CC BY
55
УДК 636.52/.58.085.16
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ДИГИДРОКВЕРЦЕТИНА ФЛАВИТ И ЕГО СМЕСИ С ИРОБИОТИКОМ ПРИ ВЫРАЩИВАНИИ БРОЙЛЕРОВ
Бовкун Г.Ф., к.вет.наук, доцент Овсеенко Ю.В., к.биол.наук, доцент
ФГБОУ ВПО «Брянская государственная сельскохозяйственная академия»
Резюме. Дигидрокверцетин оказывал позитивное влияние на жизнеспособность, динамику роста, развитие морфологических структур кишечника, а в смеси с пробиотиком на микробиоценоз, уровень фагоцитоза, обладал лечебным действием при токсической дистрофии у цыплят - бройлеров.
Ключевые слова: дигидрокверцетин, микробиоценоз, пробиотик, фагоцитоз, морфологические структуры, токсическая диспепсия.
Введение. Современные премиксы для птицы в составе дополнительных компонентов содержат антиоксиданты, ферменты, адсорбенты и стимуляторы кишечной микрофлоры, что обусловлено распространением диарейных заболеваний, микотоксикозов, осложненных свободно радикальной патологией.
Развитие свободнорадикального (перекисно-го) окисления в тканях животных нарушает структуру мембран, снижает общую резистентность организма, создавая предпатологическое состояние. Снижение иммунорезистентности приводит к развитию инфекционных заболеваний. Свободнорадикальная патология по мнению А.И. Журавлева [1] снижает активность вакцино-профилактики и лечения противобактериальны-ми средствами.
P.C. Шемет [6] считает, что причиной сво-боднорадикальных патологий в промышленном птицеводстве является скармливание комбикормов с повышенными перекисными числами жира. И.В. Насонов, Б.Я. Бирман и др [2] экспериментально подтвердили, что скармливание высоко-окисленных жиров птице вызывает снижение резистентности птицы к экспериментальному заражению вирусом ИББ.
Проблема патологий у молодняка животных, связанных с активацией в организме процессов свободнорадикального окисления и, в частности, переоксидного окисления липидов (ПОЛ), является актуальной. Известно, что в развитие воспаления органов пищеварения определенное значение имеет нарушение микроциркуляции и сосудистая патология. В условиях окислительного стресса активизируется цитотоксическая активность ПОЛ, что имеет место по данным А.Г. Шахова [5] при кишечных инфекционных заболеваниях.
Summary. Dihydroquercetin « Flavio» had a positive impact on the viability, growth dynamics, the development of morphological structures of the intestine and mixed with a probiotic on microbioce-nosis, the level of phagocytosis had a heating effect on dystrophy of broiler chickens.
Key words: dihydroquercetin, microbiocenosis, probiotic, phagocytosis, morphological structures, toxic dystrophy.
По данным А.П. Новицкого [3] при длительном хранении кормов и кормосмеси в них, под действием воздуха, влажности, тепла и света, усиливаются процессы окисления, что приводит к разрушению питательных веществ, особенно жиров и жирорастворимых витаминов. Скармливание недоброкачественных кормов пушным зверям приводит к снижению воспроизводительной способности самок, значительному отходу молодняка, замедлению его роста, ухудшению качества шкурок.
Одним из способов предупреждения и подавления процесса окисления в корме является повышение антиокислительной активности путем введения антиоксиданта. В настоящее время в животноводстве все большее внимание уделяют синтетическим антиоксид антам. Согласно ТУ 9296-002-00479592-2000 на смеси кормовые для обогащения комбикормов разрешено использовать такие синтетические окиллители: сантохин, бутилокситолуол, агидол.
В настоящее время по данным отечественных ученых В.В. Фатеева [7], А.П. Новицкого [3] и зарубежных С.Радчевой, В. Средковой и др [4], Ruckerbrusch et al.[8], K.Sahin, O.Kucuk [9]; P.F Surai, J.E Dvorska [10] ведущий антиоксидант в птицеводстве и животноводстве токоферол, нейтрализующий повышенные концентрации креатининкиназы, образующейся в результате стресса.
