 °С - за 2 с, яйца Ascaris lumbricoides при температуре 50 °С - за 5 мин, при 55-60 °С - за 5 с, а при температуре 65 °С - за 2 с. Высушивание яиц P equorum при температуре 30-36 °С приводит их к гибели через 3-5 сут. При температуре 45 °С они погибают через 24 ч, при 50 °С - за 3-6 ч, при 55 °С - за 1 ч, при 60 °С - за 30 мин, при 70 °С - за 15 мин. Яйца аскаридий при температуре 40 °С погибают через 15 сут, при 42 °С - за 8 сут, при 44 °С - за 3,5 сут, при 47 °С - за 6 ч, при 55 °С - за 1 ч, при 60-62 °С - за 20 мин, при 70 °С - за 15 мин. Личинки стронгилят лошадей и овец 1-2-дневного возраста гибнут при кратковременном высушивании, а 5-7-суточные - выживают несколько месяцев [4].
Низкие температуры воздуха по-разному действуют на яйца и личинки гельминтов. При отрицательных температурах приостанавливаются обменные процессы и развитие яиц P. equorum, которые выживают при этой температуре около 5 лет. При температуре от 0 до минус 36 °С яйца P. equorum и стронгилят остаются жизнеспособными в течение месяца.
Эффективными для дезинвазии оказались УФ-лучи. Установлено, что они действуют на протоплазму клетки, повышая ее вязкость, повреждают ядро, вызывают мутагенное действие и уродливость личинок при высоких дозах. Эффективны на чистых культурах и в опытах с жидкими средами также ионизирующие излучения и гамма-лучи. Они угнетают эмбриогенез, вызывают гибель зародыша в яйцах гельминтов. Однако на практике для дезинвазии они по существу не применяются из-за сложности выполнения [7].
Внешняя форма яиц N. vitulorum на первый взгляд мало отличается от таковых других видов аскаридат. Яйца имеют круглую, иногда овальную форму и достигают в длину 0,075-0,09 и в ширину 0,065-0,075 мм. Наружная оболочка имеет ячеистую структуру наподобие яиц Toxocara canis. При сравнении их с яйцами P. equorum или Toxascaris leonina бросается в глаза разница в структуре внутренней волокнистой оболочки. В то время как у яиц P. equorum и T. leonina волокнистая оболочка развита очень мощно и хорошо заметна под микроскопом, у N. vitulorum она развита очень слабо и заметна лишь при большом увеличении.
Сравнительная слабость развития покровных оболочек яйца обеспечивает меньшую устойчивость неоаскарид к неблагоприятным факторам окружающей среды, в частности к высыханию и действию прямых солнечных лучей, по сравнению с другими аскаридатами. Чувствительность к высоким температурам у N. vitulorum в целом не ниже чем у других видов аскарид. При температуре 40 °С яйца паразита погибали через 48 ч, при 50 °С - через 30 мин, при 60 °С - через 5 мин, при 65 °С - через 1 мин [8].
Одним из основных методов дезинвазии помещений, средств ухода за животными в практике животноводства, а также в области медицины, является химический. Об этом свидетельствуют многочисленные исследования, которые начали интенсивно проводиться с первого десятилетия прошлого столетия. Затем эти исследования стали менее интенсивными и в последние годы очень малочисленными.
Так как средства дезинвазии должны отвечать довольно жестким требованиям (невысокие концентрации, сравнительно небольшое время экспозиции, низкая токсичность и экологическая безопасность),
BÏÏSSKM jcïïïïni î? »ЯЗйеПШдаГ
■
Том 39 туск 1/2017
в настоящий момент Департаментом ветеринарии МСХиП РФ рекомендовано к применению всего 6 средств дезинвазии: едкий натрий, едкий калий, ксилонафт, сернокарболовая смесь, однохлористый йод и хлорная известь. Это придает актуальность поиску новых дезинвазионных средств.
