CC BY
13
лить ни одного штамма патопееных ¡или им подобных организмов. Чашки с Эвдо, засеянные со сред накопления, изобиловали колониями кишечной палочки, что. также является до некоторой степени подтверждением антагонизма между кишечной палочкой и патогенной микрофлорой. I
Непосредственный же посев осадка с фильтра на среду Эндо дал возможность выделить несколько патогенных штаммов. Главным недостатком последнего метода является то, что высевать на твердую среду с фильтра возможно лишь ¡ничтожную [часть .сконцентрированной на фильтре микрофлоры.
Из сказанного ясно, что существующие методы исследования воды на тифозно-паратифозную группу далеко не удовлетворительны. Несмотря на это, удалось выделить из речной воды патогенные микробы.
Описанные опыты ¡позволяют сделать следующие выводы:
1. Методика выделанная патогенных ¡микробов из воды нуждается в усовершенствовании.
2. Путем применения ультрафильтров можно обнаружить в воде микробы тифозво-паратифозной группы.
Е. С. ЧЕРКАССКИЙ
Дезинфекция шерсти тяжелыми растворами из группы хлорзамещенных углеводородов
Из кафедры микробиологии Московского зооветинститута (зав. кафедрой
Н. А. Михин)
Крайне неудовлетворительное состояние практики дезинфекции шерсти, как зараженной спорами .сибирской язвы, так и подозрительной по такому заражению, обусловливается в основном двумя причинами:
1. Методы, безусловно гарантирующие полное обеззараживание •(например, текуче-¡паров ой), пагубно. влияют на качество шерсти, резко ухудшая ее главные технологические .свойства (крепость, растяжимость и т. д.), и поэтому не могут применяться с профилактической целью. •
2. Методы, обеспечивающие стопроцентное обеззараживание шерсти при уравнительно незначительном допустимом повреждении шерстяного волокна, исчерпываются горячей дезинфекционной мойкой шерсти в установке так называемого ливерпульского типа (кстати говоря, не разрешающей положительно вопроса о сортировке шерсти и не устраняющей опасности заражения в сортировочном цехе). Эта ¡установка чрезвычайно дорога, сложна и ¡пока у ¡нас в Союзе не применяется1.
Указанные обстоятельства вынуждают искать новых ¡путей и методов дезинфекции шерсти.
Вопрос о ¡проверке дезинфекционных свойств (спор:и|цидности) дихлорэтана, дихлорэтилена, трихлозтана., трихлоэтилена, тетрахлор-
1 См. нашу статью в журнале «Шерстяное дело», № 7, стр. 22, 1936 г.
этана, тетрахлорэтилена и других галоидозамещенных углеводородов возник главным образом потому, что указанные химикаты-растворители предложены были Всесоюзным обществом Союзза-готшерсти ИНЖ..А. И. Матецким (НИИШ) для экстрагирования из шерсти жиропота (добыча ланолина), а также в связи с рядом теоретических соображений (например, наличие в молекуле упомянутых химикатов высоко бактерицидного хлора и т. п.) о бактери-цидности спиртово-водной смеси трихлорэтилена по отношению к Achorion Thrychophyton, Staphylococcus и даже В. subtilis.
В порядке -предварительного исследования была поставлена работа .по испытанию спорицидности дихлорэтана, наиболее дешевого и доступного, хотя и менее бактерицидного из группы углеводородов.
Методика проведенной нами работы заключается в- следующем. Изготовленные из грязных шерстей (анатолийской и тифтика) незащищенные и защищенные кровью шерстяные тест-объекты, каждый весом 1 г, заражались 0,3 см3 семидневной споровой эмульсии ¡первой вакцины антракса, содержащей 1,5 млрд. бактерийных тел в 1 см3 и предварительно проверенной на чистоту, вирулентность, патогены ость и термоустойчивость. После заражения тест-объекты в те-нение 7 дней подсушивались в эксикаторе над хлористым кальцием.
Для! заражения бралась первая вакцина антракса, потому что применение натуральной культуры антракса для предварительных исследований мы считали необязательным и в условиях вуза нежелательным:.
Споровая эмульсия первой вакцины антракса проводилась ¡нами через ряд сред и неоднократно пассировалась через белых мышей. Вирулентность ее характеризуется падежом белых мышей через 18 часов после под-кожной инъекции 0,2 см3 смыва с агара, содержащего 1,5 -млрд. бактерийных тел в 1 см3, патогенноеть— характерной п ат о л о г о - ан ат о мич-е-ско й картиной антракса, термоустойчивость— способностью выдерживать кипячение при 100° в течение 15 минут.
