CC BY
86УДК: 632.3.01/.08
Бактериальные болезни сахарной свёклы в Российской Федерации: распространение и вредоносность
Обзор
Ю.С. ПАНЫЧЕВА, аспирант, ООО «Исследовательский центр «ФитоИнженерия»; ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии» (ФГБНУ ВНИИСБ) (e-mail: [email protected]) М.В. ВОРОНИНА, научн. сотр. ООО ИЦ «ФитоИнженерия» (e-mail: [email protected]) В.О. ГРЕСИС, сотр. ООО «Ариста ЛайфСайенс Рус» (e-mail: [email protected])
А.Н. ИГНАТОВ, д-р биол. наук, зам. ген. директора по научн. раб. ООО ИЦ «ФитоИнженерия» (e-mail: a.ignatov@ phytoengineering.ru)
По данным на 2015 г., 12 % всего произведённого в мире сахара выработано из сахарной свёклы, 88 % — из сахарного тростника. В XXI в. сахарную свёклу выращивают в основном в странах с умеренным климатом. Россия в списке крупнейших производителей занимает 9-е место*. Вместе с ростом валовых сборов нарастают и негативные тенденции — из-за высокой насыщенности севооборотов сахарной свёклы усиливается вредоносность болезней, в том числе вызываемых устойчивыми к фунгицидам грибами (например, рода Fusarium), многочисленными вирусами и бактериями. Сахарная свёкла поражается с заметным экономическим ущербом по меньшей мере 43 видами фитопатоген-ных грибов, 13 видами вирусов, 10 видами нематод, 2 видами спиро-плазм и фитоплазм и 11 видами бактерий (Harveson et al., 2009).
Примерно 10 лет назад появились первые сообщения об усилении вредоносности бактериозов в южных регионах России, в том числе о заболевании, получившем название «сосудистый бактериоз сахарной свёклы» (Путилина и др., 2016; Селиванова, 2013). Причина заболевания приписана поражению растений комплек-
* http://мниап.рф/analytics/Mirovoj-rynok-sahara/
сом фитопатогенных бактерий Pectobacterium spp., Pseudomonas spp. и Pantoea agglomerans. Однако не приведено данных, показывающих, что искусственное заражение этими патогенами вызывают на растениях симптомы сосудистого бактериоза.
В связи с усилением в России вредоносности бактериальных болезней сахарной свёклы, вызываемых различными группами бактерий, необходимы точная идентификация патогенов, изучение путей их распространения, сохранения, а также разработка мер, ограничивающих распространение и обеспечивающих снижение ущерба от бактериальных болезней. В данной работе мы приводим обзор основных фитопато-генных бактерий, обнаруженных на сахарной свёкле в ходе обследований посевов в Краснодарском крае летом 2017 г.
Нами была проведена оценка распространения бактериальных патогенов при визуальном обследовании, ПЦР и микробио-логической/фитопатологической диагностике собранных образцов поражённых растений. Проанализировано более 550 образцов (включая убранные корнеплоды), отобранных с июня по сентябрь. В образцах листьев и корнеплодов были обнаружены виды фитопа-
тогенных бактерий Pseudomonas syringae pv. aptata, Clavibacter michi-ganensis sbsp. sepedonicus, Pantoea agglomerans, Pectobacterium atrosep-ticum, P. carotovorum, P. wasabi-ae, Pectobacterium betavasculorum. Только в корнеплодах были обнаружены Pseudomonas syringae pv. syringae, P. viridiflava и P. marginalis (Панычева, 2017).
Возбудители чёрной ножки и мокрой гнили сельскохозяйственных культур принадлежат к группе пектолитических энтеробактерий, включающей в себя виды рода Pectobacterium (ранее Erwinia). Хотя виды и подвиды рода Pectobacterium обычно получали название по заражённым ими растениям, все они охватывают довольно широкий круг поражаемых растений. К примеру, P. betavasculorum был выделен, кроме растений сахарной свёклы, из подсолнечника, картофеля и артишоков. Изоля-ты P. carotovorum subsp. odoriferum выделяли из витлуфа (цикорий), гиацинта, сельдерея, лука-шалота и сахарной свёклы (Gallois et al., 1992).