Следует отметить, что результаты оценки эффективности средств дезинвазии у разных авторов сильно колеблются, что связано с различными критериями эффективности и условиями эксперимента. Концентрированная серная кислота вызывает гибель яиц P. equorum при экспозиции 24 ч, соляная и азотная кислоты - при 120-часовой экспозиции, 2-3%-ная серная кислота через 1-3 ч инкубации была неэффективна, 1-2 % NaOH вызывал задержку развития, так же как и неочищенная карболовая кислота, 1-5%-ный креолин и 4%-ная хлорная известь. Дихлорэтан через 30 ч инкубирования вызывал гибель яиц лошадиной аскариды. Крезол в концентрации 4 % приводил к гибели уже через 2 ч инкубации [4]. Карболовая кислота в концентрации 3-5 % и 5%-ный креолин вызывали гибель яиц P. equorum через 48 ч [9]. На яйца T. canis 2-3%-ный креолин, 50%-ная хлорная известь не оказывают угнетающего эффекта при экспозиции 1-3 ч, а 3%-ная неочищенная карболовая кислота при той же экспозиции приводит к задержке развития. Абсолютно губительны для яиц T. canis негашеная известь и горячая карболовая кислота [4]. Яйца A. galli показывают в опытах сравнительно меньшую устойчивость к химическим реагентам: 5%-ная хлорная известь, 3%-ный креолин, 3 % NaOH вызывали гибель через 24 ч инкубации, 5 % ксилонафт вызывал гибель 95% яиц через 2 ч, а совместно с 0,5 % сероуглеродом - 100%-ную гибель яиц. Гибель яиц вызывали также негашеная известь и 4%-ный карбатион через 24 и 48 ч соответственно [6]. В отношении A. suum формалин в концентрации 4-10 % оказался не эффективным, так же как и едкий натрий 10 % при экспозиции менее суток; при использовании горячего (60 °С) едкого натрия наблюдали частичную гибель яиц. При этом горячая вода (60 °С) сама по себе приводит к гибели 40-50 % яиц A. suum при кратковременном воздействии [5].
Особо следует отметить, что использование горячего и даже холодного 10 % NaOH до сих пор рекомендуется как эффективное профилактическое средство [10].
Производные карбаминовой, изоциановой и карболовой кислоты оказались очень эффективными (карбатион 5 %, крезиловый эфир 1 %, нафталин и метилкарбонат 2-3 %, фенилизотионат 5 %, трихлор-фенол, ацетилфенол, трихлорацетат): они вызывали гибель от 89 до 100 % яиц. Для полного 100%-ного ингибирования развития яиц аскарид можно применять 3 и 5%-ные растворы дезинфицирующих препаратов «Биор-Н», «Велторган» и «Амоцид» при экспозиции 1-3 сут для различных объектов (почвы, нечистот, осадков сточных вод, ТБО) [11].
В целях профилактики неоаскаридозной инвазии рекомендуется в неблагополучных хозяйствах организовывать изолированное содержание стельных коров и телят до 4-5 мес. и биотермическое обеззараживание навоза с последующей дезинвазией помещений, а также профилактическая дегельминтизация молодняка крупного рогатого скота начиная с месячного возраста [12].
Биологические агенты обладают большой избирательностью по сравнению с химическими реагентами, имеют меньшее вредоносное значение для других организмов-сочленов водных биоценозов, легко вписываются в технологические циклы [13]. Поэтому введение их в экологическую систему не вызывает значительного нарушения баланса. Для борьбы с биогельминтами можно применять методы экологической профилактики - подавление численности промежуточных хозяев. Это может быть осушение пойменных водоемов, засыпка и выравнивание поймы, что способствует резкому снижению численности моллюсков в затопляемых поймах. Очевидно, что такие радикальные меры в большинстве случаев ведут к резкому нарушению природного баланса.
Элиминационной способностью в отношении яиц свиной аскариды обладают различные водоросли [14]. Был предложен метод очистки сточных вод с применением фитопланктона (накопительная культура Clorella vulgaris и Scenedesmys obliguus). Очищенная в биопрудах сточная жидкость полностью очищается от яиц гельминтов и частично от кишечной палочки. Наряду с фитопланктоном в процессе самоочищения участвуют коловратки, различные моллюски Anodonta, Unio [15].