Одним из ведущих антиоксидантов в мире является дигидрокверцетин (ДГК), обеспечивающим жизнедеятельность человека и сопротивляемость к различным патологиям. Во многих странах ученые вырабатывали природные антиоксиданты из растений (винограда, эвкалипта, японской сакуры, лепестков роз). В 2005 году
коллектив ученых запатентовал технологию производства ДГК Флавит из сибирской сосны.
Цель работы: установить влияние разных доз дегидрокверцетина (ДГК) в смеси с бифидосо-держащим пробиотиком на динамику роста цып-лят-бройлеров кросса «Росс», гематологические показатели, активность фагоцитоза, толстокишечную микробную экологию, морфометрические
Для кормления цыплят использовали комбикормом разных марок. В первые 10 дней жизни -«нулевой», в течение второй декады - «ростовой», в течение третьей декады - «финишный». Конверсию корма определяли соотношением потребляемого корма к приросту цыплят.
Ежедневно осмотром определяли клиническое состояние цыплят, Влияние ДГК и его соче-танного применения с жидким пробиотиком на основе бифидобактерий вида Bifidobacterium gal-linarum штамма ГБ на сохранность, динамику роста, конверсию корма изучали на цыплятах -бройлерах в условиях нерегулируемого микроклимата. Опытные и контрольные группы насчитывали по 40 цыплят.
Опытным группам второй и третьей ДГК назначали в дозе 1 и 0,5 мг/кг живой массы один раз в сутки с питьевой водой. Четвертая группа получала пробиотик с питьевой водой 0,1 г на голову и ДГК в дозе 1 мг на 1 кг живой массы. Пятая группа получала пробиотик и ДГК в дозе 0,5 мг/кг живой массы. Цыплятам шестой группы назначали только пробиотик.
Первую группу составляли интактные цыплята, они получали корм основного рациона. ДГК и пробиотик назначали цыплятам в первую декаду жизни.
В возрасте 10, 20, 30 дней цыплят взвешивали, отмечали сохранность.
В 35-дневном возрасте от цыплят опытных и контрольной групп брали кровь пункцией сердца, стабилизировали гепарином и определяли количество лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобина, общего белка, скорость оседания эритроцитов, гематокрит, процент лимфоцитов, псевдоэозино-филов общепринятыми методами.
Уровень фагоцитоза у опытных и контрольных цыплят изучали в опсонофагоцитарной
показатели пищевода, зоба, мышечного, железистого желудков, разных отделов кишечника, лечебную эффективность ДГК при токсической дистрофии.
Материалы и методика исследований. Был
проведен опыт в течение 35 дней по группам и следующей схеме.
реакции с латексом, определяя фагоцитарный индекс, фагоцитарное число, абсолютное число фагоцитирующих псевдоэозинофилов, бактерицидную емкость крови.
Морфометрические исследования включали определение массы, длины и диаметра пищевода, включая зоб, мышечного, железистого желудков, двенадцатиперстной, тощей, подвздошной, слепой, прямой кишок.
Состояние толстокишечного микробиоценоза изучали, определяя структуру и количество индигенной и факультативной микрофлоры, посевом разных разведений содержимого на элективные среды для выделения бифидобактерий, молочнокислых стрептококков и палочек, эшери-хий, энтерококков, гемолитических стафилококков и гнилостных бацилл, условно-патогенных энтеробактерий, грибов.
Все цифровые данные, полученные в результате опытов, обрабатывали статистически с целью определения критерия достоверности средних арифметических показателей.
Результаты исследований и обсуждение. В условиях нерегулируемого микроклимата за период выпаивания препаратов показатели динамики роста цыплят опытных и контрольных групп были одинаковые, установленное преимущество живой массы опытных цыплят третьей, четвертой и пятой и шестой групп не подтверждалось статистически. Все цыплята были клинически здоровы, активно потребляли корм и сохранность составляла 100%. Конверсия корма у интактных и цыплят второй, четвертой опытных групп была наибольшей 1,31, а в третьей пятой и шестой составляла 1,29.
Увеличение живой массы в опытных группах должно было позитивно повлиять на динамику роста цыплят в дальнейшем. Во вторую декаду
Таблица 1 - Схема опыта
Группы Кол-во голов Условия опыта
1 интактные 40 ОР
2 40 ОР+ ДГК в дозе 1 мг на 1 кг живой массы
3 40 ОР + ДГК в дозе 0,5 мг на 1 кг живой массы
4 40 ОР+ пробиотик + ДГК в дозе 1 мг на 1кг живой массы
5 40 ОР + пробиотик в дозе 0,5 мг на 1 кг живой массы
6 40 ОР+ пробиотик.
