CC BY
6
Таблица 2
Изменение основных показателей, характеризующих состояие организма белых крыс (М+т)
Срок обследования, Животные, получавшие
Показатель дистиллирован- исходную вы- кислотную основную нейтральную
нед ную воду (контроль) тяжку фракцию фракцию фракцию
Диурез, мг/сут 2 8.91+0,85 6,2+0,81 Р<0,05 — —
Содержание в моче: 12 15,77+2,02 — — 8,88+1,66
белка, мг% Р<0,02
ХЛОрИДОВ, МГ/МЛ 2 2,35+0,19 — — — 1,6+0,15 Р<0.01
4 0,58+0,07 — — 1,09+0,1 0,83+0,03
Р<0,01 Р<0,01
8 1,54+0.016 1.14+0,08 — — —
Р<0.01
16 0,6+0,02 0,94+0,13 ЯС0.001 — — 0.99+0,09 Р<(),01
Число лейкоиитов п крови . тыс'мкл 8 11,83+0,6 8,27+0,46 Р<0,01 — — 9,04+0,44 Р<0,01
12 11,04±0,44 — — 9,36+0,64 Р<0,05 —
Количество общего белка в сыворотке 16 8,07+0,12 — — 8,7+0,11 —
крови, % Увеличение коэффициента Р<0.01
массы пече- 16 2,7+0,05 3.7±0,06 3,29+0,11 3,2+0,05 3,27+0,05
ни. % Р<0,001 Р<0.001 PcO.OOl Р<0,001
Примечание. Колебания остальных показателей не выходили за пределы физиологической нормы.
сутствием ДФГ, карбонильных соединений и ионов цинка, а токсичность нейтральной фракции — вероятно, карбонильными соединениями. Токсичность кислотной фракции не была обнаружена, и лишь после умерщвления животных установлено увеличение коэффициента массы печени. Очевидно, это влияние комплексных соединений цинка.
Настоящее исследование является первой работой в данном направлении. Необходимо продолжить ее с применением других токсичных образцов резин.
Выводы
1. Впервые схема фракционирования на целлюлозных ионитах использована при изучении миграции микропримесей из резин в водную контактирующую среду.
2. В водных вытяжках наряду с ионной формой^ (21,5%) обнаружены комплексные соединения цин- " ка (78,5%) и карбонильные соединения.
3. Получены данные о несколько большей токсичности основной фракции по сравнению с нейтральной и кислотной, что, вероятно, связано с комбинированным действием ДФГ, цинка и карбонильных соединений.
ЛИТЕРАТУРА
Инструкция по санитарно-химическому исследованию резин и изделий из них, предназначенных для контакта с пищевыми продуктами (МЗ СССР), М., 1976.
Методы определения токсичности и опасности химических веществ. (Токсикометрия). Под ред. И. В. Санецкого. М., 1970.
Сироткина и. е., ааршал Г. М., Лурье 10. Ю- и др. —
Ж. аналнт. химии, 1974, № 8, с. 1626—1632. Токсикология ингредиентов резиновых смесей, резиновых и латексных изделий. М., 1974, с. 58—60.
Поступила 17/1X 1979 г.
УДК 614.7<1-02):[в32.95:633.511:51-7
Канд. мед. наук В. X. Хасанов
МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ САНИТАРНО-ЗАЩИТНЫХ ЗОН В СВЯЗИ С ПРИМЕНЕНИЕМ ПЕСТИЦИДОВ В ХЛОПКОВОДСТВЕ
Узбекский научно-исследовательский институт санитарии, гигиены и профзаболеваний
Ташкент
Интегрированная защита хлопчатника от вредителей и болезней в качестве основных компонентов включает хлор- и фосфорорганнческие препараты,
применение которых запрещено в радиусе до 1 км от населенных мест и до 300 м от поверхностных водоемов. На хлопковых нолях, расположенных в
пределах санитарно-защитной зоны (СЗЗ), разрешается использовать только малотоксичные препараты с помощью наземной аппаратуры («Санитарные правила по хранению, транспортировке и применению пестицидов в сельском хозяйстве». М., 1974).
Для определения площади СЗЗ гигиенистам и
Г санитарным врачам приходится рассматривать множество материалов по планировке села (схемы и • проекты районной планировки, генеральные планы сельских поселков, схемы организации и использования земельного фонда хозяйств и др.). При этом возникают определенные трудности и затрачивается много времени. В частности, при определении площади 1 км СЗЗ вокруг поселка, имеющего форму прямоугольника и занимающего 117 га (длина 1300 м, ширина 900 м), приходится провести следующее вычисление: (1000+1300+1000) X X (1000+900+1000)—1 170 000=8 400 000 м2, или 840 г. Значительно облегчает расчеты по определению площади территорий, находящихся в пределах или вне СЗЗ, применение специальных формул, приведенных ниже. Для этого необходимо установить по масштабным картам землепользования или другим графическим материалам планировки земель в хлопководческих хозяйствах протяженность в длину и ширину объекта, требующего СЗЗ.