На яйца гельминтов губительное влияние оказывает корневая система различных растений. Под влиянием корневой системы редиса и полыни разрушается 50-60 % зародышей аскарид в яйцах. Ово-цидную активность проявляет ризосфера бархатцев, календулы, ячменя, проса; ризосфера викоовсяной смеси угнетает развитие яиц аскарид, сохраняя их жизнеспособность [16].
На выживаемость яиц гельминтов оказывают влияние различные простейшие организмы. Так, Amoeba verrucosa способна захватывать яйца аскарид и свободные личинки, вышедшие из яиц [14]. Хищные инфузории Bursaria truncatula, Stylonichia mytilus и Stentor sp. поглощают яйца аскарид, кора-цидиев широкого лентеца и мирацидиев печеночной двуустки и полностью переваривают их в течение 24-72 ч, возможно потому, что те вещества, которые выделяют яйца аскариды в окружающую среду, вызывают у них отрицательную трофическую реакцию.
Не все виды животных, даже в пределах одной группы, проявляют овоэлиминационную активность, как, например, равноресничные инфузории таких видов, как Colpoda cuculus, Lacrymaria olor. В элиминации яиц гельминтов принимают участие виды олигохет, ресничные черви, водные насекомые
\
ЭДЗЗМЯСКИМ ^РЙ^ЧЭЯЧТ*'-^'!'!«? ЖТ!
еизекзэ язтан»! иг гдаяззттяэтг
Issue 1/2017
[17]. Часть яиц, прошедших через кишечник червей, разрушается, другая часть проходит через кишечник без заметных изменений. Хищные олигохеты семейства Naididae элиминируют личинки филоме-троидеса, олигохеты Ch. limnaei, Aelosoma sp., Potamothris bedoti вызывают частичное разрушение яиц аскариды и широкого лентеца. Личинки ручейников Phryganea grandis поздней генерации поедают яйца аскарид в большей степени, чем личинки первой генерации.
Эффективными элиминаторами яиц гельминтов оказались водные насекомые с грызущим и колющим аппаратом. Насекомые используют яйца гельминтов в качестве корма: одни заглатывают и переваривают яйца, другие прокалывают скорлупу яиц и высасывают их содержимое. Первый способ элиминации присущ ручейникам и поденкам, второй - водяным клопам Corizidae [18]. В очищении среды от яиц аскарид также принимают участие различные ракообразные и моллюски. Установлено, что моллюски-фитофаги родов Lymnaea, Bradybaena, наземные Oxychilus translucidus служили дессиминаторами яиц гельминтов, в частности аскарид [19]. Моллюски-детритофаги Valvata piscinalis, Bithynia tentaculata, Planorbis sp. значительно повреждают протеолитическими ферментами своего пищеварительного тракта белковую оболочку яиц акарид, снижая тем самым их жизнеспособность.
Анализ литературных источников, комплексная оценка устойчивости яиц гельминтов к неблагоприятным физическим, химическим и биологическим факторам окружающей среды позволят в дальнейшем разработать эффективные противогельминтные препараты, а также средства дезинвазии.
Литература
1. Долбин Д. А., Тюрин Ю. А., Хайруллин Р З. Получение и иммунохимические свойства комплексного аскаридозного антигена. // Вестн. Казан. технол. ун-та. - 2014. - Т. 17, № 13. - С. 266-269.
2. Осипов П. Н., Осипова Л. Н. О валеологической культуре будущего инженера. // Вестн. Казан. технол. ун-та. - 2011. - № 5. - С. 247-251.
3. Черепанов А. А. Концепция противопаразитарных мероприятий для решения научных и практических задач. // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. - 1999. - Т. 35. - С. 159-161.
