CC BY
7
100
МАТЕРИАЛЫ V НАЦИОНАЛЬНОГО КОНГРЕССА ПО РЕГЕНЕРАТИВНОЙ МЕДИЦИНЕ
потенциал по сравнению с ККМ, кроме того, их можно использовать аутологично [1,2].
К сожалению, до сих пор нет четкого понимания, какие факторы влияют на качество ПК. Нет и четких протоколов по транспортировке и обработке материала. Даже по поводу максимально допустимого времени от получения ПК до ее обработки нет единого мнения [3]. Так, сообщества NetCord и американская ассоциация банков крови (AABB) вообще не упоминают, в какой период кровь должна быть заморожена. FDA, FACT и US state of NY Dept. of Health устанавливают лимит в 48 часов. Для выработки стандартного протокола, позволяющего получить образцы максимального качества, требуется продолжать исследование этих вопросов.
Мы проанализировали 63 образца пуповинной крови, поступившей в коммерческий банк стволовых клеток «Транс-Технологии» (Санкт-Петербург) за 2021 и 2022 годы. Оценивали объем полученного образца, количество лейкоцитов и ГСК. Изучали наличие связи этих параметров с возрастом матери, полом и весом ребенка, сроком и типом родов (осложненные/неослож-ненные, естественные роды/кесарево сечение), а также времени от момента забора ПК до обработки образца.
Обнаружена сильная корреляция (r=0,802, p <0,001) между объемом полученной ПК и количеством лейкоцитов в 1 мкл банкированного образца и корреляция средней силы (rho=0,54, p <0,001) между объемом образца и количеством ГСК в 1 мкл образца. Не обнаружено связи между количеством лейкоцитов и ГСК в 1 мкл образца, возрастом матери и сроком родов. Также не выявлено статистически значимой связи этих параметров с наличием осложнений при родах, путем родоразреше-ния (ЕР ил КС) и полом ребенка. Корреляция количества лейкоцитов и ГСК с весом ребенка при рождении была статистически значимой, но слабой (rho = 0,291, р =
0.022.и rho = 0,291, р = 0,022, соответственно).
Все проанализированные образцы замораживались в течение 24 часов после забора ПК. В пределах этого временного отрезка корреляции между количеством лейкоцитов и ГСК в 1 мкл банкированного образца и временем, прошедшим от забора ПК до ее обработки не обнаружено (rho = 0,122, р = 0,343).
Литература:
1. Михайлова В.А. Инновации и технологии в биомедицине.
Сборник материалов. 2019. C. 141.
2. Ballen K., Gluckman E., Broxmeyer H.E. Blood. 2013. Vol. 122.
№ 4. P.491.
3. Strobel J., Brenner L., Zimmerman R. Clin. Lab. 2015. Vol. 61.
№ 10. P. 1453.
MUSE — МЕТОД СРОЧНОЙ EX-VIVO МИКРОСКОПИИ
А.М. Калиниченко, Г.М. Денисенко,
А.А. Земеров, А.Л. Файзуллин, П.С. Тимашев
Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова, Москва, Россия
e-mail: kalinichenko_a_m@student.sechenov.ru
Ключевые слова: цифровая патология, имплантация, микроскопия с возбуждением поверхности ультрафиолетом, MUSE, ex vivo микроскопия, трансляционная медицина, биофотоника.
Традиционная гистология основана на физическом секционировании замороженных или фиксированных
формалином и залитых в парафин (FFPE) фрагментов ткани. Поскольку метод FFPE является весьма долгим и трудоемким, есть необходимость в более быстром и простом методе ex-vivo микроскопии. MUSE — метод микроскопии, который работает на принципе возбуждения поверхности ткани ультрафиолетом [1]. Отличительной особенностью метода является то, что он не нуждается в стандартной гистологической подготовке, поскольку УФ проникает на несколько микрометров, а спектр возбуждения флуоресцентного красителя лежит в видимом спектре. Такой подход позволяет получить изображение, сопоставимое по информативности со стандартными методами микроскопии [2].
Благодаря проделанной нами работе, был составлен протокол окраски и подобран набор флуоресцентных красителей (растворы Hoehcst и Нильского красного), которые позволяют в высоком качестве идентифицировать гистологические структуры ткани, не требуют специального оборудования, фиксации и занимают около 5 минут.
Поскольку результаты обладают высокой диагностической и прогностической значимостью, возможности традиционных патоморфологических исследований можно существенно расширить. Данный метод диагностики так же прим. м для оценки имплантируемых конструкций и срочной гистологической диагностики процесса регенерации тканей.
Литература:
1. Fereidouni F. et al. Nature Biomedical Engineering. 2017. № 12
(1). C. 957-966.
2. Qorbani A. et al.Journal of Cutaneous Pathology. 2018. № 7
(45). C. 498-503.
ДИНАМИКА ДЕГРАДАЦИИ РЕЦЕПТОРА ЭФР В МЕЗЕНХИМНЫХ СТРОМАЛЬНЫХ КЛЕТКАХ ЧЕЛОВЕКА
Р.С. Каменцева1, М.В. Харченко1, Г.В. Габдрахманова2, М.А. Котов2, Е.С. Корнилова1, 3
1 Институт цитологии РАН, Санкт-Петербург, Россия
2 Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого, Санкт-Петербург, Россия
3 Санкт-Петербургский государственный университет, Санкт-Петербург, Россия
e-mail: rkamentseva@yandex.ru
Ключевые слова: рецептор эпидермального фактора роста, эндометриальные мезенхимные стромальные клетки, эндо-цитоз, деградация.
Считается, что пролиферация и дифференцировка мезенхимных стромальных клеток (МСК) находятся под контролем специфических для них сигнальных систем. Мы обнаружили, что МСК различного происхождения (из эндометрия, пульпы зуба, Вартонова студня и др.) экспрессируют рецептор эпидермального фактора роста (рЭФР) на высоком уровне, сравнимом с опухолевыми клетками эпителиального происхождения. При этом функционирование этой сигнальной системы в МСК практически не исследовано.
Рецептор ЭФР относится к семейству тирозин-ки-назных (ТК) рецепторов ErbB и имеет 7 лигандов [1]. Общепризнана его роль в регуляции пролиферации, диф-ференцировки и апоптоза соматических клеток, а также участие в эмбриогенезе. В соответствии с принятой
Гены & Клетки XVII, №3, 2022
