CC BY
148
ГЕМАТОЛОГИЯ
УДК 636.2:612.1.017.1
Изменение морфофизиологических показателей крови телят с возрастом и в процессе вакцинации
А.С. Москвина, АНО «<Научно-исследовательский институт диагностики и профилактики болезней человека и животных» (Москва), ФГБУО ВПО «<Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скрябина»
Ключевые слова: вакцина, вакцинация, морфофизиологическое исследование крови, онтогенез, телята
Введение
Кровь представляет собой одно из важнейших звеньев внутренней среды организма животных и человека [5, 14] и состоит из жидкой части (плазмы) и форменных элементов (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов). Морфологический состав крови во многом определяется скоростью роста животного и зависит, в первую очередь, от его физиологического состояния, условий, в которых животное находится, особенностей кормления, а также возраста, пола и породной принадлежности. Состав крови свидетельствует о нормальных и патологических процессах, происходящих в организме. Гематологические показатели широко используют в физиологической и клинической практике с целью объективной оценки интенсивности и направления обмена веществ, интерьерных качеств животного и состояния его здоровья [6].
В литературе большое число работ посвящено исследованию гематологических показателей крупного рогатого скота в зависимости от различных внешних и внутренних факторов. Несмотря на многочисленные попытки установить определенные закономерности в изменениях показателей крови в зависимости от возраста, беременности и лактации, сезона, до сих пор нет единого мнения о наличии определенных взаимосвязей между показателями крови и указанными факторами [1...3, 6, 12, 13]. Кроме того, ощущается недостаток точных научных данных по возрастной морфологии и динамике физиологических функций у телят, между тем именно эти данные служат одной из основ при организации профилактических и лечебных мероприятий [7].
Как известно, введение животным биологических препаратов воздействует на клетки красной и белой крови, причем, чем более токсичен или биологически активен препарат, тем существеннее изменения в клеточном составе крови. Вакцинация уже стала неотъемлемой частью современного способа ведения животноводства и, будучи мощным стресс-фактором, может оказывать значительное влияние на систему крови и изменять ее морфофизиологические показатели. Вопросы, касающиеся формирования поствакцинального иммунного ответа на различные типы вакцин, достаточно широко изучены, однако воздействие вакцинации как таковой и влияние той или иной вакцины на морфофизиологический состав крови телят в процессе раннего онтогенеза детально не исследованы. Необходимость подобных исследований обусловлена, преж-
де всего тем, что все типы применяемых в животноводстве вакцин должны соответствовать определенным требованиям, основными из которых являются безвредность и биологическая безопасность [9].
Цель исследования
Изучить морфофизиологические показатели крови телят в процессе онтогенеза и при функциональной нагрузке в виде вакцинации инактивированными противовирусными препаратами.
Материалы и методы
Опыт проводили в ОАО «Агрофирма-Рогачево» Дмитровского района Московской области на телятах, полученных от вакцинированных (две опытные группы) и интактных (контрольная группа) коров черно-пестрой породы. Из телят, которые своевременно получили молозиво, сформировали три группы: две опытные (вошли телята от вакцинированных коров) и одну контрольную (телята от интактных коров); животных опытных групп подвергли двукратной вакцинации на 75-е и 96-е сутки после отела препаратами, ранее использовавшимися для иммунизации коров-матерей.
Для вакцинации животных 1-й опытной группы (п=8) использовали инактивированную вакцину против инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи, респираторно-синцитиальной, рота-, коронави-русной болезни крупного рогатого скота, приготовленную на производственном адъюванте — гидроокиси алюминия («КОМБОВАК», производитель ООО «Вет-биохим», г. Москва). Животных 2-й опытной группы (п=8) иммунизировали экспериментальным образцом вакцины с эквивалентным содержанием вирусных антигенов, однако в качестве адъюванта был использован масляный адъювант Мопіап^е КА 70 ^ЕРРІС, Франция). Оба препарата вводили в дозе 2,0 мл/гол. Телята контрольной группы (п=8) оставались интактными.