4. Черепанов А. А., Кумбов П. К. Дезинвазия животноводческих помещений: состояние вопроса и перспективы исследований. // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. - 1997. - Т. 33. - С. 164-185.
5. Наумычева М. И. Стойкость яиц нематод к химическим веществам и физическим факторам: автореф. дис. ... канд. биол. наук. - М., 1954. - С. 8-12.
6. Симонов А. П. Средства и методы дезинвазии объектов внешней среды при гельминтозах: дисс. ... д-ра вет. наук. - М.,1976. - 300 с.
7. Лысенко А. А. Эпизоотология и профилактика при аскаридозе кур: автореф. дис. ... канд. вет наук. - М., 1939. - 16 с.
8. Давтян Э. А. К изучению биологии неоаскарид крупного рогатого скота. // Тр. АрмНИВИ. - 1942. -Т. IV. - C. 93-137.
9. Величкин П. А. Устойчивость яиц и личинок стронгилид (делафондий, альфортий) и трихонема-тид к обычным дезинфекторам. // Тр. Ростов. обл. н.-и. вет. опытн. станции. - 1952. - Вып. 10. - С. 77-86.
10. Абуладзе К. И. Паразитология и инвазионные болезни сельскохозяйственных животных. - М.: Агропромиздат, 1990. - С. 167-169.
11. Мирзоева Р. К. Дезинвазия объектов окружающей среды на территории Республики Таджикистан. // Мед. паразитол. и паразит. бол. - 2007. - № 2. - С. 35-36.
12. Балабекян Ц. И. Терапия при неоаскаридозе телят буйволят и некоторые данные по эпизоотологии и профилактике этого заболевания: автореф. дис. ... канд. биол. наук. - М., 1956. - С. 12-16.
13. Шигин А. А. Биоценологические аспекты профилактики гельминтозов. // «Гельминтология сегодня: проблемы и перспективы»: тез. докл. науч. конф. - М., 1989. - С. 181-182.
14. Костомарова-Никитина Л. П. Влияние Amoeba verrucosa на яйца аскариды. // Мед. паразитол. - 1967. - № 2. - C. 181-184.
15. Герасимов И. П. Научные основы современного мониторинга окружающей среды. // Изв. АН СССР Сер. географ. - 1975. - Т. 3. - С. 13-24.
16. Николаев С. М. О влиянии корневых выделений растений на развитие яиц свиной аскариды. // Зоол. журнал. - 1968. - Т. LVII, Вып. 12. - С. 1860-1861.
17. Супряга В. Г. К вопросу о роли пресноводных беспозвоночных в эпидемиологии тениаринхоза. // Проблемы паразитологии. - 1972. - Ч. 2. - С. 306-307.
18. Илюшина Т. Л. Гидробионты как факторы, регулирующие численность популяции гельминтов рыб. // Новое в теории и практике борьбы с гельминтозами. - М.,1987. - Вып. 37. - С. 68-76.
19. Аситинская С. Е. К вопросу о роли моллюсков-детритофагов в очищении среды от яиц возбудителя аскаридоза. // Науч. тр. - Омск, 1977. -Т. 128. - С. 31-34.
