CC BY
46
Кулясов Пётр Александрович, кандидат ветеринарных наук, доцент Халгаева Кермен Эрдниевна, кандидат сельскохозяйственных наук Тюрбеев Цеден Бадмаевич, кандидат сельскохозяйственных наук, доцент Болаев Валерий Канурович, кандидат сельскохозяйственных наук, доцент Чавлинов Джангар Зулаевич, магистрант Ходжаев Виктор Юрьевич, магистрант
ФГБОУ ВО «Калмыцкий государственный университет имени Б.Б. Городовикова» Россия, 358000, Республика Калмыкия, г. Элиста, ул. Пушкина, 11
E-mail: Pakulasov@mail.ru; halgaeva2011@mail.ru; tyurbeev.tceden@mail.ru; v.bolaev@mail.ru; chavlinov@mail.ru; hodyaev@mail.ru
Improving the Hans Christian Gram method to determine the basic laws of digestive tract activity in animals
Kulyasov Petr Aleksandrovich, Candidate of Veterinary Sciences, Assistant Professor
Khalgaeva Kermen Erdnievna, Candidate of Agriculturs
Tyurbeyev Zeden Badmaevich, Candidate of Agricultum, Assistant Professor
Bolaev Valery Kanurovich, Candidate of Agricultum, Assistant Professor
Chavlinov Dzhangar Zulaevich, Masters degree student
Khodzhaev Viktor Yurievich, Masters degree student
Kalmyk State University named after BB Gorodovikova
11, Pushkina St., Elista, Republic of Kalmykia, 358000, Russia
E-mail: Pakulasov@mail.ru; halgaeva2011@mail.ru; tyurbeev.tceden@mail.ru; v.bolaev@mail.ru; chavlinov@mail.ru; hodyaev@mail.ru
The microscopic method involves the study of living or killed representatives of the microbial (bacteria, bacilli, clostridia and plectridia) and yeast (baking, fruit and vegetable, berry and grape yeast) world in a stained or unpainted state using a binocular light microscope. This scientific article provides an improved and augmented technique of the famous Danish microbiologist Hans Christian Gram when staining the intestinal microflora of ruminants. It was shown that the staining of microbial cultures was achieved due to the last fourth dye - safranin. Coloring according to the improved method of Hans Christian Gram with the addition of another red dye, safranin, instead of fuchsin Pfeiffer, allowed us to see a huge variety of putrefactive microbes under the optical immersion system of a light binocular microscope with a magnification of 1000 to 1500 times. These microorganisms are involved in the fermentation and decomposition of feed particles partially inside the thin and completely thick intestines. All that the animal eats useful (proteins, carbohydrates, fats, vitamins and minerals) must be digested and absorbed by the walls of the abomasum into the blood, since the ingestion of feed particles from the stomach into the intestine is accompanied by an increase in the microbial population in numbers, which leads to the formation of an excess of final products of their vital activity, harmful to the living organism of ruminants.
Key words: digestive tract, cows of Kalmyk breed, microbes, light microscope, staining according to Hans
Christian Gram, fuchsin Pfeiffer, fuchsin Tsilya, safranin.
-♦-
УДК 619:616.006:636.8
Клинический случай множественной злокачественной мастоцитомы у кота (плеоморфный низкодифференцированный вариант)
В.В. Гречко, канд. ветеринар. наук; Л.Ф. Бодрова, д-р ветеринар. наук, профессор;
Д.К. Овчинников, канд. ветеринар. наук
ФГБОУ ВО Омский ГАУ
Мастоцитома - злокачественная пролиферация тучных клеток (мастоцитов) - может возникать у собак или кошек в виде множественных или единичных новообразований кожи Объектом исследования был кот в возрасте 4 лет, беспородный, кастрат, проходивший регулярные обработки от экто- и эндопаразитов, вакцинацию в соответствии с графиком. У пациента установлен плеоморфный вариант мастоцитомы с низкой дифференцировкой. Проведена цитологическая диагностика и окраска Азур-эозином по Романовскому, что является достаточно точным методом диагностики для постановки диагноза мастоцитома, а также помогает предположить степень дифференцировки. В ходе лечения выявлена неэффективность протокола химиотерапии АСОР, соблюдение которого привело к положительной динамике только в первые месяцы терапии. Авторы полагают, что лечение надо было начинать с протокола, включающего в себя препарат Ломустин. Проведение химиотерапии не предупредило и не повлияло на появление отдалённых метастазов
(на первом приёме при проведении ультросонографии их обнаружено не было). Впоследствии метастазы были обнаружены в селезёнке, а в периферической крови была выявлена мастоцитемия. Сделаны выводы о целесообразности регулярного и частого проведения мониторинга пациентов по биохимическому и клиническому анализам крови, чтобы не допускать развития тяжёлых анемий и панцитопений. При постановке диагноза мастоцитома необходимо проводить исследование на С-кк мутации для более точного подбора протокола химиотрепии.