1. Если обе стороны периметра объекта (село) равны, площадь СЗЗ вычисляется по формуле:
х=(К+Ус)*-с, (1)
Ы где л: — площадь СЗЗ (в га); К равен 20 при 1 км г СЗЗ, 10 при 500 м СЗЗ и б при 300 м СЗЗ; с — площадь территории объекта (в га).
Пример. В колхозе строится поселок площадью 100 га, который имеет протяженность в длину и ширину 1 км. Сколько га земель будут находиться в пределах 1 км СЗЗ?
(20+"^П)0)г— 100=800.
2. Если защищаемый объект (село) имеет конфигурацию прямоугольника, площадь СЗЗ вычисляется по формуле:
+
(2)
900\ /
: = (20+кюН:
20 +
1300 100
117 = 840.
К
[(«+£)•(«+АН
+
(3)
Пример. В хлопководческом колхозе проектируется 2 жилых поселка — центральный на 176 га (длина 1600 м, ширина 1100 м) и вспомогательный на 84 га (длина 1200 м, ширина 700 м). Сколько га земель будут находиться в пределах 1 км СЗЗ?
+
Г/™ 700\ 1200 \ „1
[( 0 + Тоо)'( +~~ню")~~ ]=
+ 1720.
где а — ширина объекта (в м); Ь — длина объекта (в м).
Пример. В колхозе строится поселок на площади 117 га, который имеет длину 1300 м и ширину 900 м. Сколько га земель будут находиться в пределах 1 км СЗЗ?
3. Если на территории хозяйства расположено несколько объектов (село, ферма), требующих СЗЗ, площадь этих зон определяется по формуле:
4. Получив эти данные, можно определить земельный фонд колхоза, расположенного вне СЗЗ, по формуле:
П = А — 2 д. (4)
где П — площадь земель, расположенных вне СЗЗ (в га); А — земельный фонд колхоза.
В нашем примере 3 при 8000 га земельного фонда колхоза вне зоны 1 км санитарного ограничения по применению пестицидов будет находиться 6280 га (8000—1720 = 6280). Следовательно, в этом колхозе на 21,5% территории землепользования запрещены авиаобработки и использование хлороргани-ческих соединений, высокотоксичных фосфорорга-нических соединений и бактериальных препаратов (дендробациллина), что следует учитывать при составлении планов борьбы с вредителями хлопчатника.
В рассмотренных более 200 схемах и картах землепользования и генеральных планах сельских поселков все участки (карты) поливных земель, территории перспективных поселков имеют форму прямоугольника, в связи с чем почти не возникали затруднения в применении указанных выше методов определения площади СЗЗ. Обычно обработка хлопковых полей сельскохозяйственными машинами (вспашка, посев, химизация, уборка) проводится по прямой линии — вдоль и поперек поливных карт, что препятствует исключению из СЗЗ земель, расположенных вне этой зоны по углам прямоугольника — объекта (село). Поэтому в формулы определения площади СЗЗ не внесены поправки, исключающие из этой зоны 21,5 га по 4 углам объекта, всего 86 га при 1 км СЗЗ. При наличии в натуре возможности для обработки пестицидами без охвата запрещенных территорий (при площади одной поливной карты менее 25 га) указанные площади можно не включать в СЗЗ. В существующих колхозах такая возможность имеется (4,6 га в среднем — одна поливная карта), однако она отсутствует в большинстве хлопководческих совхозов, особенно в зоне освоения новых земель, где площадь одной поливной карты превышает 30— 40 га.
В хлопководческих районах подлежат к обеспечению СЗЗ селитебные, производственные и рекреационные территории, продовольственные куль-
туры, поверхностные водоемы и др. При проведении санитарного надзора целесообразно составлять картограммы, содержащие сведения о площади хлопковых полей, находящихся в пределах СЗЗ, а так-
же о планах применения пестицидов в этой зоне и в целом по хозяйству. Все это помогает совершенствовать контроль за применением пестицидов в хлопководстве.
Поступила 2/Х 1979 г.
