CC BY
4
сой 100—300 мг, рыбы — 50—100 мг, картофеля и риса — 100—500 мг помещают в фарфоровый тигель, который вводят в печь термовосстановления, прогретую до 900 °С, на 5 мин, и проводят те же операции. Чувствительность анализа составляет 0,01 мкг/л крови (верхний предел нормального содержания ртути в крови человека— 50 мкг/л), 0,5 мкг/кг волос. Для картофеля, риса и рыбы чувствительность равна . 0,5 мкг/кг (временные гигиенические нормативы Т содержания ртути 1 в рыбе составляют 0,5 мг/кг, в хлебе — 0,01 мг/кг, в овощах — 0,02 мг/кг). Точность определения — 5—10 %.
Для построения градуировочных графиков стандартные растворы ртути (0,01—20 нг/мл) в зависимости от анализируемой пробы наливают в тигли и поочередно помещают в печь, прогретую до необходимой температуры. Процесс измерения аналогичен описанному выше для проб. Градуировочную кривую строят в координатах «показания прибора в относительных единицах— концентрация ртути». При проведении анализа методом «холодного пара» и при использовании реактивов-консервантов необходимо ставить холостой опыт на используемые реактивы.
Разработанный атомно-абсорбционный метод определения ртути широко апробирован при анализе крови и мочи рабочих различных производств и в других гигиенических исследованиях. Установлено, что содержание ртути в донных отложениях загрязненных рек достигает 160 мг/кг и закономерно уменьшается вниз по течению реки по мере удаления от источника » загрязнения (на расстоянии 25 км концентрации ™ ртути не превышают 5 мг/кг). Вверх по течению реки от источника выделения содержание ртути находится в пределах фоновых значений — 0,03 мг/кг. Концентрация ртути в мышечной ткани рыб, отловленных в загрязненной реке, достоверно превышает концентрацию ртути в мясе рыб, отловленных в «чистых» водоемах
1 Временные гигиенические нормативы содержания некоторых химических элементов в основных пищевых продуктах, № 2450—80, утвержденные 30/1Х 1981 г.
(0,34—0,86 мг/кг по сравнению с 0,03— 0,18 мг/кг).
Таким образом, разработан эффективный и доступный атомно-абсорбционный метод определения ртути в объектах окружающей среды (в воздухе, воде, почве и др.) и бноматериалах. Определения осуществлены беспламенным способом, что значительно (в сотни — тысячи раз) повысило чувствительность анализа. Применение термической возгонки ртути позволило исключить необходимость минерализации проб, в 5—7 раз сокращая длительность анализа. Добавление разработанных консервантов существенно повысило точность анализа. Использование различных операций физико-химической подготовки проб позволяет определять содержание ртути как в атомарной форме, так и в виде ионов или в составе органических соединений. Минимально измеряемое количество ртути в пробах составляет 0,01 нг (Ю-5 мкг). Столь высокая чувствительность определения вполне достаточна для экспрессного контроля за содержанием ртути в различных объектах окружающей среды. Разработанный метод целесообразно широко внедрять в гигиеническую практику.
Литература. Беце А. А., Гробовская Л. И., Тихонова Н. В. — В кн.: Геохимия окружающей среды. М., 1976. с. 31.
Гадаскина И. Д., Гадаскина Н. Д.. Филов В. А. Определение промышленных неорганических ядов в организме. Л., 1975, с. 68.
Грановский Э. И. — Труды НИИ краевой патологии. Алма-Ата. 1980. т. 32, с. 153.
Дмитриев М. Т. и др. — В кн.: Современные проблемы гигиенической регламентации и контроля качества окружающей среды. М., 1981, с. 111.
Ершова К. П., Горячева Н. А., Комарова И. С. — В кн.: Физико-химические методы исследования окружающей среды. М„ 1980. с. 31.
Fernander J. В.. Snider L. Т., Rietz E. G. — Analyt. Chem., 1951, v. 23, p. 899.
Johnasson I. R.. Boule R. W. — Canad. Mining Metallurg. Bull., 1972, v. 65, p. 32.
Overman R. F. — Analyt. Chem., 1971, v. 43, p. 616.
Pappas A. ].. Powell H B. — Ibid., 1967, v. 39, p. 579.
Pollock N. E. — Talanta, 1964, v. 11, p. 154.
Поступила 09.02.83
УДК 615.47.03:615.9.076.9
В. М. Пазынич, И. А. Мазур, Б. Е. Мандриченко, В. И. Чинчевич
МИКРОДОЗАТОР ГАЗОВ ДЛЯ ЗАТРАВКИ ЛАБОРАТОРНЫХ
ЖИВОТНЫХ
Запорожский медицинский институт
* В токсикологических исследованиях и экспе-^ риментальных работах по гигиеническому регламентированию вредных веществ в воздухе широко применяется ингаляционная затравка лабораторных животных. Для этой цели используются различные устройства и приспособления для дозирования вредных газов и паров в за-
травочных камерах (В. А. Рязанов и со'авт.; А. М. Петров; И. В. Саноцкий и Г. Г. Максимов, и др.). Однако большинство из них непригодны, когда необходимо работать с высокотоксичпы-ми газами, а также газами, которые при смешивании с воздухом в повышенных концентрациях взрыво- и пожароопасны. Поэтому использовать
Мнкродозатор газов для затравки лабораторных животных. / — сосуд: 7 - фильтр; 3— стеклянная трубка с вытянутым капилляром: 4—соединительные трубки: Л — реакционный сосуд; 6 - во-дяноП затвор; 7 — соединительные о робки.
