CC BY
36
поэтому вопросы о лечении, верной постановке диагноза и продление жизни зверей всегда будут актуальными [2, 14, 15].
Выводы. Капилляриоз широко распространен в условиях зоопарка г. Екатеринбурга и обнаружен у представителей плотоядных млекопитающих 5 семейств из 16 и у представителей 4 семейств хищных птиц из 9 представленных в зоопарке.
Наибольшая экстенсивность инвазии — 66,6% установлена у обыкновенных ежей, что можно связать с тем, что коллекция зоопарка пополняется данным видом животных преимущественно из лесов. У птиц максимальная экстенсивность инвазии (25%) установлена у представителей семейства ястребинных.
Результаты изучения эффективности анти-гельминтиков показали, что испытанные нами препараты — фенбендазол, пиперазина адипинат и фенотиазин — являются высокоэффективными (100%) в отношении возбудителей капилляриоза животных и птиц, следовательно, могут быть рекомендованы для лечения и профилактики этого заболевания.
Литература
1. Сведения об учреждении // Екатеринбургский зоопарк. [Электронный ресурс]. URL: http://xn--80ankoagi.xn--80acgfbsl1azdqr.xn--p1ai/news.
2. Давыдова О.Е., Дорохов В.В., Арсланян Г.Г. К вопросу о заражённости гельминтозами хищных птиц отряда соколо-образных (Falconiformes: Falconidae, Accipitridae) в условиях содержания в питомнике // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. 2016. № 17. С. 148 — 150.
3. Паразитофауна диких плотоядных животных заповедников Дальнего Востока России / Есаулова Н.В., Найденко С.В., Рожнов В.В. [и др.] // Паразитологические исследования
в Сибири и на Дальнем Востоке: матер. III межрегион. науч. конф. паразитол. Сибири и Дальнего Востока, по-свящ. 80-летию проф. К.П. Федорова. ^вос^^ск, 2009. С. 90 - 91.
4. Паразитофауна хищных млекопитающих Уссурийского заповедника | H^. Есаулова, С.В. Hайденко, В.С. Лукаревский [и др.] II Российский паразитологический журнал. 2010. № 4. С. 22 - 28.
5. Есаулова H^. Гельминтозы зоопарковых животных отряда Carnivora и меры борьбы с ними || Актуальные ветеринарные проблемы в зоопарках. 2009. С. 51 — 56.
6. Коновалов А.П. Паразитофауна пушных и других плотоядных зверей в условиях хозяйств центральных областей ^черноземья и Волго-Вятского региона || Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2013. № 1. С. 25 — 27.
7. Димов И.Д. Капилляриоз собак и кошек || VetPharma. 2011. № 8. С. 91 — 92.
8. Senior, D.F. Capillaria plica infection in dogs I D.F. Senior, G.B. Solomon, M.H. Goldschmidt II J. Amer. Vet. Med. Assoc. 1980. V. 176. № 9. Р. 901 — 905.
9. Kirkpatric, C.E. Ivermectin treatment of urinary capillariasis in a dog I C.E. Kirkpatric, G.R. Nelson II J. Amer. Vet. Med. Assoc. 1987. № 191. Р. 701 — 702.
10. Архипов И.А. Антигельминтики: фармакология и применение. М.: Изд-во РАСХ^ 2009. 109 с.
11. Фенбендазол. [Электронный ресурс]. URL: https:||yaparazit. ruIpreparatyIfenbendazol.html.
12. Пиперазина адипинат — инструкция по применению II MEDI.RU. [Электронный ресурс]. URL: https:IImedi.ruI instrukciya|piperazina-adipinat_11700|.
13. Байрамов С.Ю. Использование антгельминтных средств при аскаридозе и капилляриозе кур II Ветеринарная медицина. 2013. № 1. С. 52 — 53.
14. Пасечник В.Е. Методические положения по диагностике и профилактике паразитозов редких животных в условиях зоопарков и цирков II Российский паразитологический журнал. 2012. № 4. С. 125 — 130.
15. Лечебно-профилактическая дегельминтизация диких плотоядных животных (лисица, енотовидная собака) против цестодозов в национальном парке I Ф.И. Василевич, М.Ф. Боровков, Е.М. Хрипунов [и др.] || Hациональный парк «ЗАВИДОВО». 80 лет I Федеральная служба охраны Российской федерации, Российская академия сельскохозяйственных наук. М.: «Деловой мир», 2009. Вып. VII. С. 93 — 94.
