CC BY
77
генеза, усилению иммуногенности и снижению реактогенности вакцины, предупреждает поствакцинальные осложнения у животных и вызывает формирование иммунитета высокой напряженности.
ЛИТЕРАТУРА
1. Бабина, М.П. Повышение резистентности и стимуляция у цыплят-бройлеров / М. П. Бабина //Информационный бюллетень по птицеводству. Минск, 2002. № 2. С. 38 - 40.
2. Бабина, М.П. Профилактика иммунной недостаточности и связанных с нею болезней цыплят-бройлеров / М. П. Бабина // Проблемы микробиологии и биотехнологии: матер. междунар. конф. Минск, 25-27 ноября 1998 г. Минск, 1998. С. 152-153.
3. Бирман, Б.Я. Иммунодефицита птиц / Б.Я. Бирман, И.Н. Громов // Минск: Бизнесофест, 2001. 139 с.
4. Иммунитет и его коррекция в ветеринарной медицине / П. А. Красочко, А. С. Ястребов, В. С. Прудников, А. И. Новиков, А. И. Ятусевич [и др.]. Смоленск, 2001. 323 с.
5. Прибытько, С.П. Влияние иммуностимулятора натрия тиосульфата на имму-номорфогенез у цыплят, вакцинированных против болезни Марека: дисс. ... канд. вет. наук: 16.00.02 / С.П. Прибытько. Витебск, 1998. 114 с.
6. Придыбайло, Н.Д. Иммуностимулирующие свойства тималина у птиц, роль полипептидных биорегуляторов (цитомединов) в регуляции гомеостаза/Н. Д. Придыбайло, Г. Е. Афанасьева, Л. П. Якушева // Тезисы докл. науч. конф., Ленинград, 24-25 ноября 1987 г. Ленинград, 1987. С.83.
7. Прудников, В.С. Стимуляция иммунного ответа натрия тиосульфата при вакцинации свиней против сальмонеллеза/ В. С. Прудников, Е. И. Большакова // Международный аграрный журнал. 1998. N° 5. С.55-56.
8. Прудников, В.С. Влияние иммуностимуляторов на напряженность иммунитета у свиней, вакцинированных против классической чумы/ В. С. Прудников, В. П. Жал-дыбин // Проблемы аграрной отрасли в начале XXI века: матер. междунар. науч.-практ. конф. Смоленск, 12-13 марта 2002 г. Смоленск, 2002. Ч. 1. С. 203-206.
УДК 619:616.98:[578.823.91+579.842.11]:632.2:612.117:615.37
ИЗУЧЕНИЕ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ И БИОХИМИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ У КОРОВ ПОСЛЕ ВАКЦИНАЦИИ ИНАКТИВИРОВАННОЙ ВАКЦИНОЙ ПРОТИВ РОТАВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ И ЭШЕРИХИОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА
Я.П. ЯРОМЧИК УО «Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины» г. Витебск, Республика Беларусь, 210026
(Поступила в редакцию 25.01.2010)
Введение. Одной из важнейших задач развития народного хозяйства в Республике Беларусь является интенсивное ведение мясного и молочного скотоводства, способного обеспечить нужды населения в продуктах питания и сырье животного происхождения. Однако при интенсивном ведении животноводства повышается опасность возникновения и распространения инфекционных болезней, в том числе и таких, как ротавирусная инфекция и эшерихиоз. В Республике Беларусь эшерихиоз занимает первое место по количеству заболевших и павших животных [2,4,8].
Одним из важнейших мероприятий в борьбе с ротавирусной инфекцией и эшерихиозом телят является специфическая профилактика [2,4].
В настоящее время для проведения специфической профилактики ротавирусной инфекции и эшерихиоза телят предлагается значительный ряд биопрепаратов отечественного и зарубежного производства. Нами разработана отечественная вакцина против ротавирусной инфекции и эшерихиоза крупного рогатого скота, при применении которой профилактическая эффективность составила в разных хозяйствах от 97,9 до 98,9%, что на 17,0% выше достигнутого результата при использовании биофабричных вакцин, широко используемых в настоящее время на производстве [3,4].