Pectobacterium betavasculorum sp. nov. (Thomson et al., 1981; Hauben et al., 1999) — грамотрицательная бактерия с перитрихиальным типом жгутикования. Вызывает сосудистый некроз корнеплодов сахарной свёклы (rot vascular necroses
26 САХАР № 11 • 2017
m Щелково
kly АГРОХИМ ^
www.betaren.ru
of sugar beet) и выделяется из растений подсолнечника, картофеля и артишоков. Сосудистый некроз корнеплодов сахарной свёклы вызывается только Pectobacterium betavasculorum (Erwinia carotovora subsp. betavasculorum) (Whitney, 1986; Dye, 1969). Заболевание распространено в США и Египте. Симптомы включают в себя увядание и образование продольных некрозов на листьях и семядолях растений. Растения свёклы редко погибают, но качество корнеплодов резко снижается (Perombelon, Kelman, 1980). Развитие заболевания усиливается в тёплом и влажном климате. Патоген не выживает в почве (Haverson, 2009; Thomson et al., 1977), хотя длительное время может сохранятся в ризосфере сорных и культурных растений, не поражаемых им. Заболевание поражает кормовую, сахарную и столовую свёклу. Кроме свёклы Pectobacterium betavasculorum поражает томат, картофель, морковь, батат, редис, подсолнечник, артишок, тыкву, огурец и хризантему (Saleh, Huang, Huang, 1996).
Другие виды рода Pectobacterium также способны провоцировать заболевания свёклы. P. atrosepticum (возбудитель чёрной ножки картофеля) вызывает корневую гниль свёклы (de Boer, 2004; de Mendonca, Stanghellini, 1979). Он также сохраняется в поле в ризосфере сорных растений и таких культур, как пшеница и кукуруза (de Mendonca, Stanghellini, 1979). Симптомы проявляются на корнях (в основном), листьях и черешках свёклы. На листьях патоген вызывает некротические полосы вдоль черешков, с экссудатом, состоящим из бактериального полисахарида (Strausbaugh, Gillen, 2008). На черешках проявляется некроз сосудов. При сильном поражении корней растения увядают (Whitney, ed., 1986). На корнях отмечают сухую и мокрую гниль, поражённые сосудистые пучки коричневеют и некротизируются,
зоны корня, прилегающие к поражённой ткани, на срезе быстро розовеют. Поражённые на поздней стадии развития растения имеют деформированные корнеплоды с внутренними полостями. Особенно ощутимо потери урожая проявляются при хранении корнеплодов при высокой температуре (более 20 оС) (Strausbaugh, Gillen, 2008). Это отрицательное влияние наиболее сильно сказывается на выходе сахара (Whitney, Lewellen, 1977).
Так как бактерии не выживают на семенах (Haverson, 2009), необходимо обеспечить изоляцию растений от источников заражения во время вегетации. Механические обработки почвы в этот период интенсивно переносят бактерии и заражают повреждённые растения.
Увеличение расстояния между растениями в рядке усиливает развитие бактериозов, потому что корнеплоды сильнее растрескиваются в процессе роста. Полагают, что избыток азотных удобрений напрямую стимулирует увеличение количества бактерий в почве и на растениях, усиливая развитие болезней. В случае сильного заражения применение дополнительных доз азота может привести к потере выхода сахара с гектара (Thomson et al., 1981).
Pantoea agglomerans — грамотри-цательная бактерия из семейства Enterobacteriaceae, которая часто выделяется из растений, семян, плодов, почвы и фекалий животных и человека. Обычно Pantoea agglomerans считается эпифитной бактерией, антагонистом фито-патогенов (Anderson et al., 2004). Эти бактерии устойчивы к низким температурам, прямому солнечному свету и высушиванию ветром (Johnson et al., 2000). Группа штаммов P. agglomerans pv. betae вызывает туберкулёз сахарной свёклы — заболевание, ранее приписываемое несуществующему патогену Xanthomonas beticola (Moliszewska
et al., 2016). Признаки туберкулёза свёклы обнаруживают в конце лета, а также после закладки корнеплодов на хранение. Болезнь проявляется в виде наростов неправильной формы на верхней части корнеплодов или стеблях растений. Наросты имеют шероховатую губчатую поверхность, внутренняя ткань — рыхлая, слизистая, подвержена быстрому загниванию и распаду. При срезании этих образований обнаруживаются каверны, наполненные бактериальной слизью. На наростах развивается вторичная микрофлора, вызывающая их быстрое разложение, а затем загнивание всего корнеплода. P. agglomerans pv. betae поражает все разновидности Beta vulgaris и Gypsophila paniculata. Сортов, устойчивых к этому заболеванию, не существует.