Ключевые слова: мастоцитома, диагностика, цитология, гистология, терапия.
Мастоцитома - злокачественная пролиферация тучных клеток (мастоцитов) - может возникать у собак или кошек в виде множественных или единичных новообразований кожи - кожная мастоцитома [1]. Поражение слизистых оболочек, внутренних органов, например кишечника, печени, селезёнки, костного мозга, встречается реже и обозначается терминами «висцеральная мастоцитома» или «системный мастоцитоз» [2].
У кошек мастоцитома кожи встречается довольно часто и составляет до 20 % всех кожных опухолей. Предрасположены к заболеванию кошки, как правило, среднего и пожилого возраста, но встречается редкий морфологический тип опухоли (атипичная мастоцитома), которая доминирует у молодых животных [3].
Говоря о биологическом поведении опухоли, надо отметить, что у кошек она менее агрессивна, чем у собак. Так, агрессивное поведение опухоли отмечено только в 20 % случаев заболеваний, сопровождающихся метастазированием в отдалённые органы. Агрессивное поведение при мастоцитомах кожи отмечают также у кошек при множественных и рецидивирующих опухолях [4].
Несмотря на то что мастоцитомы кожи могут характеризоваться агрессивным ростом, у кошек гистологический анализ не является точным предиктором их биологического поведения. Попытки классифицировать мастоцитомы по степени дифференцировки опухолевых клеток не привели к достоверным корреляциям, и системы градации опухолей по РаШа1к или Кшре1 у кошек не используют. Для кошек разработана другая, отличная от таковой для собак, гистологическая классификация мастоцитом кожи, которая разделяет все опухоли на классические (мастоцитарный тип) и атипичные (гистиоцито-подобный тип) [5].
Материал и методы исследования. Объектом исследования был кот по кличке Рыжий в возрасте 4 лет, беспородный, кастрат, проходивший регулярные обработки от экто- и эндопаразитов, вакцинацию в соответствии с графиком. Кота кормили «со стола» и готовыми промышленными кормами. Не имел прямого контакта с другими животными и улицей, поскольку был единственным домашним питомцем у хозяев.
Хозяева обратились в клинику с жалобами на множественные округлые, различной величины (от 3 мм до 1,5 см в диаметре), безволосые образования, встречающиеся на всём теле кота. Были обнаружены единичные расчёсы и изъяз-
вления данных образований, в основном локализующиеся на морде, что являлось результатом зуда (рис. 1).
При общем осмотре в клинике у животного установлены: средняя упитанность, крепкая конституция, тусклая и взъерошенная шерсть, вялое общее состояние, снижение аппетита и массы тела. При осмотре образования имели круглую, ровную форму, при пальпации были мягкими, безболезненными.
На основании данных анамнеза и физикаль-ного исследования были поставлены предварительные диагнозы: лимфома, мастоцитома, аллергическое заболевание. Назначены дополнительные исследования: общий анализ крови, биохимический анализ сыворотки крови, цитологическое и гистологическое исследование, абдоминальное УЗИ.