Одним из этапов конструирования вакцин является изучение их влияния на организм иммунизированных животных, для которых назначается применение биопрепарата [1,3,5-7].
Цель работы - изучить влияние на гематологические и биохимические показатели коров после вакцинации их инактивированной вакциной против ротавирусной инфекции и эшерихиоза крупного рогатого скота.
Материал и методика исследований. Экспериментальная работа проводилась в условиях МТФ «Осиновка ЗАО «Липовцы» Витебского района Витебской области. В опыт было взято всего 10 голов коров черно-пестрой породы, которых сформировали на две группы.
Вакцину вводили внутримышечно в области крупа по 1 иммунизирующей дозе (в объеме 5,0 см3) двукратно с интервалом 21-28 дней. Коров вакцинировали за 1,5-2,0 месяца до отела. Коровам группы контроля биопрепараты не вводили. После введения образцов вакцины за животными опытной и контрольной групп на протяжении 45 дней вели клиническое наблюдение.
Для определения гематологических изменений у коров были отобраны пробы крови, стабилизированные раствором гепарина (в 1,0 мл 5000 ЕД), а для определения биохимических показателей одновременно отбирали сыворотки крови. Пробы брали до вакцинации, на 15, 21 и 45-й день после иммунизации. Гематологические и биохимические исследования были проведены на гематологическом Medonic CA620 и биохимическом анализаторе Eurolaizer, в условиях НИИПВМиБ, а также в научной лаборатории кафедры эпизоотологии УО «Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины». Полученный биологический материал доставлялся в течение 4-часов после взятия. В стабилизированных пробах крови определяли содержание показателей гемоглобина, лейкоцитов, эритроцитов, тромбоцитов, гематокрита.
Для изготовления вирусного монокомпонента был использован ат-тенуированный штамм ротавируса, накопление которого проводили на перевиваемой культуре клеток почки эмбрионов свиньи - СПЭВ (по Сюрину, 1986 г.). При культивировании вирусов в поддерживающую
среду добавляли трипсин в концентрации 5 мкг/см3. Инфекционный титр ротавируса после титрации на культуре клеток по Риду и Менчу составил 7,0 ^ ТЦД 50/см3.
При приготовлении монокомпонентов эшерихий использовали штаммы с адгезивными антигенами А20, К88 и К99, которые культивировали в матрасных колбах в течение 48 часов на агаровой питательной среде, доводя концентрацию бактериальных клеток до 104/мл стерильного физиологического раствора.
В качестве инактиванта эшерихий и ротавирусов использовали тео-тропин в 0,1%-ной и 0,2%-ной концентрации соответственно, а адъю-ванта - эмульсиген в количестве 10% от общего объема полученных образцов антигенов.
Результаты исследований и их обсуждение. После введения коровам инактивированной вакцины не отмечено общих и местных изменений в клиническом состоянии животных. Животные охотно принимали корм и воду, активно пользовались моционом.
Полученные результаты влияния на гематологические показатели крови коров при введении инактивированной вакцины представлены в табл. 1.
Таблица 1. Гематологические показатели крови коров, иммунизированных вакциной против ротавирусной инфекции и эшерихиоза
Показатели Группы До вакцинации На 10-е сутки На 21-е сутки На 45-е сутки
Гемоглобин, г/л 1 98,6±3,38 133,0±6,96 124,0±19,05 136,0±18,14
2 106,6±3,84 114,6±13,54 100,6±7,62 94,3±11,68
Эритроциты, 1012/л 1 5,4±0,11 6,34±0,23 6,39±1,32 6,8±1,05
2 5,9±0,31 6,41±0,51 5,55±0,28 4,96±0,68
Гематокрит, % 1 24,1±0,95 32,8±1,35 31,3±5,72 33,9±5,67
2 26,6±1,15 29,1±3,92 25,3±2,57 22,43±2,72
Лейкоциты, 109/л 1 10,9±1,28 15,6±3,81 14,6±2,61 15,9±2,57
2 10,4±1,02 12,9±1,42 12,23±2,71 11,8±5,51
Тромбоциты, 109/л 1 211,3±20,9 233,5±13,42 208,3±20,57 240,3±1,2
2 212,6±22 232,0±35,94 213±39,34 285,0±42,0
Гематокрит, % 1 24,1±0,95 32,8±1,35 31,3±5,72 33,9±5,67
2 26,6±1,15 29,1±3,92 25,3±2,57 22,43±2,72
Полученные результаты исследований свидетельствуют, о том что разработанный биопрепарат не оказывает отрицательного влияния на гематологические показатели крови организма крупного рогатого скота. Из данных табл. 1 видно, что после первичной и повторной вакцинации увеличивается содержание гемоглобина. Так, после двукратной иммунизации значение содержания гемоглобина в крови вакцинированных коров возросло с (98,6±3,38) г/л до (136,0±18,14) г/л, что на 40,5% выше, чем приведенный показатель в контрольной группе.