Физиолого-биохимический статус цыплят-бройлеров при введении в рацион Chlorella vulgaris Beijer. iPpASC-2014/1
М.В. Сычёва, д.б.н., АА. Торшков, д.б.н., А.Е. Зобиков,
соискатель, ФГБОУ ВО Оренбургский ГАУ; Н.В.Немцева, д.б.н., профессор, ФГБУН ИКВС УрОРАН
Более 50 лет в птицеводстве для профилактики инфекционной патологии и увеличения продуктивности птицы используются субтерапевтические дозы антибиотиков [1]. Однако в последнее время применение кормовых антибиотиков было запрещено во многих странах, поскольку это не только создаёт угрозу возникновения и распространения антибио-тикорезистентных штаммов микроорганизмов, но и приводит к контаминации животноводческой продукции остаточными количествами антибиотиков [2].
В сложившихся условиях особое внимание уделяется поиску новых источников кормов, способов подготовки их к скармливанию, использованию биологически активных веществ и ферментов [3]. К числу указанных альтернатив относится микро-
водоросль хлорелла, клетки которой содержат значительное количество белка, широкий спектр витаминов, в том числе и жирорастворимых, а также микро- и макроэлементы в биодоступной форме [4].
По результатам многих исследований доказана эффективность и перспективность применения суспензии хлореллы не только для повышения продуктивных и воспроизводительных качеств птиц, но и естественной резистентности организма, что обеспечивает высокую сохранность поголовья [5].
Однако для микроводорослей характерны штам-мовые особенности, делающие их уникальными.
Получив обнадёживающие результаты в серии экспериментов по изучению особенностей микробиоценоза толстой кишки цыплят-бройлеров при введении в их рацион штамма Chlorella vulgaris Beijer. IPPASC-2014/1 [6], выделенного из природ-
ной среды на территории Оренбургской области, нами была предпринята попытка оценить влияние данной культуры на физиолого-биохимический статус птицы, что и предопределило цель настоящего исследования.
Материал и методы исследования. Исследование проводили на цыплятах-бройлерах кросса ROSS 308. По принципу аналогов были сформированы две группы по 15 гол. в каждой. При формировании групп подопытных птиц и проведении научных изысканий руководствовались «Методикой проведения научных и производственных исследований по кормлению сельскохозяйственной птицы» [7].
Кормление птиц осуществляли сухими сбалансированными комбикормами с параметрами питательности, соответствующими рекомендуемым нормам кормления ВНИТИП. Птицы имели свободный доступ к корму и воде. Особям опытной группы к основному рациону добавляли суспензию микроводоросли C. vulgaris Beijer. IPPASC-2014/1 с концентрацией 2,8 — 1010 клеток/мл.
Экспериментальный период продолжался с суточного до 40-суточного возраста, в течение которого у птиц отбирали пробы стабилизированной крови и сыворотки в 10-, 20-, 30- и 40-суточном возрасте.
Содержание эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина оценивали на гематологическом анализаторе PCE-90 VetMindray (США). Биохимические показатели определяли в сыворотке крови на спектрофотометре STAT FAX 1904 (США) при помощи наборов фирмы «Ольвекс диагностикум» согласно инструкции. Общий белок в сыворотке крови определяли биуретовым методом [8], мочевину — уреаз-ным/фенол-гипохлоритным методом по конечной точке [9], мочевую кислоту — колориметрическим методом [10], аспартатаминотрансферазу — унифицированным методом Райтмана-Френкеля [11], аланинаминотрансферазу — оптимизированным кинетическим энзиматическим методом [12].
В ходе исследования учитывали живую массу цыплят контрольной и опытной групп путём взвешивания птиц утром, до кормления.
Полученные в ходе исследования численные материалы были обработаны статистически с определением средних значений, среднего квадратичного отклонения и средней ошибки. Достоверность различий сравниваемых показателей оценивалась по t-критерию Стьюдента [13]. Статистическая обработка данных проводилась с помощью автоматизированной программы «Биостатистика».
Результаты исследования. Высокая интенсивность роста живой массы цыплят-бройлеров, а следовательно, и течение обменных процессов, предъявляют особые требования к окислительной способности крови, которая главным образом обусловлена наличием эритроцитов и гемоглобина.