Материалом для исследования послужила тонкоигольная аспирационная биопсия данных образований. При проведении тонкоигольной аспирационной биопсии (ТИАБ) опухоль фиксируют пальцами левой руки, правой рукой перпендикулярно к коже вводят стерильную иглу с подсоединённым шприцем, поршень которого должен быть опущен. Локализацию иглы в патологическом очаге контролируют левой рукой (проверить правильность положения иглы можно, слегка перемещая патологический очаг, игла должна при этом двигаться вместе с очагом). Убедившись, что игла находится в патологическом
Рис. 1 - Кот с новообразованием:
1 - безволосое изъязвлённое образование на морде у кота
очаге, совершают два - три насасывательных движения, усилием большого и указательного пальцев правой руки поднимая поршень, создавая отрицательное давление, при котором клетки из ткани будут устремляться в иглу. После каждого подъёма поршня шприц снимают с иглы, выдувая воздух. Каждый раз подсоединяют к игле шприц с опущенным поршнем. После появления крови в игле пункцию прекращают. В ином случае дальнейшая аспирация приведёт к ещё большей контаминации препарата кровью из повреждённых в ходе процедуры сосудов. Иглу вынимают из очага, при этом поршень шприца должен быть опущен. Место пункции обрабатывают салфеткой, смоченной спиртом, при наличии кровотечения салфетку прижимают к месту пункции и оставляют на несколько минут. Затем шприц наполняли 3 мл воздуха, снова прикрепляли к игле и выдавливали аспирированное содержимое на предметное стекло. После этого фиксация производилась с использованием раствора Май - Грюнвальда по общепринятой методике, окраска мазков проводилась Азур-эозином по Романовскому, экспозиция - 25 минут. Цитологические препараты изучали с помощью светового биологического микроскопа Альтами БНО 1Т.
Гистологический материал для исследования получали под общей анестезией. Край резекции 0,4 мм в соответствии с рекомендациями Европейского консенсуса по мастоцитарным опухолям собак и кошек от 2012 г. определяется как чистый, но близко расположенный к опухоли (complete but close, <1 mm), что может потребовать расширения объёма оперативного вмешательства. Окраска гематоксилин-эозин, толуидиновый синий (для дифференциальной диагностики мастоцитомы).
Результаты исследования. По результатам ультрасонографии отдалённых метастазов не выявлено.
Результаты биохимического и клинического анализа крови представлены в таблицах 1 и 2, результаты находятся в пределах референтных значений.
В цитограмме выявлены морфологические характеристики, схожие с клетками кругло-клеточной, мастоцитарной, дифференцировки (круглые клетки содержали азурофильные цитоплазматические гранулы, которые в 80 % закрывали ядро. Степень цитоплазматической грануляции сильно варьировала). Мастоциты содержали в цитоплазме незначительное количество интрацитоплазматических вакуолей, а в большинстве случаев они отсутствовали. Ядра клеток прокрашивались слабо и находились не только по центру, но и были смещены к полюсам. Контаминация опухоли эозинофилами не встречалась. Данные признаки могут характеризовать опухоль как низкодифференцированную. Фагоцитарная активность отсутствовала. В поле зрения клетки просматривались скудные неоднородные воспаления. Присутствовали редкие активированные макрофаги. Отмечалась несущественная контаминация клетками периферической крови. Обнаружены единичные лимфоцитарные клетки разной степени зрелости, как интерпретируемые формы, так и в состоянии разрушения (рис. 2).
Предварительный диагноз поставили на основании цитологического исследования, для подтверждения диагноза материал был направлен на гистологическое исследование.
При окраске гематоксилином и эозином везикулы мастоцитов не окрашиваются и придают цитоплазме гранулированный вид, при этом опухоль может быть ошибочно диагностирована как другие круглоклеточные образования, например лимфома, гистиоцитарные опухоли.
При гистологическом исследовании установлена инфильтрация дермы, подкожной жировой клетчатки и подлежащих тканей. Клетки были полиморфные, среднего размера, располагались плотными скоплениями. Цитоплазма клеток имела нечёткие контуры, гранулы не просматривались или отсутствовали; ядра имели округлую или овальную форму, одну или множество нуклеол; митозы - до 5 в полях зрения. Зачастую в тканях отмечался отёк и некроз (рис. 3).