Морфофизиологические показатели крови исследовали в динамике, согласно современной периодизации развития крупного рогатого скота в постнатальный период с учетом фактора вакцинации и последующего формирования специфического иммунного ответа [8, 11]: 1) в период колострального иммунитета (первые 3-е суток после отела); 2) в конце фазы новорожденности (10-е сутки жизни); 3) в молочный период (30-е сутки после отела); 4) в переходный период (спустя 75 суток после рождения, этот же период до вакцинации для опытных групп); 5) 96-е сутки жизни (для опытных групп — период становления первичного иммунного ответа); 6) 117-е сутки жизни (для опытных групп — период становления
А.С. Москвина
вторичного иммунного ответа); 7) в период полового созревания (235-е сутки после рождения).
Морфофизиологические показатели крови исследовали на автоматическом гематологическом анализаторе PCE-90 Vet (ERMA INC, Япония) по методикам, рекомендованным фирмой-производителем. В стабилизированных образцах крови определяли количество лейкоцитов, эритроцитов, тромбоцитов, концентрацию гемоглобина и гематокрит. Данные обрабатывали статистически общепринятыми методами.
Результаты
Результаты экспериментов по определению возрастной изменчивости морфофизиологических показателей крови телят приведены в таблице.
Как видно из приведенных данных, различия в содержании эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов у животных опытных и контрольной групп статистически незначимы, что указывает на относительную безопасность вакцинных препаратов, т. е. их минимальное влияние на становление гемопоэза в процессе раннего онтогенеза телят.
Вместе с тем были установлены достоверные возрастные изменения гематологических показателей у телят. В фазе новорожденности отмечено максимальное увеличение количества тромбоцитов и лейкоцитов. При этом количество тромбоцитов повысилось в 2 раза в 1-й опытной группе (p<0,01), на 83 % — во 2-й опытной группе (p<0,05) и на 71 % — в контрольной. Количество лейкоцитов у животных 1-й группы было выше на 34 %, у животных 2-й группы — на 33 % и в контрольной — на 48 %. При анализе содержания эритроцитов наблюдали увеличение
их содержания у телят всех групп в возрасте 96 и 117 суток. В среднем количество эритроцитов у животных всех групп повысилось на 23 % (р<0,05) относительно показателей, установленных в период колострального иммунитета.
Обсуждение
Повышение количества лейкоцитов и тромбоцитов в фазу новорожденности объясняется процессами адаптации организма к внеутробной среде обитания. Существенной чертой данной фазы является начало активного функционирования всех органов и систем. Этот период характеризуется высоким уровнем деятельности сердечнососудистой, дыхательной, пищеварительной систем [8]. Происходит перестройка функций дыхания, кровообращения, питания, терморегуляции и др. При этом большие изменения претерпевает процесс кроветворения. Переход с молочного питания на растительное повышает содержание клеток красной крови. Количество эритроцитов и содержание гемоглобина уменьшаются с возрастом и в большинстве случаев эти процессы протекают параллельно [14]. Подобная динамика изменения количества эритроцитов и концентрации гемоглобина отмечена в наших исследованиях.
В возрасте 7.. .14 суток у телят отмечали возрастной иммунодефицит, который обусловлен распадом колост-ральных иммуноглобулинов и незрелостью иммунной системы молодняка. Гуморальная иммунная недостаточность компенсируется усилением клеточных факторов защиты — в крови увеличивается количество лимфоцитов, тимусных лейкоцитов и фагоцитарная активность макрофагов [4].