References
1. Dolbin D. A., Tyurin Y. A., Khayrullin R. Z. Preparation and immunochemical properties of complex ascariasis antigen. Vestn. Kazan. tehnol. un-ta [Bulletin of Kazan Technological University], 2014, no. 13. pp. 266-269. (In Russian)
/
nrttKi] JDtBEBl 135 VASSSSTSOSSS
■
Том 39 туск 1/2017
2. Osipov P. N., Osipova L. N. On valueological culture of the future engineer. Vestn. Kazan. tehnol. un-ta. [Bulletin of Kazan Technological University], 2011, no. 5, pp. 247-251. (In Russian)
3. Cherepanov A. A. The concept of anti-parasitic measures to solve scientific and practical problems. Tr. Vseros. in-ta gel'mintol. [Proc. All-Russ. Inst. of Helminthol. ], 1999, vol. 35, pp. 159-161. (In Russian)
4. Cherepanov A. A., Kumbov P. K. Disinfection of livestock buildings: status of the question and prospects of research. Tr. Vseros. in-ta gel'mintol. [Proc. All-Russ. Inst. of Helminthol. ], 1997, vol. 33, pp. 164-185. (In Russian)
5. Naumycheva M. I. Stoykost'yaits nematodk himicheskim veshhestvam i fizicheskim faktoram. Avtoref. dis. ... kand. biol. nauk [Resistance of nematode eggs to chemicals and physical factors. Abst. diss. PhD biol. sci.]. M., 1954, pp. 8-12. (In Russian)
6. Simonov A. P. Sredstva i metody dezinvazii ob'ektov vneshney sredy pri gel'mintozah. Diss... d-ra vet. nauk [Means and methods of disinfection of environmental objects at helminthiases. Doct. diss. vet. sci.]. M., 1976. 300 p. (In Russian)
7. Lysenko A. A. Epizootologiya i profilaktika pri askaridoze kur. Avtoref. diss. kand. vet. nauk [Epizootology and prevention of ascariasis in chickens. Abst. diss. PhD vet. sci.]. M., 1939. 16 p. (In Russian)
8. Davtyan E. A. On the study of biology of neoascarides in cattle. Tr. ArmNIVI [Proc. of Armenian Sci. Res. Vet. Inst.], 1942, vol. IV. pp. 93-137. (In Russian)
9. Vyalichkin P. A. Resistance of eggs and strongylid larvae (Delafondia, Alfortia) and trichonematides to standard disinfectants. Tr. Rostov. obl. n.-i. vet. opytn. stantsii [Proc. of the Rostov Reg. Res. Vet. Exp. Station], 1952, vol.10, pp. 77-86. (In Russian)
10. Abuladze K. I. Parazitologiya i invazionnye bolezni sel'skohozyaystvennyh zhivotnyh [Parasitology and invasive diseases in farm animals]. M., Agropromizdat, 1990. pp. 167-169. (In Russian)
11. Mirzoyeva R. K. Disinfection of environmental objects on the territory of the Republic of Tajikistan. Med. parazitol. i parazit. Bol. [Med. parasitol. and paras. dis.], 2007, no. 2, pp. 35-36. (In Russian)
12. Balabekyan C. I. Terapiya pri neoaskaridoze telyat buyvolyat i nekotorye dannye po epizootologii i profilaktike etogo zabolevaniya. Avtoref. dis. ... kand. biol. nauk [Treatment of neoascariasis in buffalo calves and some data on the epizootiology and prevention of this disease. Abst. diss. PhD biol. sci.]. M, 1956, pp. 12-16. (In Russian)
13. Shigin A. A. Biocenological aspects of prevention of helminthiasis. Gel'mintologiya segodnya: problemy i perspektivy»: tez. dokl. nauch. konf. [Helminthology today: problems and perspectives. Proc. sci. conf.]. M., 1989, pp.181-182. (In Russian)
14. Kostomarova-Nikitina L. P. Influence of Amoeba verrucosa on roundworm eggs. Med. parazitol. [Medical Parasitol.],1967, no.2, pp. 181-184. (In Russian)
15. Gerasimov I. P. Scientific basis of the modern environmental monitoring. Izv. AN SSSR. Ser. geograf. [Bulletin of the Academy of Sciences of the USSR. Ser. «Geography»], 1975, vol. 3, pp.13-24. (In Russian)
16. Nikolaev S. M. On the effect of root exudates of plants on the development of Ascaris suum eggs. Zoologicheskiy zhurnal. [J. of Zool.], 1968, vol. LVII, no.12, pp.1860-1861. (In Russian)
17. Supryaga V. G. On the role of freshwater invertebrates in epidemiology of taeniarhynchosis. Problemy parazitologii. [Problems of Parasitology], 1972. P. 2, pp. 306-307. (In Russian)
18. Ilyushina T. L. Hydrobionts as factors regulating the size of the fish helminths population. Novoe v teorii i praktike bor'by s gel'mintozami. [New in the theory and practice of the struggle against helminthiases], 1987, i. 37. pp. 68-76. (In Russian)
19. Asitinskaya S. E. On the role of mollusks-detritophages in the cleansing of environment from ascariasis eggs. Nauch. tr. [Sci. proc.]. Omsk, 1977, vol. 128, pp. 31-34. (In Russian)
\
^O^HIGKIM !№ra3!IT0n0rHH!eK!lll Mr
/V!S
Volume 39 Issue 1/2017
Russian Journal of Parasitology, 2017, V. 39, Iss. 1
DOI: 10.17513/np.254
Received: 07.07.2015
Accepted: 10.03.2017
RESISTANCE OF HELMINTH EGGS TO UNFAVORABLE PHYSICAL, CHEMICAL AND BIOLOGICAL FACTORS OF THE ENVIRONMENT (LITERATURE REVIEW)
Dolbin D. A., Khayrullin R. Z.