1. Биохимический анализ крови пациента
Показатель Референтные значения Результаты исследования
АЛТ, Ед/л 6 - 76 32
АСТ, Ед/л 10 -48 40
Щелочная фосфотаза, Ед/л 8 - 185 133
Глюкоза, ммоль/л 3,4 - 6,1 5,0
Общий билирубин, мкмоль/л 5,0 - 21,0 7,4
Общий белок, г/л 50,0 - 85,0 54,1
Альбумин, г/л 22,0 - 39,0 26,9
Мочевина, ммоль/л 2,1- 12,2 7,7
Креатинин, мкмоль/л 40,0 - 125,0 122,5
Кальций, ммоль/л 2,00 - 3,30 2,67
Фосфор, ммоль/л 1,10 - 3,00 1,43
2. Клинический анализ крови пациента
Вид исследования Референтные значения Результаты исследования
RBC, х1012/Ь 5,5 - 8,5 7,32
HGB, g/L 110 - 190 165
HCT, % 39,0 - 56,0 45,4
MCV, FL 62,0 - 72,0 69,5
MCH, pg 20,0 -25,0 24,5
PLT, x103/uL 117 - 460 321
WBC, x109/L 6,0 - 17,0 14,2
Lymph, x109/L 0,8 - 5,1 4,0
Mon, x109/L 0,0 - 1,8 1,0
Gran, x109/L 4,0 - 12,6 6,2
Lymph, % 12,0 - 30,0 15,9
Mon, % 2,0 - 9,0 6,0
Gran, % 60,0 - 83,0 78,1
Рис. 2 - ТИАБ новообразования у кота, окраска Азур-эозином по Романовскому, увеличение 1000:
1 - цитоплазма клетки содержит обильное количество гранул, имеющих базофильную окраску;
2 - скудное количество цитоплазматических вакуолей; 3 - не интерпретируемые клетки; 4 -клетки с отсутствием (непрокрашенным) ядра
Наряду с классической окраской гистологических препаратов проведено специфическое окрашивание на тучные клетки толуидиновым синим. При гистологической окраске мастоцитов толуидиновым синим выявляется специфическая для клеток метахроматическая окраска цитоплазматических везикул, содержащих комплексы гепарина и основных белков, которые в препаратах имеют интенсивно синий цвет (рис. 4).
На основании данных клинического и специальных методов диагностики установлен диагноз: множественная низкодифференцированная злокачественная кожная мастоцитома.
Лечение. Лечением выбора злокачественных кожных мастоцитом является широкое хирурги-
Рис. 3 - Гистологический препарат новообразования, окраска гематоксилинэозин, увеличение 400:
1 - плотные скопления клеток; 2 - анизоцитоз; 3 - цитоплазма, содержащая гранулы; 4 - ядра клеток с нуклеолами
Рис. 4 - Гистологический препарат новообразования, окраска толуидиновый синий, увеличение 200:
1 - метахроматическая окраска цитоплазматичес-ких везикул, содержащих комплексы гепарина и основных белков, которые в препаратах имеют интенсивно синий цвет
ческое удаление (чистый край) до 2 см от основного очага. Но образований было очень много, и зачастую они находились на расстоянии менее 1 см друг от друга, что не позволяло провести пациенту хирургическое лечение мастоцитомы. После удаления одной опухоли для гистологического исследования (край был 4 мм) рецидив мы получили уже на 7-й день.
Поэтому было принято решение о проведении адъювантной химиотерапии, так как роль химиотерапии в лечении мастоцитом кошек ещё предстоит определить [6]. Был выбран протокол химиотерапии АСОР (циклофосфамид, винкристин, доксорубицин и преднизолон), что отражено в таблице 3.
3. Протокол химиотерапии пациента
Протокол Препарат, доза, способ введения Продолжительность лечения
АСОР Циклофосфамид, 100 мг/м2, в/в 1 раз в 14 дней
Винкристин, 0,5 мг/м2, в/в 1 раз в 14 дней
Доксорубицин, 1 мг/кг, в/в 1 раз в 21 день
Преднизолон, 1 мг/кг 1 раз в день ежедневно
так, в крови наблюдался слабый ретикулоцитоз, анизоцитоз. Общее и ментальное состояние ухудшалось (табл. 4).
4. Анализ эритроцитов и эритроцитарных индексов
Терапию пациент переносил хорошо, постоянно контролировались биохимические и клинические показатели крови. Зуд прекратился сразу же после начала терапии, время появления новых очагов увеличилось, особенно после введения циклофосфамида (эндоксана).
После проведения данной терапии в течение 4 месяцев стали развиваться полиурия и полидипсия, лейкопения и анемия, что не позволило сохранить протокол химиотерапии. Поэтому было принято решение о постепенной отмене преднизолона и других препаратов, кроме цикло-фосфамида, в оральной форме (т.к. визуальный терапевтический эффект мы отмечали после его приёма).
