CC BY
7
ления и на изменении цвета вытяжки из жиров при добавлении метиленового синего и-краски Тильманса в зависимости от содержания окисленных веществ.
При проведении настоящей работы мы преследовали цель проверить и оценить методику качественного определения содержания окисленных веществ с помощью метиленового синего и краски Тильманса и соответственно определить возможность и эффективность применения этой методики в условиях любой санэпидстанции. Для этого было проведено 60 исследований гретого фритюрного жира, полученного из различных районов области, с помощью цветной реакции.
Методика реакций заключается в следующем. В пробирку помещают 3 мл расплавленного жира, приливают 7 мл 2% спиртового раствора едкого кали. Пробирку закрывают корковой (не резиновой) пробкой и энергично встряхивают в течение 1/2 мин. После разделения жидкостей верхний слой спиртово-щелочной вытяжки фильтруют через бумажный фильтр в колбочку. Для проведения реакции пипеткой берут 1 мл фильтрата, помещают в пробирку и добавляют 5 капель 0,01% водного раствора метиленового синего. Содержимое пробирки встряхивают и оставляют на 5 мин. При наличии в исследуемом фритюре менее 1% окисленных веществ цвет жидкости в пробирке становится розовым, более 1% — желто-коричневым. При добавлении в пробирку 2 капель краски Тильманса (0,02%) в первом случае раствор становится отчетливо синего цвета, во втором (при содержании окисленных веществ более 1%) — зеленым.
С сильно перегретыми жирами, потерявшими товарный вид, следует проводить цветную реакцию только с метиленовым синим.
Параллельно проведено количественное определение окисленных веществ с помощью колориметрического метода, предложенного М. Я. Бренц.
Выводы
1. Цветная экспрессная реакция позволяет уверенно определять качество фритюр-ных жиров.
2. Эта методика из-за простоты и доступности может быть широко использована лабораториями всех санэпидстанций для повседневного контроля качества фритюрного жира.
ЛИТЕРАТУРА. Бренц М. Я- Вопр. питания, 1969, № 1, с. 70.
Поступила 4/1 1973 г_
Краткие сообщения
УДК 614.777:[632.954:631.542.25
Ю. У. Хасанов, Р. А. Ахмедова
МАТЕРИАЛЫ К ОБОСНОВАНИЮ ПРЕДЕЛЬНО ДОПУСТИМОЙ КОНЦЕНТРАЦИИ БУТИФОСА В ВОДОЕМАХ
Узбекский научно-исследовательский институт санитарии, гигиены и профзаболеваний (Ташкент), Ташкентский институт усовершенствования врачей
Бутифос (трибутилтритиофосфат) представляет собой легко подвижную жидкость от серо-желтого до коричневого цвета с очень резким неприятным запахом. Температура кипения 151°, летучесть 0,001 мг/л. Препарат нерастворим в воде, но хорошо растворим в органических растворителях и липоидах. Он выпускается промышленностью в виде концентрата эмульсии на ОП-7 и раствора в дизельном топливе с содержанием 70% действующего начала. При токсиколого-гигиенических исследованиях мы использовали 70% масляный раствор бутифоса. Все данные переведены в пересчете на 100%.
Нормирование фосфорорганических пестицидов в водоемах в большинстве случаев производится по органолептическому признаку, в связи с чем при установлении пороговых концентраций этому признаку было уделено особое внимание.
Судя по результатам исследований, пороговая концентрация бутифоса по влиянию на запах интенсивностью 1 балл равна 0,009± 0,00046 мг/л, а по влиянию на привкус — 0,0003± 0,00013 мг!л. Концентрация практического порога запаха равна 0,0152± 0,00063 мг/л, практического порога привкуса — 0,00046± 0,0003 мг/л.
Стабильность бутифоса в воде изучали в модельных водоемах, где создавали концентрацию препарата 0,3 и 3 мг/л. Динамическое определение бутифоса в воде модельных во-
доемов показало, что он относится к малостабильным веществам. Так, при исходной концентрации препарата 0,3 мг/л через 3 суток в воде модельных водоемов он не обнаруживался, а при концентрации 3 мг]л полностью разрушался в воде модельных водоемов через 5 суток.
С целью изучения влияния бутифоса на санитарный режим водоемов в течение 20 дней в динамике через каждые 3—5 дней изучали биохимическую потребность кислорода (БПК), количество сапрофитной микрофлоры, содержание растворенного кислорода и процессы аммонификации и нитрификации воды. При концентрации бутифоса, равной 0,03 мг/л, БПК опытной пробы в период наблюдения почти не отличался от контроля. Бутифос в концентрации 0,3 мг/л в конце опыта вызывал увеличение БПК на 10—12% (Р < 0,05). При концентрации препарата 3 мг/л БПК увеличивалось на 35% (Р < 0,05). Следовательно, пороговая концентрация бутифоса по влиянию на БПК составляет 0,3 мг1л.