Установлено, что содержание эритроцитов и концентрация гемоглобина в крови подопытных птиц с возрастом имели общую тенденцию к увеличению. При этом у бройлеров контрольной группы эта тенденция имела волнообразный характер, к тому же при использовании суспензии хлореллы в рационе цыплят отмечена меньшая возрастная вариабельность средних значений содержания эритроцитов и концентрации гемоглобина в крови. Лишь в возрасте 20 сут. бройлеры контрольной группы превосходили сверстников опытной по содержанию эритроцитов и концентрации гемоглобина в крови на 0,2 Т/л и 5 г/л, во все остальные изучаемые возрастные периоды средние значения этих показателей были выше у птиц опытной группы на 5,2 и 8,0 % соответственно.
Поскольку в гемоглобине сконцентрирована большая часть железа организма, можно предположить, что применение суспензии хлореллы стимулирует метаболизм этого элемента уже на этапе всасывания его в желудочно-кишечном тракте.
Высокое содержание гемоглобина одновременно с преобладанием количества эритроцитов в крови птиц, получивших хлореллу, позволяет утверждать, что кислородная ёмкость крови поддерживается на высоком уровне и в функциональном отношении эритроциты у птиц этой группы более эффективны в транспорте газов.
Высокий уровень метаболизма, в частности анаболическая его фаза, невозможен без своевременной поддержки пластическими и энергетическими материалами.
По результатам исследования в течение всего экспериментального периода по содержанию общего белка в сыворотке крови цыплята, получавшие суспензию хлореллы, превосходили интактных бройлеров. Только на 20-е сут. эксперимента общий белок сыворотки крови птиц опытной группы был несколько ниже, чем в контроле, составив 25,9+2,55 г/л и 26,2+1,19 г/л соответственно. К месячному возрасту птицы опытной группы имели наибольшую концентрацию общего белка в крови (29,0+0,93 г/л).
Уровень мочевой кислоты, являющейся основным конечным продуктом белкового обмена птиц, не имел однозначной зависимости от применения хлореллы в рационе. Установлено, что в возрасте 10 и 20 сут. концентрация этого метаболита была выше в сыворотке крови бройлеров опытной группы, составив 348,4+112,4 и 320,8+64,69 мкмоль/л против 322,3+63,87 и 226,5+30,91 мкмоль/л в контроле. Максимальные значения этого показателя у цыплят обеих экспериментальных групп отмечены в 10-суточном возрасте, что, вероятно, связано с накоплением конечных продуктов азотистого обмена в течение эмбрионального периода развития птиц и последующим переключением ювенального типа обмена веществ на постювенальный [14].
Мочевина может выступать как индикатор расхода белкового фонда. Замедление её синтеза говорит о накоплении белка в крови. Концентрация мочевины в сыворотке крови бройлеров опытной группы имеет общую тенденцию к снижению с возрастом от 2,5+0,15 до 2,0+0,03 ммоль/л, тогда как в контрольной группе минимальные значения этого показателя установлены в возрасте 10 сут. (1,2+0,07 ммоль/л). Отметим, что уже с 20-суточного возраста и до конца экспериментального периода концентрация мочевины в сыворотке крови бройлеров, получавших суспензию хлореллы, была выше таковой у птиц контрольной группы в среднем на 23,6%, что подтверждается и более высоким уровнем концентрации общего белка в этот период.
Таким образом, о соответствии уровня протеинового питания биологическим потребностям организма мы судили по концентрации общего белка, мочевины и мочевой кислоты в сыворотке крови. Известно, что изучение этих показателей совместно с активностью трансаминаз позволяет характеризовать функциональное состояние печени как одного из важнейших органов, участвующих во всех сторонах обмена веществ, в том числе и белковом.
Возрастные изменения активности аспарта-таминотрансферазы носили разнонаправленный характер, тем не менее в возрасте 40 сут. средние значения рассматриваемого показателя у птиц обеих групп оказались одинаковыми (150,3+18,88 Ед/л — в опыте и 150,5+5,66 Ед/л — в контроле).
Динамика активности аланинаминотрансферазы (АлАТ) в сыворотке крови птиц изучаемых групп на протяжении всего эксперимента была сходной, при этом в возрасте 10 сут. активность фермента при использовании хлореллы была значимо выше, чем в контроле (Р<0,01). Максимальной активности АлАТ в крови птиц как контрольной, так и опытной групп достигает в 30-суточном возрасте. Последующие наблюдения выявили снижение значений этого параметра до 11,4+4,29 Ед/л у птиц контрольной группы и до 11,7+3,30 Ед/л — у цыплят-бройлеров, получавших хлореллу. Следует отметить, что описанные изменения не имели достоверной разницы, т.е. были на уровне тенденций.