После назначения циклофосфана в монорежиме положительная динамика отсутствовала, у пациента отмечались апатия, отказ от корма, появлялись новые образования, а имеющиеся становились крупнее. Тогда в соответствии с рекомендациями Европейского консенсуса по мастоцитарным опухолям собак и кошек от 2012 г. был назначен препарат Ломустин в дозе 60 мг/м2 1 раз в три недели, Винбластин в дозе 0,5 мг/м2 1 раз в неделю. Через месяц отмечали положительную динамику, мелкие очаги уменьшались, а крупные стали значительно меньше.
В течение следующего месяца у кота резко прогрессировала анемия, появилась мастоци-темия - неблагоприятный прогностический фактор (рис. 5) (паранеопластичекий синдром),
Вид исследования Референтные значения Результат исследования
РВС, х1012/Ь 5,5 - 8,5 2,33|
НОВ, 110 - 190 554
НСТ, % 39,0 - 56,0 13,24
мсу РЬ 62,0 -72,0 56,14
МСН, pg 20,0 -25,0 17,24
По результатам ультразвукового исследования в селезёнке кота была обнаружена мелкозернистая инфильтрация (метастазы). В соответствии с Европейской конвенцией-2012 была рекомендована спленоэктомия как лечение анемии и мастоците-мии для увеличения продолжительности жизни животного, но владелец кота отказался.
Была проведена гематрансфузия в объёме 40 мл цельной крови (т.к. больше доноров не удалось собрать) и инфузия кристаллоидов (раствор Хартмана), 40 мл, а также В12, 1 мл, железо, 25 мг/кг. В домашних условиях назначено следующее лечение: В12 по 0,5 мл 1 раз в 3 дня, железо Феррум Лек, табл. 100 мг, по 1/2 в течение 30 дней. В течение следующих 3 суток состояние кота становилось лучше, вернулся аппетит, ментальный статус пришел в норму (кот начал играть). Но на 4-е сутки у животного развилась острая дыхательная и сердечная недостаточность, приведшая к смерти.
При вскрытии были обнаружены множественные кожные образования по всей поверхности тела, метастазы в селезёнку (узлы белого цвета) и спленомегалия; анемия внутренних органов; эмфизема лёгких в результате реанимационных действий (интубация и мешок Амбу) (рис. 6, 7).
Рис. 5 - Мазок периферической крови, окр. Азур-эозин, увеличение 1000:
1 - эритроцит; 2 - ретикулоцит 3 - мастоцит (тучная клетка)
Рис. 6 - Патологоанатомическое вскрытие кота:
1 - спленомегалия; 2 - метастазы различной величины в виде белых узелков; 3 - инфаркт селезёнки
Рис. 7 - Патологоанатомическое вскрытие кота;
все органы анемичны:
1 - эмфизема лёгкого; 2 - печень; 3 - селезёнка;
4 - желчный пузырь; 5 - почка
Таким образом, продолжительность жизни пациента с момента поступления в клинику и до наступления смерти составила 7 месяцев.
Выводы
1. У пациента установлен плеоморфный вариант мастоцитомы с низкой дифференцировкой. При этом типе можно ожидать агрессивного поведения развития неопластического процесса.
2. Цитологическая диагностика и окраска Азур-эозином по Романовскому является достаточно точным методом диагностики для постановки диагноза мастоцитома, а также помогает предположить степень дифференцировки.
3. Протокол химиотерапии АСОР оказался неэффективным, привёл к положительной динамике только в первые месяцы терапии. Возможно, лечение надо было начинать с протокола, включающего в себя Ломустин.
4. Проведение химиотерапии не предупредило и не повлияло на появление отдалённых метастазов (на первом приёме при проведении ультросоно-
графии их обнаружено не было). Впоследствии метастазы были обнаружены в селезёнке, а в периферической крови была выявлена мастоцитемия.
5. Необходимо как можно чаще проводить мониторинг пациента по биохимическому и клиническому анализам крови. Не допускать развития тяжёлых анемий и панцитопений.
6. При постановке диагноза мастоцитома необходимо проводить исследование на C-kit мутации для более точного подбора протокола химиотрепии.
Литература
1. Лисицкая К.В., Седов С.В. Мастоцитома собак: этиология, клиника, диагностика и лечение // Vetpharma. 2011. № 3 - 4. С. 94 - 99.