УДК 614.77-078:576.851.49.07
Г. В. Меренюк, Л. С. Усатая
КОЛИЧЕСТВЕННЫЙ МЕТОД ОПРЕДЕЛЕНИЯ САЛЬМОНЕЛЛ В ПОЧВЕ
Молдавский научно-исследовательскнй институт гигиены и эпидемиологии, Кишинев
Проведенные в лаборатории опыты свидетельствуют о возможности количественного учета содержания энтеропатогенных бактерий в почве. В качестве основы предлагаемого количественного метода учета сальмонелл в почве взят известный способ определения наиболее вероятного числа клеток в инокулуме, пищевых продуктах, воде, основанный на посеве определенных объемов или навесок в жидкие среды накопления, инкубации посевов, высеве из каждого посева на плотные дифференциальные диагностические питательные среды, идентификации выделенных культур, определении количества и соотношения положительных посевов. В качестве прототипа был выбран способ определения наиболее вероятного числа (НВЧ) клеток в инокулуме, в частности использована трехрядная схема, предложенная Мае Сгас1у и обоснованная I. Нозктэ, которая вошла в ГОСТ 17.1.03-77 «Правила выбора и оценки качества источников хозяйственно-питьевого водоснабжения» для определения индекса кишечных палочек в воде. Схема предусматривает посев трех объемов (10, 1 и 0,1 мл, исследование 33,3 мл) в трех повторностях и установление НВЧ в пределах от 3 до 1100 клеток в 100 мл. ГОСТ предусматривает посев 100, 10 и 1 (333) мл или 10, I и 0,1 (33,3) и даже 1, 0,1 и 0,01 (3,33) мл воды с соответствующими пересчетами на 1 л. В наших исследованиях мы придерживались этого же принципа, производя посев почвы в тех же весовых количествах — вместо 10 мл — 10 г и т. д., т. е. исследовались навески почвы, равные 33,3 и 3,33.
Пробы почвы в количестве 100 г хорошо перемешиваются. В стерильные флаконы из каждой пробы отвешивают 4 навески по 10 г, в 3 из которых добавляется жидкая питательная среда в количестве 100 мл и тщательно взбалтывается в течение 15 мин с целью десорбции клеток микроорганизмов. В 4-й флакон до 100 мл добавляется стерильная водопроводная вода и также шутеллируется 15 мин. После этого производится посев почвенной болтушки по 10 мл в 3 флаконах, содержащих 50 мл среды накопления (посев 1 г почвы), по 1 мл в 3 пробирках с 9 мл стерильной водопроводной воды. Из последней пробирки производится посев по 1 мл в 3 пробирках с 9 мл питательной среды (посев
0,01 г почвы). Посевы инкубируются при 37ЭС. Через 18—20 ч инкубации из всех флаконов и пробирок производится высев на плотные дифференциально-диагностические питательные среды. Чашки инкубируются в течение 18—20 ч (чашки с вис-мут-сульфит агаром 48 ч) при температуре 37°С. После просмотра чашек подозрительные колонии отвиваются на среде Олкеницкого с последующей идентификацией по общепринятой методике (определение серологических и биохимических свойств). Опыты поставлены с 3 видами сальмонелл — Sal т. typhimurium, Salm. enteritidis и Salm. paratyphi В на средах Мюллера и магниевой.
Первый этап работы заключался в проверке идентичности распределения сальмонелл как в инокулуме, так и в почве, в определении возможности количественного учета их содержания по1| выбранной схеме исследования (33,3). Поставлена серия опытов (82 пробы почвы) с искусственно зараженной Salm typhimurium стерильной почвой. Средние дозы заражения колебались от 4 до 833 клеток на 100 г почвы. Анализ полученных данных показывает, что даже на уровне единичных клеток на 100 г почвы 45% исследованных образцов оказались положительными. При увеличении доз заражения до нескольких десятков и более клеток все изученные образцы были положительными. Это свидетельствует о высокой чувствительности методики исследования. Параллельно с этим удалось учесть от 2 до 497 клеток сальмонелл на 100 г почвы. Процент учтенных клеток колебался от 50 до 131 (разница между числом внесенных и учтенных клеток несущественна). Эти данные позволяют считать, что закономерности распределения клеток сальмонелл в почве подчиняются закономерностям распределения клеток в инокулуме. Применение соответствующей схемы посева и расчетная таблица позволяют определять количественное содержание клеток сальмонелл в почве в интервале от 3 до 1100 клеток на 100 г почвы. Однако анализ фактических данных каждого анализа показал, что в подавляющем большинстве исследованных^ проб зарегистрировано 16 вариантов соотношения f положительных навесок. При анализе каждого вида соотношения положительных навесок выявлено, что между величинами отдельных соотно-