жизни цыплятам ДГК не применяли, однако живая масса бройлеров третьей группы, получавшей в первую декаду ДГК в дозе 0,5 мг/кг, превосходила контрольные показатели, что подтверждалось статистически. Процент увеличения живой массы к контролю составлял 7,6, а среднесуточного прироста 9,5.
Положительную динамику роста: увеличение живой массы на 9,3%, среднесуточного прироста на 12,95%, что подтверждалось статистически, отмечали в четвертой группе, получавшей в первую декаду пробиотик и ДГК в дозе 1 мг/кг в смеси с пробиотиком, которые формировали необходимый параметр гомеостаза - микробиоценоз кишечника и нейтрализовали перекисные
соединения. Показатели роста цыплят пятой группы соответствовали параметрам третьей группы и статистически достоверно превосходили показатели роста контрольной группы. Выпаивание про-биотика также обеспечивало положительную динамику роста, процент увеличения живой массы -3,7, а среднесуточного прироста 4,8.
Лучшие результаты динамики роста опытных цыплят третьей, четвертой и пятой групп можно обосновать ингибированием перикисных соединений в ответ на стресс у цыплят на фоне нерегулируемого микроклимата. Сохранность опытных и контрольных цыплят была без изменений и составляла 100%..
Таблица 2 - Показатели динами роста и сохранность цыплят за период опыта
Показатели Группы
1 2 3 4 5 6
Живая масса, г М±м 1055±34,3 1097,1±28,5 1144,2±27,7* 1116,6±21,8 1146,8±28,2* 1158,6±23,7*
Среднесуточный прирост, г 35,1 36,57 38,14 37,22 38,22 38,62
% увеличения живой массы к контролю - 3,9 8,4 9,7 8,7 9,8
% увеличения среднесуточного прироста к контролю - 4Д 8,6 6,03 8,8 10,02
Сохранность, % 100 100 100 100 100 100
Конверсия корма 2,14 2,06 2,06 2,04 2,04 2,01
• Р< 0,05
Активный рост цыплят был в течение третьей декады, свидетельствующий о стимулирующем действии ДГК в дозе 0,5 мг на 1 кг живой массы, пробиотика и смеси ДГК с пробиотиком. Процент увеличения живой массы к контролю в этих группах (третьей, пятой и шестой) составлял от 8,4 до 9,8%, что подтверждалось статистически. Процент увеличения среднесуточного прироста от 6,03до 10,02. Лучшие показатели динамики роста за период опыта были установлены в группе, получавшей пробиотик. Не подтверждена статистически активность роста цыплят под действием ДГК в дозе 1 мг на 1 кг живой массы и в смеси с пробиотиком.
Лучшая усвояемость корма была в группе, получавшей пробиотик (конверсия 2,01), в других опытных практически одинаковой (конверсия 2,04 - 2,06). В контрольной группе усвояемость корма была ниже, конверсия составляла 2,14.
Чтобы подтвердить механизм ростостимули-рующего действия испытуемых препаратов мы провели комплексный анализ ведущих параметров гомеостаза: гематологических показателей, уровня фагоцитоза, состояния микробной экологии слепых кишок опытных и контрольных цыплят.
Гематологические показатели опытных и
контрольных цыплят в возрасте 35 дней не имели существенных различий. Показатель гематокрита не соответствовал норме и характеризовался низкими значениями. Ниже нормы было количество белка в плазме крови у цыплят третьей группы. Количества гемоглобина, лейкоцитов, эритроцитов соответствовало низким показателям нормы. СОЭ у контрольных цыплят и у опытных второй и шестой групп было замедленным, но в нормативных пределах.
Влияние ДГК на иммунологическую реактивность изучали на уровне показателей фагоцитоза. Показатели фагоцитарного индекса (ФИ), фагоцитарного числа (ФЧ), абсолютного числа фагоцитирующих псевдоэозинофилов, бактерицидной емкости крови свидетельствующие о поглотительной емкости крови представлены в таблице 5.