2. European consensus document onmast cell tumours in dogs and cats / L. Blackwood, S. Murphy, P. Buracco [et al.] // Vet Comp Oncol. 2012. Vol. 10. No. 3. Pp. e1-e29.
3. Cytologic Criteria for Mast Cell Tumor Grading in Dogs with Evaluation of Clinical Outcome / M.S. Camus, H.L. Priest, J.W. Koehler [et al.] // Vet Pathol. 2016. Mar 31.
4. Clinicopathological findingsand results of bone marrow aspiration in dogswith cutaneous mast cell tumours: 157 cases (1999 - 2002) / M.M. Endicott, S.C. Charney, J.A. McKnight [et al.] // Veterinary and Comparative Oncology. 2007. Vol. 5. No. 1. Pp. 31 - 37.
5. Harper A., Blackwood L. Toxicity and response in cats with neoplasia treated with toceranib phosphate // J. Feline Med Surg. 2016.
6. Ultrasonography of intestinalmast cell tumors in the cat / M.P. Laurenson, K.A. Skorupski, P.F. Moore [et al.] // Vet. Radiol. Ultrasound. 2011. Vol. 52. No. 3. Pp. 330 - 334.
7. Litster A.L., Sorenmo K.U. Characterisation of the signalment, clinical and survival characteristics of 41 cats with mast cell neoplasia // J. Feline Med. Surg. 2006. Vol. 8. No. 3. Pp. 177 - 183.
8. Melville K., Smith K.C., Dobromylskyj M.J. Feline cutaneous mast cell tumours: aUKbasedstudy comparing signalment and histologicalfeatures with long-term outcomes // J. Feline Med. Surg. 2015. Vol. 17. No. 6. Pp. 486 - 493.
9. Kit receptor tyrosine kinase dysregulationsin feline splenic mast cell tumours / S. Sabattini, G. Barzon, M. Giantin [et al.] // Vet. Comp Oncol. 2016.
10. Feline intestinal mast cell tumours:clinicopathologicalcharacte risation and KIT mutation analysis / S. Sabattini, M. Giantin, A. Barbanera [et al.] // J. Feline Med. Surg.2016. Vol. 18. No. 4. Pp. 280 - 289.
11. Evaluation of strontium 90 irradiationin treatment of cutaneous mast cell tumorsin cats: 35 cases (1992 - 2002) / J.M. Turrel, J. Farrelly, R.L. Page [et al.] // J. Am. Vet.Med. Assoc. 2006. Vol. 228. No. 6. Pp. 898 - 901.
12. Evaluation of prognosticmarkers for canine mast cell tumors treat-edwith vinblastine and prednisone / J.D. Webster, V. Yuzbasiyan-Gurkan, D.H. Thamm [et al.] // BMC Vet.Res. 2008. Vol. 4. P. 32.
Гречко Виктор Валентинович, кандидат ветеринарных наук, доцент Бодрова Людмила Фёдоровна, доктор ветеринарных наук, профессор Овчинников Дмитрий Константинович, кандидат ветеринарных наук, доцент ФГБОУ ВО «Омский государственный аграрный университет имени П.А. Столыпина» Россия, 644122, г. Омск, ул. Октябрьская, 92 E-mail: vg_1988@mail.ru; ivmb.adm@omgau.org; biolog-ivm@mail.ru
A clinical case of multiple malignant mastocytoma in cats (pleomorphic poorly differentiated variant)
Grechko Victor Valentinovich, Candidate of Veterinary Sciences, Assistant Professor Bodrova Lyudmila Fedorovna, Doctor of Veterinary Sciences, Professor Ovchinnikov Dmitry Konstantinovich, Candidate of Veterinary Sciences, Assistant Professor Omsk State Agrarian University named after P.A. Stolypin 92 Oktyabrskaya St., Omsk, 644122, Russia
E-mail: vg_1988@mail.ru; ivmb.adm@omgau.org; biolog-ivm@mail.ru
Mastocytoma - malignant proliferation of mast cells (mast cells), can occur in dogs or cats in the form of multiple or single skin neoplasms. The object of the study was a cat at the age of 4 years, a purebred, castrate, who underwent regular treatment from ecto- and endoparasites, vaccinated in accordance with the schedule . The patient has a pleomorphic variant of mastocytoma with low differentiation. Cytological diagnosis and staining with Azure-eosin according to Romanovsky was carried out, which is a fairly accurate diagnostic method for diagnosing mastocytoma, and also helps to suggest the degree of differentiation. During treatment, the ASOR chemotherapy protocol was found to be ineffective, compliance with which led to positive dynamics only in the first months of therapy. The authors believe that treatment should have started with a protocol that includes Lomustine. Chemotherapy did not prevent and did not affect the appearance of distant metastases (they were not found at the first appointment during ultrasonography). Subsequently, metastases were detected in the spleen, and mastocytemia was detected in the peripheral blood. Conclusions have been drawn on the advisability of regular and frequent monitoring of patients by biochemical and clinical blood tests, to prevent the development of severe anemia and pancytopenia. When making a diagnosis of mastocytoma, it is necessary to conduct a study on the C-kit mutation for a more accurate selection of the chemotrepy protocol.