Увеличение гемоглобина указывает на более активный биосинтез эритроцитов в кроветворных органах, что отражено в полученных результатах. Так, на 45-е сутки после вакцинации содержание эритроци-
тов в пробах крови иммунизированных коров достигло значения (6,8±1,05)*1012/л, что на 32,5% выше, чем у животных группы контроля. Эти данные подтверждаются процентом гематокрита.
Вакцинация коров инактивированной вакциной оказала положительное влияние на лимфопоэз с увеличением числа лейкоцитов. Так, в опытной группе достоверно определено увеличение количества белых кровяных клеток до иммунизации с (10,9±1,28) до (16,9±4,57)*109/л на 45-е сутки после вакцинации.
В исследуемых пробах крови количество тромбоцитов практически не изменялось с аналогичными показателями коров группы контроля на всех сроках исследования.
Результаты изучения содержания общего белка представлены в табл. 2.
Таблица 2. Показатели содержания общего белка в сыворотке крови вакцинированных коров
Показатели Группы До вакцинации На 10-е сутки На 21-е сутки На 45-е сутки
Общий белок, г/л 1 67,8±5,56 75,9±2,19 75,5±5,22 67,8±3,37
2 77,2±3,35 76,2±2,52 75,3±1,93 68,4±7,49
Из полученных результатов по показателям содержания общего белка в сыворотках крови коров опытной и контрольной групп установлены незначительные отклонения. Отмечено повышение уровня общего белка на 10-й день у коров опытной группы с (67,8±5,56) до (75,9±2,19) г/л. Данные изменения указывают на активизацию иммунологических процессов в организме вакцинированных коров.
В конце опыта общий белок понижался до первоначальных показателей у животных группы опыта, что свидетельствует также о том, что вакцина не влияет отрицательно на белковый обмен животных после иммунизации.
В контрольной группе содержание общего белка удерживалось на одном уровне на всех сроках исследования и только на 45-е сутки незначительно понизилось по отношению к данным, установленным в начале опыта.
Увеличение содержания белка в сыворотках крови животных опытной группы на 10-е и 21-е сутки после вакцинации и понижение его количества в последний срок исследования до установленных показателей в начале опыта указывает на безвредность разработанного биопрепарата и отсутствие негативного влияния вакцины на гепатоци-ты и клетки ретикуло-эндотелиальной системы костного мозга.
Приведенные выводы подтверждаются результатами исследований активности ферментов аланинаминотрансферазы (АлАТ) и аспартата-минотрансферазы (АсАТ).
Результаты определения количества АлАТ и АсАТ в сыворотках крови коров после вакцинации их инактивированной вакциной представлены в табл. 3.
Таблица 3. Количество АлАТ и АсАТ в сыворотках крови вакцинированных коров
Показатели, ед/л Группы До вакцинации На 10-е сутки На 21-е сутки На 45-е сутки
Аланинамино-трансфераза 1 35,4±4,21 28,6±8,54 38,7±2,58 33,9±2,57
2 35,9±3,91 45,5±5,43 31,6±13,10 36,6±1,40
Аспартат- аминотрансфера- за 1 58,6±2,92 28,7±13,76 55,8±12,49 50,1±4,44
2 55,3±3,85 51,7±5,58 55,9±2,64 41,3±5,09
Как видно из полученных результатов на 10-й день опыта по отношению к контролю активность исследуемых ферментов понижалась в сыворотках крови коров опытной группы с (35,4±4,21) до (28,6±8,54) ед/л для АлАТ и с (58,6±2,92) до (28,7±13,76) ед/л для АсАТ. Однако на 21-е и последующие сутки данные показатели приходили в норму и были близки к установленным в начале опыта. Сходные данные с группой контроля указывают на отсутствие токсического влияния разработанного биопрепарата на печень вакцинированных коров.