По фагоцитарному индексу крови опытные цыплята превосходили контрольных, но различия этих показателей были не достоверными. Не подтверждалась статистически и достоверность различий фагоцитарного числа.
Таблица 3 - Показатели фагоцитоза опытных и контрольных цыплят (М±м)
Группа ФИ, % ФЧ Абсолют.число фа-гцит.псевдоэоз., тыс. 109 л Бактерицидая емкость крови, тыс 109л
1 30,97±4,68 2,04 ±0,64 2,63±0,31 5,51±2,16
2 35,6±1,24; Р>0,1 1,57±0,26; Р>0,1 2,83±0,32; Р>0,1 4,6±1,25; Р>0,1
3 36,1 ±2,16; Р>0,1 2,45±0,09; Р>0,1 3,45±0,61; Р>0,1 8,54±1,77; Р>0,1
4 36,1±1,96; Р>0,1 3,02±0,23; Р>0,1 4,54±0,24; Р<0,05 13,77±1,72; р<0,05
5 34,03±1,09; Р>0,1 2,61±0,16; Р>0,1 3,47±0,32; Р<0,05 14,02±0,87; Р<0,05
6 36,6±1,4; Р>0,1 2,13±0,4; Р>0,1 3,6±0,05; Р<0,05 7,72±1,44;Р>0,1
Показатели абсолютного числа фагоцитирующих псевдоэозинофилов, бактерицидной емкости крови у цыплят четвертой и пятой групп, получавших ДГК в смеси с пробиотиком, достоверно превосходили показатели контрольных цыплят, что соответствует положению о целесообразности применения антиоксидантов для повышения иммуногенности биологических препаратов [5].
Несмотря на ростостимулирующее и защитное действие пробиотика, его влияния на фагоцитоз заключалось в увеличении абсолютное число фагоцитирующих псевдоэозинофилов превосходящее статистически контрольные показатели. Сочетанное применение пробиотика с ДГК как в дозе 0,5мг/кг, так и 1мг/кг активизировало бактерицидную емкость крови, обеспечивая защитное действие.
Индигенный микробиоценоз группы, получавшей ДГК в дозе 1 мг/кг был представлен только эшерихиями, должного количества лактобацилл и бифидобактерий установлено не было, поэтому динамика их роста не отличалась от контрольных показателей. В структуре облигатной микрофлоры группы, получавшей ДГК в дозе 0,5 мг/кг, отсутствовала должная плотность лактобацилл,
Результаты микробиологических исследований содержимого слепых кишок опытных и контрольных цыплят в возрасте 35 дней представлены в таблице 4. Микробиоценоз кишечника у контрольных и опытных цыплят не был сформирован по компоненту индигенной микрофлоры по причине отсутствия должного количественного уровня лактобацилл, поэтому у контрольных выделяли повышенное количество грибов из рода Candida (6,17±0,91; Р<0,05), подтвержденное статистически, и гемолитические гнилостные бациллы, что свидетельствовало о возможном развитии дисбактериоза.
однако нндигенный микробиоценоз был сформирован по компоненту эшерихий и бифидобактерий, в связи с чем эта группа имела активную динамику роста.
Полноценный микробиоценоз - главный показатель гомеостаза молодняка птиц был сформирован в группах, которым скармливали пробиотик и смеси пробиотика и ДГК, что обеспечивало
Таблица 4 - Характеристика микробной экологии слепых кишок опытных и контрольных цыплят ^ КОЕ/г (М±м)
Наименование микроорганизмов Группы
1 2 3 4 5 6
Протеи - - - - - -
Грибы 6Д7±0,91 4,6±0,65 5,3±0,23 4,95±0.87 5,03±0,78 4,77±0,3
УПЭ - - - - - -
Гемолитические гнилостные бациллы 5±0,7 - - 5,6±0,23 - -
Энтерококки - 5,69±0,64 5±0,95 - 5,47±0,75 5,23±0,51
Эшерихии 7,72±0,98 8,32±0,64 8 8 7,77±0,54 8Д4±0,7
Лактобациллы - - - 7,9±0,78 8,3±0,56 7,95±0,89
Бифидобактерии 8,3±0,98 - 9 9 9 9
100%-ную сохранность, активность фагоцитоза и ростостимулирующее действие.