такие газы в баллонах под давлением невозможно без сложной системы обеспечения безопасности.
В связи с изложенным для проведения ингаляционной затравки лабораторных животных такими высокоопасными газами, как арсин (мышьяковистый водород) и фосфин (фосфористый водород) необходимо разработать специ-•альное устройство, позволяющее получать и дозировать заданные микроконцентрации этих газов в затравочные камеры. ААикродозатор выполнен из стеклянного сосуда, фильтра, соединенного трубками с капилляром, и реакционного сосуда с водяные затвором (см. рисунок).
На рисунке изображен общий вкд устройства, состоящего из сосуда / (например, стеклянного) вместимостью 2—10 л, фильтра 2 (например, стеклянного, керамического), стеклянной трубки диаметром (5—8, мм с вытянутым капилляром 3, соединительных трубок 4 (например, хлорвиниловых, резиновых), реакционного сосуда 5 с впаянным водяным затвором 6, соединительных пробок 7 (например, резиновых, притертых стеклянных). Используя сосуды различного объема (от 2 до 10 л), подающие рабочий раствор через капилляр 3, отрегулированный на вытекание рабочего раствора от 200 до 300 мл в сутки, можно дозировать подачу газа в течение длительного времени (от 7 до 20 сут). Для удаления из реакционной колбы (сосуда) 5 отработанной жидкости на дне этого сосуда впаивается водяной затвор 6. Замену в реакционном сосуде 5 реагента проводят по мере его расходования через отверстие в сосуде 5 путем открытия пробки 7.
Дозатор работает следующим образом. Например, животных затравливают арсином в течение месяца при его содержании в воздухе за-
травочной камеры 0,3 мг/м3 и обмене воздуха в камере 50 л/мин. Готовят 9 л 0,003 % раствора оксида мышьяка в 2—4 н. HCl при каталичс-ском добавлении дихлорида олова, калия йоди-да, никеля хлорида (3. Марченко). Рабочий раствор помещают в сосуд 1. Капилляр 3 устанавливают на уровне жидкости в стеклянном фильтре 2 и регулируют на вытекание рабочего раствора 300 мл в сутки. В реакционный сосуд 5 помещают 50—100 г гранулированного цинка, не содержащего мышьяка. При выкапывании ф рабочего раствора через капилляр 3 в реакционном сосуде 5 образуется арсин, который поступает в затравочную камеру.
Для затравки животных фосфнном в течение месяца при его содержании в воздухе затравочной камеры 0,2 мг/м3 и обмене воздуха в камере 50 л/мин готовят 9 л 0,0048 % раствора натрия фосфорноватистокислого (NaH2P02-H20) в 2 н. HCl. Рабочий раствор помещают в сосуд / и далее поступают, как описано для арсина.
Содержание арсина и фосфина в камерах определяли ежедневно по методу, основанному на спектрофотометрическом определении в видимой области окрашенного в синий цвет раствора молибденового синего, полученного с молибденовым реагентом (3. Марченко).
Микродозатор газов для затравки лабораторных животных с целью обоснования ориентироч-ных безопасных уровней воздействия и ПДК арсина и фосфина в атмосферном воздухе апробирован в Запорожском медицинском институте. Затравку животных (крыс) проводили в течение 70 сут. Заданная концентрация арсина в первой камере равнялась 0,03 мг/м3, во вто- Ц рой — 0,1 мг/м3, в третьей — 0,3. мг/м3. Получено' вполне хорошее совпадение реальных концентраций с расчетными: в первой камере — 0,029±0,0009 мг/м3, во второй — 0,0978± ±0,002 мг/м3, в третьей — 0,3006±0.000fi мг/м3. При заданных концентрациях фосфина в камерах 0,05, 0,2, 1,5 и 8 мг/м3 фактические концентрации его были равны соответственно 0,05± ±0,001, 0,2±0,007, 1,5±0,02 и 8±0,11 мг/м3.
Таким образом, испытанный микродозатор газов прост по конструкции, надежен в работе, обеспечивает высокую точность концентраций дозируемых газов и безопасен. Его можно использовать для образования и подачи любого газа, если реакция между рабочим раствором и реагентом происходит практически количественно или с одинаковой скоростью.
Литература. Марченко 3. Фотометрическое определение элементов, М., 1971. Петров А. М. — Гиг. и сан.. 1968. № 1, с. 81—82. Рязанов В. А.. Буштуева К. А., Новиков Ю. В. — В кн.: Щ Предельно допустимые концентрации атмосферных загрязнений. М.. 1957, вып. 3. с. 117—151. Саноцкий И. В.. Максимов Г. Г. — В кн.; Методы определения токсичности и опасности химических вещестж. М„ 1970, с. 69—87.
Поступила 26.10.83