В табл. 4 приведены полученные результаты определения количества холестерина и мочевины в сыворотках крови коров, иммунизированных инактивированной вакциной против ротавирусной инфекции и эшерихиоза крупного рогатого скота, в сопоставлении с группой животных, которых использовали в качестве контроля.
Таблица 4. Количество мочевины и холестерина в сыворотках крови иммунизированных коров
Показатели, ммоль/л Группы До вакцинации На 10-е сутки На 21-е сутки На 45-е сутки
Холестерин 1 4,5±0,18 3,5±0,56 3,6±1,16 3,8±0,24
2 3,6±1,13 3,4±0,45 4,0±0,87 2,7±0,54
Мочевина 1 3,5±0,55 1,9±0,81 1,3±0,46 1,7±0,48
2 2,6±0,25 1,5±0,65 2,4±0,16 2,6± 1,11
Р < 0,05.
На всех сроках исследования количество холестерина с незначительными колебаниями оставалось в пределах установленных физиологических норм, что подтверждает безвредность и отсутствие токсического воздействия на клетки печени.
Концентрация мочевины у здоровых животных колеблется от 3,33— 6,66 ммоль/л. Из полученных данных видно, что уровень содержания мочевины в крови был понижен практически на всех сроках исследования, что может свидетельствовать о недостаточном белковом кормлении животных в сухостойный период. Так как коровам контрольной группы биопрепараты не вводились, то можно судить об отсутствии токсического воздействия и негативного влияния на почки иммунизированных животных.
При анализе полученных данных о количестве в сыворотках крови кальция, фосфора установлено, что на протяжении всех сроков иссле-
дований уровень содержания кальция и фосфора с незначительными колебаниями удерживался в крови в установленных нормах. Соотношение кальция к фосфору не нарушалось по отношению к установленным нормам (1,5:1).
Результаты исследований по определению минеральных веществ сывороток крови иммунизированных коров представлены в табл. 5.
Таблица 5. Количество минеральных веществ в сыворотках крови вакцинированных коров
Показатели, ммоль/л Группы До вакцинации На 10-е сутки На 21-е сутки На 45-е сутки
Кальций 1 2,4±0,03 2,7±0,05 2,5±0,20 2,3±0,11
2 2,6±0,03 2,6±0,08 2,6±0,10 2,5±0,17
Фосфор 1 2,1±0,05 1,8±0,11 2,03±0,18 2,1±0,09
2 1,9±0,11 1,9±0,42 2,00±0,15 1,9±0,12
Кальций Фосфор 1 1,1±0,6 1,5±0,45 1,2±0,11 1,1±0,22
2 1,3±0,27 1,3±0,19 1,3±0,66 1,3±0,41
Отсутствие достоверных изменений в значениях кальция и фосфора и анализ показателей на основании общепринятых норм кальциево-фосфорного отношения дают нам основание считать, что применение инактивированной вакцины не влияет негативно на минеральный обмен иммунизированных животных.
Заключение. Результаты исследований позволяют утверждать, что двукратная вакцинация коров инактивированной вакциной против ро-тавирусной инфекции и эшерихиоза крупного рогатого скота не оказывает отрицательного воздействия на гематологические и биохимические показатели организма иммунизированных животных.
ЛИТЕРАТУРА
1. Дубина, И.Н. Методические указания по биохимическим исследованиям крови животных с использованием диагностических наборов / И.Н. Дубина. Витебск, 2007. 24с.
2. Зелютков, Ю.Г. Коррекция иммунных процессов у новорожденных телят с инфекционным энтеритом гипериммунной сывороткой / Ю.Г. Зелютков, В.А. Машеро,
B.В. Зайцев // Ученые записки ВГАВМ: матер. III междунар. науч.-практ. конф. г. Витебск, 4-5 ноября 1999 г. Т. 35. Ч.1. Витебск, 1999. С. 56-58.