Морфометрические исследования включали определения массы, длины и диаметра пищевода, включая зоб, мышечного, железистого желудков, двенадцатиперстной, тощей, подвздошной, слепой, прямой кишок.
Выпаивание ДГК и в комплексе с пробиоти-ком не оказало влияние на морфометрические показатели пищевода, зоба, мышечного и железистого желудков. Установленная разница массы этих органов, их длины и диаметра не подтверждалась статистически.
Таблица 5 - Морфометрические показатели тощей кишки опытных и контрольных цыплят (М±м, Р)
Группы Масса, г Длина (L), см Диаметр (D), см
1 17±2,6 96,3±6,43 0,6±0,04
2 21±2,9; Р>0,5 123,2±7,9; Р<0,05 1,1±0,7; Р>0,5
3 19±2,08; Р>0,5 109,3±6,94; Р<0,05 0,9±0,05; Р>0,5
4 20±2,6; Р>0,5 104±12,6; Р>0,5 1±0,06; Р>0,1
5 24±2,9; Р<0,05 106,4±13,7; Р>0,5 0,9±0,07; Р>0,5
6 22±1,6; Р<0,05 107,6±Ю,5; Р<0,05 1±0,08; Р>0,5
Анализ морфометрических показателей двенадцатиперстной, тощей, подвздошной, слепой, прямой кишок свидетельствовал о статистически достоверном увеличении массы и длины тощей кишки в некоторых группах опытных цыплят. Существенных различий диаметра тощей кишки у цыплят контрольной и опытных групп установлено не было. Применение пробиотика способствовало достоверному увеличению массы, длины тощей кишки. Применение смеси с ДГК в дозе 0,5мг/кг и пробиотика способствовало достоверному увеличению массы тощей кишки. Достоверное увеличение длины тощей кишки установлено в группах цыплят, получавших ДГК.
Комплексный анализ ведущих параметров гомеостаза у цыплят под влиянием ДГК свидетельствовал о целесообразности испытания его лечебной эффективности при токсической
дистрофии у цыплят. P.C. Шемет [6] при токсической дистрофии у молодняка и взрослых кур отмечл лечебное действие витамина Е как анти-оксиданта, а также применение аскорбиновой кислоты и сорбентов.
Лечебную эффективность ДГК в дозе о,5 мг/кг живой массы и его смеси с пробиотиком изучали на трех группах цыплят по 20 голов из партий, причиной падежа в которых являлась токсическая дистрофия. Первой группе больных цыплят выпаивали аскорбиновую кислоту, в корм добавляли сорбент - полисорб (контрольная группа). Второй - ДГК, третьей смесь ДГК и пробиотика.. Продолжительность лечения составляла 5 дней, наблюдения за больными вели еще в течение 5 дней. Результаты лечения представлены в табл.6.
Таблица 6 - Результаты лечения токсической дистрофии у цыплят
Периоды Группы, количество погибших
Контрольная Вторая, ДГК Третья, ДГК и пробиотик
Лечебный 10 6 4
Наблюдения 5 0 0
% погибших 75 30 20
Сохранность, % 25 70 80
Выпаивание ДГК в дозе 0,5мг/кг в течение пяти дней оказывало лечебное действие. Погибших за период лечения - 30%, а эффективность лечения составляла 70%. При сочетанном применении ДГК и пробиотика погибших - 20%, эффективность лечения 80%. Тогда как применение по-лисорба и аскорбиновой кислоты в течение 5 дней защищало от гибели только 25% больных цыплят, а количество погибших составляло 75%. Положительные результаты лечения свидетельствуют
о важном этиологическом значении свободнора-дикального окисления и возможности его инги-бирования ДГК. Сочетанное выпаивание ДГК и пробиотика усиливало лечебный эффект за счет подавления факультативной микрофлоры и снятия воспаления слизистой желудочно-кишечного тракта.
Выводы. 1. Применение ДГК в дозе 0,5 мг/кг живой массы в течение первой декады жизни достоверно стимулировало рост цыплят, процент увеличения живой массы к контролю составлял 8,4, среднесуточного прироста8,6, обеспечивало 100%-ную сохранность. Выпаивание ДГК не влияло на гематологические показатели, уровень фагоцитоза, не препятствовало формированию микробиоценоза, способствовало достоверному увеличению длины тощей кишки, что усиливало всасываемость питательных веществ и снижало конверсию корма. Применение ДГК уступало росто-стимулирующей активности бифидосодержащего пробиотика, формирующего полноценный микробиоценоз по компоненту бифидобактерий, активизирующего рост тощей кишки.