Морфофизиологические показатели крови телят (M±m)
Период исследования Лейкоциты, 109/л Эритроциты, 1012/л Гемоглобин, г/л Гематокрит, % Тромбоциты, 109/л
Норма** 4...12 0 5 8 о 5 о 6 4 4 2 0 о 8 о о
Первая опытная группа
1 19,55±5,65 8,87±0,55 114,67±8,60 30,52±2,52 293,67+20,57
2 26,15±6,50 8,43±0,35 99,00±6,75 27,98±2,11 623,00±156,981
3 22,63±5,92 9,35±0,39 111,50±5,87* 30,90±1,11* 485,83±51,221
4 17,49±3,15 8,69±0,53 112,88±4,97 28,96±2,13 414,29±34,531
5 17,06±3,01 10,29+0,30124 119,13±6,34 31,81±1,10* 423,43+53,86
6 15,07±1,422 10,85+0,231-4* 125,13+4,752* 32,70±1,17* 385,43+35,9612
7 10,50+0,862Д#* 8,27+0,29356 92,86±1,441-6,* 28,03+0,7756 329,43+29,081-3
Вторая опытная группа
1 25,81±9,02 7,86±0,49 93,00±5,72 27,23±3,13 333,00+45,67
2 34,35±8,14 8,59±0,24 98,33±7,22 26,85±1,27 609,50+137,891
3 33,60±7,42 8,33±0,65 85,33±7,63* 25,60±2,26* 517,00+25,461
4 21,57+1,8623 9,41±0,48 104,13±7,32 28,41±1,93 421,43+32,272
5 17,40+2,2423 10,12±0,531 110,50±6,53 28,29±1,66* 388,29+38,092
6 15,03+0,90234 9,69+0,29123,* 107,63±3,8213* 27,15±1,07* 344,33+37,3423
7 14,88+1,54234* 8,25+0,23456 87,88+2,2456* 26,79±0,87 308,25+41,9223
Контрольная группа
1 20,28±6,13 8,45±0,76 110,80±9,42 33,00±3,73 344,00+49,01
2 30,03±9,54 8,42±0,67 103,00±10,59 29,23±2,70 588,00+153,54
3 29,93±7,14 10,39±1,33 108,00±13,10 33,03±3,90 450,33+45,04
4 15,43±3,45 9,28±0,40 105,43±4,61 27,14±1,02 391,43+54,21
5 17,02±2,383 10,21±0,55 114,43±3,93 26,42±1,60 428,17+25,38
6 13,51 + 1,6723 10,52+0,4812 115,71±3,094 29,75±0,99 411,33+46,14
7 13,37+0,8823 8,49+0,3056 91,71±3,271'4'5'6 26,60+1,0436 352,71+43,79
1...7 — статистически достоверные различия внутри группы; * — статистически достоверные различия между опытными группами; # — статистически достоверные различия между опытной и контрольной группой (р< 0,05); ** — нормативные показатели приведены по цитированным литературным данным.
РВЖ • СХЖ • № 1/2012
Изменение морфофизиологических показателей крови телят с возрастом и в процессе вакцинации
Полученные нами данные по возрастной динамике содержания лейкоцитов и эритроцитов у телят с момента рождения и до этапа полового созревания в количественном выражении отличаются как от установленной физиологической нормы, так и от имеющихся литературных данных [1.3, 6, 12, 13]. Однако они совпадают с возрастной динамикой аналогичных показателей у детей. Сразу после рождения число лейкоцитов у ребенка очень велико и может достигать 20х109/л и выше. На протяжении 1-го дня жизни в связи со сгущением крови число лейкоцитов у детей может возрастать до 30х109/л, а затем постепенно их количество уменьшается [5].
Повышенное содержание эритроцитов у новорожденного объясняется тем, что плод в утробе матери и во время родов испытывает состояние гипоксии, вызывающей в его крови увеличение количества эритропоэтинов. Однако после рождения у ребенка возникает гипероксия (т. к. устанавливается внешнее дыхание), что приводит к снижению интенсивности эритропоэза (за счет снижения выработки эритропоэтина). К тому же эритроциты новорожденного имеют короткий период жизни (всего 10.14 суток) и очень высокую степень разрушения, в 5.7 раз превышающую интенсивность гибели эритроцитов у взрослого человека [5]. Если предположить наличие аналогичных процессов у телят, это объясняет полученные нами результаты.
Анализ полученных нами данных показал, что максимальное количество тромбоцитов у телят приходится на фазу новорожденности, а именно на 10-е сутки после рождения. Эта фаза является критической для жизни телят, так же как и возраст 1__1,5 мес и 6.. .6,5 мес. Лю-
бая критическая фаза определяет становление функций и биологических ритмов организма и его систем на следующем этапе. При этом, чем больше различия между предыдущим и последующим этапами, тем глубже перестройка, а критическая фаза длиннее по времени. Именно в критические фазы развития животных происходит десинхронизация биологических ритмов роста, развития органов и систем организма, повышение чувствительности тканей, органов к факторам внешней среды.
Библиография
1. Абрамян Э.Г., Авакян А.С., Абовян Ю.Г., Левонян С.М. Показатели крови в разные периоды стельности // Ветеринария, 1984; 3: 56—57.