3. Красочко, П.А. Изучение гематологических показателей у коров после вакцинации трехвалентной вакциной против вирусной диареи, рота- и коронавирусной инфекций / П.А. Красочко, В.В. Малашко, А.М. Ламан // Ветеринарная наука - производству: сб. науч. ст. / РУП «Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелес-ского»; науч. ред. А.А. Гусева. Т. 39. Минск: РУП «Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелесского», 2007. С. 152-159.
4. Красочко, П.А. Профилактическая эффективность инактивированной вакцины против ротавирусной инфекции и эшерихиоза крупного рогатого скота / П.А. Красочко, Ю.В. Ломако, Я.П. Яромчик // Ученые записки УО «ВГАВМ»: Витебск, 2009. Т.45. Вып. 2. Ч.1. С.65-68.
5. Медведев, А. П. Содержание кальция и фосфора в крови волов-продуцентов гипериммунной сыворотки против эшерихиоза животных / А.П. Медведев, Т.П. Иванова // Ученые записки ВГАВМ: матер. науч. -практ. конф. по результатам научных исследований ВГАВМ за 1999 год, г. Витебск, 25-26 апреля 2000 г. Т. 36. Ч.1. Витебск, 2000.
C. 54-55.
6. Методические указания по отбору биологического материала для проведения лабораторных исследований: утв. ГУВ МСХ и П РБ 27.11.2007 г. / И.Н. Дубина. Витебск: ВГАВМ, 2008. 20 с.
7. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: справочник / под. ред. проф. И.П. Кондрахина. М.: Колос, 2004. 520 с.
8. Национальная инновационная система Республики Беларусь. Минск: ГУ «БелИ-са», 2007. 112 с.
УДК 619:615.322:614.31:636.2/.3
ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ЭКСПЕРТИЗА ПРОДУКТОВ
УБОЯ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ ЖИДКОГО ЭКСТРАКТА САБЕЛЬНИКА БОЛОТНОГО ПРИ ЛЕЧЕНИИ ОВЕЦ, БОЛЬНЫХ СТРОНГИЛЯТОЗАМИ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТА
Л.В. ТИТОВИЧ
УО «Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины» г.Витебск, Республика Беларусь, 210026
(Поступила в редакцию 25.01.2010)
Введение. В настоящее время перед агропромышленным комплексом и всеми отраслями народного хозяйства Республики Беларусь стоят сложные задачи, суть которых заключается в обеспечении населения в достаточном количестве доброкачественными продуктами питания, а промышленности - сельскохозяйственным сырьем. Важная роль в решении этих проблем принадлежит специалистам ветеринарной медицины, так как они обеспечивают сохранность и увеличивают продуктивность животных в хозяйствах, предохраняют людей от болезней, общих для человека и животных, осуществляют контроль за вете-ринарно-санитарным качеством продуктов питания [10,14,15]. Многие паразитарные болезни наносят огромный экономический ущерб из-за падежа животных, снижения прироста массы, недополучения приплода, больших затрат на проведение лечебно-профилактических мероприятий. Природно-климатические условия Беларуси способствуют широкому распространению гельминтозов сельскохозяйственных животных. Часто паразитозы, например такие, как стронгилятозы желудочно-кишечного тракта овец, при своей широкой распространенности в республике протекают без выраженных клинических признаков, но больные животные отстают в росте и развитии и по этой причине нередко выбраковываются. Поэтому вполне естественно, что не ослабевает внимание исследователей и практических ветеринарных специалистов к этой болезни и ее возбудителю [10,12,13].
На сегодняшний день в животноводстве накоплен большой опыт борьбы с паразитарными болезнями. Контроль гельминтозов осуществляется посредством лечебных и профилактических мероприятий, эффективность которых в большей степени зависит от качества и методов применения лекарственных средств. Профилактику гельминтозов и лечение животных осуществляют в основном препаратами химического происхождения, негативное воздействие которых сказывается не только на возбудителя, но и на организм хозяина. В отличие от синтетических препаратов лекарственные средства из лекарственного рас-