2. Сочетанное применение ДГК и пробиотика в дозе 0,5 мг/кг стимулировало рост бройлеров, процент увеличения живой массы к контролю 8,7, а среднесуточного прироста -8,8,- не оказывало негативного влияния на гематологические показатели, активизировало бактерицидную емкость крови, структуру и количественный состав микробиоценоза кишечника, способствовало достоверному увеличению массы тощей кишки.
3. Выпаивание ДГК в дозе 0,5 мг/кг в течение 5 дней больным токсической дистрофией цыплятам оказывало лечебное действие, эффективность которого составляла 70%, а при соче-танном применении с пробиотиком - 80%.
Список литературы. 1. Журавлев А.И. Актуальные проблемы ветеринарной и зоотехнической науки в интенсификации животноводства // Мат. Конф.-М.-1990.-С. 11-12.
2. Насонов И.В., Бирман Б.Я., Захарик Н.В. Влияние кормов с высоким содержанием
перекисных липидов на иммуногенез и патогенез инфекционной бурсальной болезни птиц в экспериментальных условиях// Свободные радикалы, антиоксиданты и здоровье животных. Мат. Международной научно-практической конференции.-Воронеж.-2004. С. 113-116.
3. Новицкий А.П. Применение антиоксидан-тов в рационах пушных зверей// Свободные радикалы, антиоксиданты и здоровье животных. Мат. Международной научно-практической конференции." Воронеж.-2004.С.263 -267.
4. Радичева С., Средкова В., Александров А. Влияние витамина Е на некоторые продуктивные и репродуктивные показатели кур// Свободные радикалы, антиоксиданты и здоровье животных.Мат. Международной научно-практической конференции,- Воронеж.-2004.С. 130 - 133.
5. Шахов А.Г. Роль процессов свободнора-дикального окисления в патогенезе инфекционных заболеваний/ А.Г. Шахов// Свободные радикалы, антиоксиданты и здоровье животных. Материалы международной научно-практической конф,- Воронеж.2004,- С. 3-9.
6. Шемет P.C. Методические рекомендации по диагностике и профилактике токсической дистрофии птиц. -М.: ГУВ МСХ СССР, 1984.-8с.
7. Фатеев В.В. Использование микровита-Е и агидола в рационах норок// Дисс. кнд. С.-х. наук, М., 1998.-101с.
8. Ruckerbrusch A.F., Collins F.Т., Adams A.D. //Poult. Agrobisness, 1999, 6, p. 12 -19.
9. Sahin К., Kucuk О// J. Anim. Physiol. Anim. Nutr., 1999, 85, p. 335-341.
10. Surai P.F., Dvorska L.E.// Feed mux. 2000, 41, p. 235 -243.
УДК 636.52/.58:611.4:636.53
СРАВНИТЕЛЬНАЯ МАКРОМОРФОЛОГИЯ СЕЛЕЗЁНОК ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ КРОССА «СМЕНА-7» И ЦЫПЛЯТ КРОССА ХАЙСЕКС БРАУН
Горшкова1 Е.В., к.вет.н., доцент, Копылова2 C.B., к.б.н., Копылов2 A.C., к.б.н., Зайцева2 Е.В., д.б.н., профессор
ФГБОУ ВПО «Брянская государственная сельскохозяйственная академия»1 ФГБОУ ВПО «Брянский государственный университет имени академика И.Г. Петровского»2
Резюме: Выяснена макроструктура селезенок у кур кросса Хайсекс браун и цыплят-бройлеров кросса «Смена-7» в возрастном аспекте. Проведен сравнительный анализ этих морфологических показателей.
Ключевые слова: селезенка, масса, длина, ширина, обхват, толщина каудального и краниального краев.
The summary: Elucidated macrostructure spleens of hens cross Hajseks brovn and broiler chickens cross "Smena-7" in the age aspect. Carried out a comparative analysis of these morphological parameters.
Keywords: spleen, weight, length, width, girth, the thickness of the cranial and caudal edges.