По окончании воздействия испытуемого дезагента тест-объекты отжимались пинцетами ad maximum, обильно промывались водой и переносились на 1 час для подсушки и удаления остатков дихлорэтана в сушильный шкаф, отрегулированный на 42°. По истечения этого срока -каждый тест-объект ивэделычался по обычной принятой бактериологической методике е особой стерильной фарфоровой ступке и растирался с небольшим количеством стерильной дестил-лированной воды. Приготовленная таким образом эмульсия помещалась в стерильную центрифужную пробирку и нагревалась в водяной бане при 65—67° в течение 20 минут, после чего центрифугировалась 30 минут при 3 000 оборотах. Взмученный с небольшим количеством жидкости осадок в-ысевался на 2 пробирки с обыкновенным мясо-пептонным бульоном, 2 пробирки агар-агара и 1 чашку Петри. Кроме того, от каждого теста 0,2 см? эмульсии вводилось подкожно ¡белым мышам.
Наблюдение за ростом на питательных средах производилось ежедневно в течение 21 дня, а за мышами—в течение 30 суток.
Павшие мыши, как правило, немедленно вскрывались.; из крови1 их сердца, селезенки, печени и- инфильтрата на месте инъекции брались для исследования мазки и делались высевы на среды.
Защищенные и незащищенные тест-объекты были помещены) в 7 изолированных один от другого стеклянных сосудах с чистым, дихлорэтаном, причем соотношение веса шерстяных тест-объектов к испытуемому дезагенту составляло 1 : 25. Экспозиции были-следующие:
Опыт 1 — ЭКСПОЗИЦИЯ
10 минут 15 »
» 2 — » » 3 — а
» 4 — »
20 25 30
»5 —• »
6 - »
. 40
Контрольные тест-объекты на 46-й экспозиции погружались в физиологический раствор поваренной соли.
Указанные экспозиции были взяты, исходя из возможного срока технологической обработки (экстрагирования) грязной шерсти применительно к режимам экстракционной установки Гекмана, применяемой для экстрагирования жира из тряпья на фабрике им. Кутузова в Горьком,
Во всех шести опытах и во всех ¡без исключения случаях нами отмечен характерный рост колоний антракса на питательных средах через 18—36 часов и гибель мышей от антракса на вторые-третьи сутки. Контрольные тесты давали рост антракса через 18—24 часа, гибель мышей от антракса — через 18 часов.
Таким образом в этой стадии опытов с дихлорэтаном результаты оказались безусловно отрицательными.
Затем нами было поставлено еще 3 опыта с применением тестов, приготовленных описанным путем и исследованных по той же самой методике, а именно:
Опыт 71—-экспозиция 1 час. В качестве испытуемого дезагента взяты 20% дихлорэтана, 70 % ректифицированного спирта и 10% дестиллированной воды.
Опыт 8—экспозиция 2 часа. Дезагент—■чистый дихлорэтан. Опыт 9 — экспозиция 3 часа. Дезагент — чистый дихлорэтан. Во всех случаях на питательных 'средах рост антракса отсутствовал при- наблюдении за посевами в течение 21 дня. Что же касается биологической пробы на мышах, то падеж при седьмом опыте произошел на четвертые сутки от антракса, при восьмом — падеж на восьмые сутки, но не от антракса, девятый же опыт не дал падежа в течение 30-суточного наблюдения.
1. Дихлорэтан в экспозициях до 40 минут для дезинфекции сибиреязвенной шерсти не ¡пригоден.
2. Дихлорэтан в соединении со спиртом и водой при экспозиции в 1 час не обладает достаточным спорицидным действием,
3. Воздействие дихлорэтана в течение 2 и 3 часов дает осно-вание предполагать, что использование дихлорэтана и других, более токсичных хлорзамещенных углеводородов (тетрахлорэтилен и др.) может обеспечить положительный эффект при дезинфекции зараженной антраксом, шерсти, . если экспозиции достаточно продолжительны. Работа б этом направлении должна быть продолжена
1 Взята была ориентация на рецептуру д-ра Gabbano Luigi, описанную в Практическом руководстве по дезинфекции проф. Я- В. Окуневского, т. III, в. 1 стр. 132—133.
Выводы