Kazan Scientific-Research Institute for Epidemiology and Microbiology of Rospotrebnadzor, 420015, Kazan, 67, Bolshaya Krasnaya St., e-mail: [email protected].
Abstract
Objective of research: The purpose of this paper is the analysis of literature sources on the resistance of some helminth species to unfavorable physical, chemical and biological factors of the environment.
Materials and methods: Literature sources that describe the resistance of some species of helminth eggs to unfavorable physical, chemical and biological environmental factors were analyzed.
Results and discussion: Nematode eggs (Parascaris equorum and Ascaris suum) die in water at the temperature of 60 °C for 25-30 sec., at 70-80 °C - for 2 sec.; Ascaridia galli eggs at 45 °C - for 2 hr., at 55 °C - for 2 sec.; Ascaris lumbricoides eggs at 50 °C - for 5 min., at 55-60 °C - for 5 sec. and at 65 °C - for 2 sec.
Drying of P. equorum eggs at temperature of 30-36 °C leads to their death after 3-5 days. P. equorum and Ascaris eggs die after 15 min. at temperature of 70 °C. Low air temperatures have different effects on helminth eggs. At temperatures below zero, the metabolic processes and development of P. equorum eggs stop. Concentrated sulfuric, chlorohydric, nitric, carbolic acids as well as creolin, bleach powder, dichloroethane, cresol are mostly used for elimination of helminth eggs.
3 and 5% solutions of disinfectants «Bior-N», «Veltorgan» and «Amocide» can be used for a 100% inhibition of development of ascaris eggs. For the elimination of Ascaris suum eggs, a method of wastewater treatment with the use of phytoplankton Clorella vulgaris and Scenedesmys obliguus has been suggested. Wastewater treated in bioponds is completely cleaned from helminth eggs. Harmful effects of rhizosphere of marigold, pot marigold, barley and millet on helminth eggs were determined. Various protozoa also affect the viability of helminth eggs. So, Amoeba verrucosa can intake ascaris eggs and free larvae released from eggs. Predatory infusoria Bursaria truncatula, Stylonichia mytilus and Stentor sp. intake and ascaris eggs, coracidia of Pseudophyllidea and miracidia of Fasciola hepatica, and completely digest them within 24-72 hrs. Oligochaeta, Bedford's flatworms (Pseudobiceros bedfordi), aquatic insects, Crustacea and mollusks take part in the elimination of helminth eggs.
Keywords: eggs, helminths, resistance, elimination, environmental factors, methods of struggle.
© 2017 The Author(s). Published by All-Russian Scientific Research Institute of Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plants named after K.I. Skryabin. This is an open access article under the Agreement of 02.07.2014 (Russian Science Citation Index (RSCI), http://elibrary.ru/projects/citation/cit_index. asp) and the Agreement of 12.06.2014 (CA-BI.org/Human Sciences section: http://www.cabi.org/Uploads/ CABI/publishing/fulltext-products/cabi-fulltext-material-from-journals-by-subject-area.pdf).