Key words: diagnostics, cytology, histology, mastocytoma, therapy.
-♦-
УДК 612.2:599.323.4
Эффективность влияния продуктов пчеловодства на морфофункциональные изменения и линейные показатели селезёнки хомяков
Э.Т. Ахмадуллина, канд. биол. наук; Р.М. Хабибуллин, канд. биол. наук;
А.У. Бакирова, канд. с.-х. наук; Р.Х. Абдуллин, доцент; Н.Н. Кадиров. доцент;
А.Х. Дашкин. доцент; И.М. Хабибуллин, ассистент
ФГБОУ ВО Башкирский ГАУ
Экспериментальное исследование проведено на лабораторных животных - хомяках в возрасте от рождения до 270 суток с целью изучения морфофункциональных изменений и линейных показателей селезёнки на фоне физических нагрузок при коррекции продуктами пчеловодства. Животные опытных групп наряду с основным рационом получали биологически активные препараты пчеловодства: цветочную пыльцу, маточное молочко, аминокислотно-минерально-витаминный препарат Микровитам. Для нормализации обменных процессов в организме хомяков, предупреждения сонливости и каннибализма, с целью расширения возможностей сохранения и увеличения их поголовья, необходимого для получения антирабической вакцины, целесообразно рекомендовать вносить в рацион лабораторных хомяков композиционные формы цветочной пыльцы или маточного молочка пчёл с препаратом Микровитам. Цветочную пыльцу следует включать в рацион из расчёта 1 г / гол, маточное молочко - в дозе 0,005 г/гол в виде таблетированной формы апилака, Микровитам задавать из расчёта 15 мг/гол. Рекомендуется БАПП вносить в корм ежедневно 2 раза в день, в течение 20 дней, с повторами через 15 дней.
Ключевые слова: хомяки, селезёнка, цветочная пыльца, Микровитам, физическая нагрузка.
В спортивной медицине необходима разработка системы восстановления морфологических изменений тканей и физиологических функций организма после больших физических нагрузок, в процессе влияния которых в организме происходят функциональные нарушения, приобретающие в отдельных случаях хронический характер.
Физические нагрузки на организм животных приводят к накоплению в клетках различных органов, в частности сердца, продуктов метаболизма, которые нарушают в течение значительного времени физиологические функции этих органов. Для повышения физической работоспособности и уменьшения отрицательного воздействия на организм физических нагрузок ряд исследователей предлагают использовать биологические активные вещества - адаптогены животного и растительного происхождения, в том числе продукты пчеловодства.
Материал и методы исследования. Экспериментальное исследование с целью изучения морфофункциональных изменений и линейных показателей селезёнки на фоне физических нагрузок при коррекции продуктами пчеловодства проведено на лабораторных животных -хомяках.
Для исследования были сформированы шесть групп подопытных животных (п = 10) в возрасте 1 - 270 сут. [1]. I гр. хомяков была контрольной. Их основной рацион (ОР) состоял из кормовой смеси летнего и зимнего периодов, применяемой в питомнике лабораторных животных. Животные II гр. получали ОР + цветочную пыльцу, III гр. - ОР + маточное молочко, IV гр. - ОР + аминокислотно-минерально-витаминный препарат Микровитам, V гр. - ОР + цветочную пыльцу + Микровитам, VI гр. - ОР + маточное молочко + Микровитам [2, 3]. Методика прове-