2. Дурдыев Б.Д., Нурышов О.Н., Атаев А., Степанов Д.Ф. Возрастная и сезонная динамика некоторых показателей морфологического и биохимического состава крови у скота черно-пестрой породы // Сб. науч. тр. Турк. СХИ, 1986; 29 (2): 88—93.
3. Игнатьев Р.Р., Бондаренко Г.Ч., Яковлева Л.С. Морфология крови крупного рогатого скота ранних периодов развития // Сб. науч. Тр. «Морфология и физиология сельскохозяйственных животных». — Благовещенск, 1989.
4. Кондрахин И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики. — М.: КолосС, 2004.
5. Кузник Б.И., Максимова О.Г. Общая гематология: гематология детского возраста. — Ростов н/Д: Феникс, 2007.
6. Кузовлев С.В., Деев Н.Г. Изменения морфологического состава крови и гемолитической стойкости эритроцитов у коров черно-пестрой породы в зависимости от сезона года и физиологического состояния. В кн. «Морфофизиологические и биохимические особенности крупного рогатого скота, маралов и оленей в условиях Западной Сибири». — Новосибирск: Алтайский сельскохозяйственный институт, 1984.
7. Лысов В.Ф., Замарин Л.Г., Чернышов А.И. Здоровый молодняк — основа высокопродуктивного стада. — Казань.: Татарское книжное издательство, 1988.
К неблагоприятным факторам воздействия на организм в критические фазы развития относятся различные профилактические мероприятия, например, ветеринарносанитарные обработки и прививки для животных, особенно на этапе новорожденности [10].
Выводы
Определены количественные значения морфофизиологических показателей крови телят в процессе онто-и иммуногенеза, установлены достоверные возрастные изменения гематологических показателей как у неиммунных, так и у вакцинированных телят.
Показано, что динамика изменения и повышенное количество лейкоцитов и эритроцитов у телят в фазе ново-рожденности совпадают с возрастной динамикой и высоким содержанием этих типов клеток у новорожденных детей.
Применение производственной и экспериментальной противовирусной вакцины для иммунизации животных вызывает незначительные (в пределах физиологической нормы) изменения уровня исследуемых морфофизиологических показателей крови и не оказывает существенного влияния на становление гемопоэза у телят в период раннего онтогенеза. Это свидетельствует о потенциальной безопасности испытуемых препаратов и, как следствие, пищевой безопасности продуктов, полученных от вакцинированных животных.
8. Лысов В.Ф. Физиология молодняка сельскохозяйственных животных. — Казань, 1977.
9. Сергеев В.А., Непоклонов Е.А., Алипер Т.И. Вирусы и вирусные вакцины. — М.: Библионика, 2007.
10. Тельцов Л.П., Романова Т.А., Здоровинин В.А., Шашанов И.Р., Добрынина И.В., Кудаков Н.А., Родин В.Н. Критические фазы развития человека и животных // Фундаментальные исследования, 2008; 12: 9—12.
11. Тельцов Л.П., Шашанов И.Р. Современная периодизация развития крупного рогатого скота // Материалы международной конференции ветеринарных морфологов «Актуальные вопросы видовой и возрастной морфологии животных и пути совершенствования преподавания морфологических дисциплин». — Улан-Удэ, 1998.
12. Холодова Л.В. Изменение гематологических и биохимических по каза телей крови телят в возрастной динамике // Тезисы докладов «III Республиканская научная конференция молодых ученых и специалистов». — Казань, 1998.
13. Чегина В.П., Тельцов Л.П., Шагиахметов Ю.С. Часовая динамика клеток крови у телят после рожде ния и суточного возраста // Вестник ветеринарии, 1999; 4:12—16.
14. Эйдригевич Е.В. Раевская В.В. Интерьер сельскохозяйственных животных. — М.: Колос, 1978.
Summary
A.S. Moskvina. Quantify of hematological indicators of calves on ontogenesis and in the period of vaccination.
Based on the obtained results the hematologic indicators of the calves’ blood were determined. Quantity of these cells during different periods of ontogenesis and immunogenesis has been shown. Finally we have concluded that immunization of cattle by the “Combovac” vaccines does not considerably influence the hematopoietic formation in calves during early ontogenesis.