Ферменты переаминирования катализируют межмолекулярный перенос аминогруппы между амино- и кетокислотами и играют значимую роль в поддержании метаболизма и интеграции азотистого и углеводного обменов. В периферической крови аминотрансферазы в физиологических условиях находятся в незначительных концентрациях. АлАТ как и АсАТ содержится в скелетных мышцах, печени, сердце. В сердечной мышце её значительно меньше, чем АсАТ. Самых больших концентраций АлАТ достигает в печени. Существенное увели -чение активности трансфераз в сыворотке крови у птиц может свидетельствовать о функциональной неполноценности и повреждении этих органов. Результаты нашего исследования показали от-
носительную стабильность активности изучаемых ферментов в крови бройлеров опытной группы, что наряду с другими показателями, характеризующими уровень белкового обмена, свидетельствует об отсутствии негативного влияния суспензии хлореллы на функциональность печени и активизацию метаболических процессов в организме.
Отмеченные изменения морфобиохимических параметров крови у цыплят-бройлеров, получавших суспензию хлореллы, обусловили изменения продуктивных качеств этой птицы.
При анализе результатов экспериментов установлено, что эффект от применения суспензии хлореллы в качестве биодобавки начал проявляться в первые 10 сут. наблюдения: живая масса цыплят-бройлеров опытной группы на 2,7% превышала аналогичный показатель в контроле (Р<0,05). Птицы, не получавшие суспензию хлореллы, уступали цыплятам-бройлерам опытной группы по живой массе на 20-е и 30-е сутки эксперимента на 83 г (Р<0,05) и 64 г (Р<0,001) соответственно. В возрасте 40 сут. птицы, получавшие хлореллу, превосходили по живой массе аналогов контрольной группы на 5% (Р<0,001). Анализ изменения живой массы показал, что к концу экспериментального периода среднесуточный прирост живой массы у бройлеров опытной группы на 2,5 г (5,1%; p<0,001) был выше, чем в контроле.
Аналогичная закономерность наблюдалась при анализе динамики массы полупотрошёных тушек птицы. Достаточно отметить, что преимущество цыплят-бройлеров опытной группы по массе полупотрошёных тушек составляло от 11,5 г (Р<0,05) в 10-суточном возрасте до 106 г в конце эксперимента (Р<0,01).
Выводы. Введение в рацион птицы C. vulgaris Beijer. IPPAS C-2014/1 стимулирует гемопоэз и оказывает положительное влияние на физиолого-биохимический статус цыплят-бройлеров, интенсифицируя белковый обмен, что проявляется в увеличением концентрации общего белка и снижении концентрации мочевины и мочевой кислоты в сыворотке крови цыплят опытной группы. Указанные изменения морфо-биохимических параметров крови бройлеров опытной группы способствуют повышению их продуктивности.
Учитывая вышеизложенное, дальнейшее изучение возможности использования нового штамма зелёной водоросли C. vulgaris Beijer. IPPAS C-2014/1 в качестве инновационного кормового продукта для сельскохозяйственной птицы является актуальной задачей.
Литература
1. Wati T., Ghosh T., Syed B. Comparative efficacy of a phytogenic feed additive and an antibiotic growth promoter on production performance, caecal microbial population and humoral immune response of broiler chickens inoculated with enteric pathogens // Anim. Nutr. 2015. Vol. 1. P. 213 - 219.
2. Goodarzi M. Nanekarani S., Landy N. Effect of dietary supplementation with onion (Allium cepa L.) on performance, carcass traits and intestinal microflora composition in broiler chickens // Trop. Dis. 2014. Vol. 4. P. 297 - 301.
3. Кононенко С.И. Продукты переработки семян рапса в кормлении сельскохозяйственных животных и птицы // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2016. № 117. С. 281 - 301.
4. Хлорелла и её применение в птицеводстве // Г.А. Плутахин, Н.Л. Мачнева, А.Г. Кощаев [и др.]. // Птицеводство. 2011. № 5. С. 23 - 25.
5. Мажитов С.Р., Галина Ч.Р., Гадиев Р.Р. Эффективность применения суспензии хлореллы в рационах гусей родительского стада // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2015. № 5(55). С. 160 - 163.
6. Сычёва М.В, Немцева Н.В. Особенности микробиоценоза толстой кишки цыплят-бройлеров при введении в рацион Chlorella vulgaris Beijer. IPPASC-2014/1 // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2018. № 2 (70). С. 174 - 176.