При концентрации бутифоса 0,3 мг/л содержание сапрофитной микрофлоры и воде модельных водоемов не отличалось от контроля. Препарат в количестве 0,3 и 3 мг/л вызывал незначительное увеличение количества сапрофитной микрофлоры.
Все испытанные концентрации бутифоса не оказали существенного влияния на процесс минерализации воды модельных водоемов. Таким образом, пороговая концентрация бутифоса по влиянию на санитарный режим водоемов равна 0,3 мг/л.
Для установления токсичности вещества на различные виды лабораторных животных мы поставили опыты на белых мышах, крысах, морских свинках и кроликах при однократном введении препарата в желудочно-кишечный тракт. Наиболее чувствительными к бутифосу оказались морские свинки. Так, ЬО^, для них составляла 140 (120-Г-160) мг/кг\ 1ЛЭМ для белых мышей равнялась 179 (158-^200) мг/кг, для белых крыс 217 (164-5-270) мг/кг и для кроликов — 242 (216-^268) мг/кг. Бутифос обладает сильно выраженным резорбтив-но-токсическим действием. Кожно-оральный коэффициент (ЬЭ^ на кожу 97,5мг/кг, внутрижелудочно — 242 мг/кг) для кроликов составляет 0,4. Местнораздражающее действие препарата на кожу и слизистую оболочку глаз выражено слабо.
При изучении кумулятивных свойств бутифоса путем многократного введения его в желудочно-кишечный тракт установлено, что дефолиант обладает слабо выраженными кумулятивными свойствами и степень их выраженности зависит от дробности вводимой дозы. Так, при введении препарата в желудок крысам в дозе Ч ь (43,4 мг/кг) 4 из
6 крыс погибли в течение 7—10 дней, получив от 2,6 до 18,4 1-О60. К концу опыта (120-му дню) выжили 2 крысы, получавшие по 20,8 ЬО^,. Коэффициент кумуляции составляет 15,4. Крысы, получавшие бутифос в дозе х/10 (21,7 мг/кг) и V^ (10,8 мг/кг) выжили
в течение 4 месяцец, после суммарного введения им соответственно 10,4 и 5,2
В эксперименте на животных была определена также активность холинэстеразы в крови (сыворотка и эритроциты). Исследовали, кроме того, некоторые биохимические показатели, характеризующие функцию печени. У крыс, получавших бутифос в дозе1/10 ЬОм,. в конце 1-го месяца опыта выделение гиппуровой кислоты с мочой возросло на 20% (Р < 0,05), а активность холинэстеразы цельной крови была угнетена на 70% (Р < 0,05). На 120-й день опыта у подопытных животных на фоне резкого угнетения холинэстеразы (до 80%) отмечено снижение выделения гиппуровой кислоты на 52%. У животных при введении бутифоса в дозе Чю 1-Ом на 30-й и 50-й дни опыта уровень выделения гиппуровой кислоты не отличался от контроля, но активность холинэстеразы крови была угнетена на 34—64% (Р < 0,05). На 120-й день опыта в моче подопытных животных количество выделений гиппуровой кислоты уменьшилось на 49% (Р < 0,05). Уменьшение выделения гиппуровой кислоты с мочой, по-видимому, связано с развитием токсического гепатита под влиянием бутифоса. Установлено, что при длительном воздействии бутифоса на организм животных наиболее выраженными являются изменения в белковообразовательной функции печени. Об этом свидетельствуют повышение мутности тимоловой пробы на 40— 50% (Р < 0,05) и сдвиги реакции Вельтмана вправо.
При изучении углеводной функции печени обнаружено снижение содержания сахара на 18—24% (Р < 0,05). После 4-месячного перорального введения бутифоса проводили нагрузочную пробу с галактозой. Полученная сахарная кривая дала возможность проследить за процессом усвоения галактозы клетками печени. У подопытных животных отмечался высокий уровень сахара в крови в течение 4 часов после нагрузки галактозой. У животных контрольной группы сахарная кривая имела обычный вид.
Пероральное введение животным бутифоса в дозе 1/10 и 1/20 1^0и, вызывало достоверное увеличение активности глутамико-аланиновой трансаминазы (АЛТ) на 25—30%. Активность глутамико-аспарагиновой трансаминазы (АСТ) снизилась в меньшей степени, т. е. на 15—18%. Поэтому соотношение АСТ и АЛТ (коэффициент де Ритиса) был ниже 1. Для токсического гепатита характерно увеличение активности АЛТ и уменьшение коэффициента де Ритиса ниже 1. Надо полагать, что наблюдаемое нами повышение активности трансаминаз сыворотки крови при многократном введении бутифоса обусловлено поступлением указанных ферментов из некрозных эпителиальных клеток.
Учитывая слабо выраженные кумулятивные свойства бутифоса и большой разрыв между пороговой дозой хронического токсикологического эксперимента и пороговой концентрацией по влиянию препарата на привкус воды (около 1 000 000 раз), можно принять предельно допустимую концентрацию вещества в водоемах на уровне 0,0003 мг/л по орга-нолептическому показателю вредности.
Поступила 1/ГХ 1972 г.