7. Методика проведения научных и производственных исследований по кормлению сельскохозяйственной птицы:
рекомендации / И.А. Егоров, Т.М. Околелова, А.Н. Тишенков [и др.]. Сергиев Посад: ВНИ ТИП. 2004. С. 17 - 25.
8. Weichselbaum T.E. Determination of total proteins // J. Clin. Pathol. 1946. Vol.7. P. 40.
9. Fawcett J.A., Scott J.E. A rapid and precise method for the determination of urea // J. Clin. Pathol. 1960. Р. 156 - 159.
10. Schultz A. Uric acid // J. Clin. Pathol. 1984. Р. 1184 - 1187.
11. Reitman S., Frankel S. A colorimetric method for the determination of serum glutamic oxalacetic and glutamic pyruvic transaminases // J. Clin. Pathol. 1957. Р. 53 - 56.
12. Murray R. Alanine aminotransferase // J. Clin. Pathol. 1984. Р. 1088 - 1090.
13. Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: Гос. изд-во мед. лит., 1962. 180 с.
14. Торшков А.А. Изменение гематологических показателей цыплят-бройлеров при применении арабиногалактана // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2010. № 28(1). С. 204 - 206.
Факторы, влияющие на титр антител при вакцинации птицы в условиях промышленного производства
ОВ.Хотмирова, к.б.н, ФГОУ ВО Брянский ГАУ
Важным условием профилактических и оздоровительных мероприятий остаётся исследование напряжённости иммунитета ко всем инфекционным заболеваниям, которые прививаются в конкретном птицехозяйстве, а также при переходе на другую вакцину или на другую схему вакцинации [1—3].
Применяемые в условиях предприятия программы вакцинации птицепоголовья с использованием живых и инактивированных вакцин обеспечивают эпизоотическое благополучие хозяйства по инфекционному бронхиту птиц [4]. Для эффективного проведения вакцинации является важным выполнение требований по хранению, транспортировке и применению вакцины [5, 6].
Целью исследования было изучение влияния различных факторов на титр антител у птицы после вакцинации в условиях промышленного производства.
Материал и методы исследования. Исследование проводили на птицеводческом предприятии закрытого типа, расположенном в Брянской области, на одновозрастном птицепоголовье кросса Росс 308. Возраст цыплят — от суток и до отправки на бойню (125 — 140 сут.). Поголовье площадки составляло 72400 гол. ремонтного молодняка, при этом в каждом корпусе содержалось 12800 гол. Всего на площадке было пять корпусов, где содержались куры, и один корпус, где содержались петухи.
Схема применяемой вакцинации против инфекционного бронхита кур (ИБК) представлена в таблице 1.
Для проведения исследования на напряжённость иммунитета у птиц была отобрана кровь. С каждого корпуса было отобрано 35 образцов из разных мест корпуса (методом конверта). Отбор крови осуществляли в первые сутки (контроль
материнского иммунитета) путём отрезания головы и сбора крови, в дальнейшем отбор производили из-под крыла путём прокола подкрыловой вены. Кровь собирали в одноразовые пробирки, которые орошались физраствором). Далее из крови отделяли сыворотку путём центрифугирования, помечали каждый корпус в отдельности и замораживали. Каждую партию комплектовали из птиц одного возраста для получения достоверных результатов. Сыворотку крови отбирали в течение всего тура, каждые 45 дней, до проведения перекрёстной вакцинации.
До 140-суточного возраста птицы находились на площадке ремонтного молодняка, после чего их переводили на площадку родительского стада, где разделили на разные весовые группы: в 1 — 4-м корпусах содержались птицы массой 2100 г, соответствующие по весу средней птице, в 5-м корпусе — лёгкой, массой 1900 г и менее, в 6-м корпусе — тяжелой птице массой 2250 г и более. Корпуса комплектовали из кур и петухов в соотношении 10:1.
Отбор материала на родительском стаде происходил таким же способом, как и на ремонтном. Сыворотку крови отбирали в один день. Затем
1. Схема вакцинации и применяемая вакцина против инфекционного бронхита кур
Возраст птиц, сут. Вакцина Метод вакцинации
12 Нобилис IB 4/91 спрей
45 Нобилис IB Ма5 спрей
80 Нобилис IB 4/91 спрей
85 Севак ND-IB-IBD-EDS внутримышечно
120 НобилисRt+ +Ibmulti+G+ND внутримышечно