Симптомы бактериального ожога и пятнистости проявляются на всех надземных частях растений сахарной свёклы: округлые или продолговатые некротические пятна на листьях, продолговатые некрозы на черешках и побурение сосудов ксилемы и ожоги на листьях между поражёнными жилками. Патоген проникает из сосудов поражённых листьев в корнеплод, вызывая слабое побурение сосудистых пучков. В большинстве случаев заражение начинается с места откладки яиц долгоносиком-стеблеедом (Lixus subtilis Sturm) и зоны питания вышедших личинок этого вредителя. Частота инфицирования составляет не более 10 % от общего числа инфицированных вредителем черешков растения, что, возможно, указывает на не-персистентность возбудителя в организме вредителя. Также вероятно, что возбудитель бактериоза проникает в место прокола с поверхности листа, где присутствует в виде эпифитной популяции.
Пятна на листьях круглой или неправильной формы, от 5 до 20 мм в диаметре, от светло- до тёмно-коричневого цвета. Пораже-
№ и . 2017 САХАР 27
РЖЧ ЩЕЛКОВО kiy АГРОХИМ
российский аргумент защиты
ния листьев могут быть окружены тёмной каймой или пропитанным водой кольцом. Заболевание часто переходит в системное поражение сосудов листьев, черешков и стебля сахарной свёклы (Walker, 1953).
Симптомы бактериальной листовой пятнистости иногда напоминают церкоспороз (Cercospora beticola Sacc.), а симптомы ожога — начальное развитие фуза-риозного увядания. Сходство этих симптомов с поражением растений Fusarium oxysporum, F. acuminatum, F. avenaceum, F. solani и F. moniliforme (Hanson, Jacobsen, 2009) на сахарной свёкле может частично объяснить, почему бактериальный ожог не был идентифицирован в Российской Федерации ранее. Заметные потери от этого заболевания описаны практически ежегодно начиная с 2010 г. В ряде хозяйств Краснодарского края в 2017 г. отмечалось поражение не менее 7 % растений в июне, и более 50 % растений — к концу вегетации в августе.
Выделенные из поражённых растений (листьев, черешков и корнеплодов) на начальном этапе развития заболевания бактерии в подавляющем большинстве (более 90 %) были представлены нефлу-оресцирующими псевдомонадами (Pseudomonas spp.), вирулентными для растений-индикаторов (табака, герани, плектрантуса) и растений-хозяев — сахарной и столовой свёклы, подсолнечника, тыквы, дыни и кабачка, фасоли, но авиру-лентными для капустных и паслёновых культур. Результаты анализа физиологических и генетических признаков 25 штаммов возбудителя, выделенных в основном в Крас -нодарском крае в 2017 г., соответствовали признакам P. syringae pv. aptata (Панычева, 2017). Заражение растений сахарной свёклы P. syringaepv. aptata в качестве первичного патогена вызывает быстрое накопление вторичной патогенной и сапрофитной микрофло-
ры, в том числе представленной видами Pectobacterium carotovorum, Pseudomonas marginalis и Pantoea agglomerans, описанных ранее как возбудителей сосудистого бактериоза сахарной свёклы (Селиванова, 2013).
Распространение болезней растений (свёклы, подсолнечника, тыквенных культур), вызываемых P. syringae pv. аptata, было отмечено во Франции в 1995—1997 гг. (Morris et al., 2000). В Сербии с 2013 г. в провинции Воеводина заболевание наблюдается на полях сахарной свёклы с встречаемостью от 0,1 до 40 % (Stojin et al., 2015). В США в ноябре 2015 г. типичные симптомы бактериального ожога наблюдались на листьях растений сахарной свёклы в штате Орегон (Arabiat et al., 2016).
В декабре 2012 г. отмечена вспышка болезни в штате Джорджия, причём заболеванием были охвачены до 35 % растений в поле (Dutta et al., 2014). В 1999-2003 гг. этот патоген вызывал массовое заболевание мангольда (Beta vulgaris subsp. cicla) в долине Салинас в Калифорнии (Koike et al., 2003).
Хотя бактериальный ожог сахарной свёклы и бактериальная пятнистость тыквенных культур, вызванные P. syringae рv. аptata, встречаются во многих странах, в России патоген вызывает потери, в первую очередь, из-за неизвестности возбудителя и отсутствия эффективных мер борьбы. Во вторую очередь, заболевание сахарной свёклы в России распространено в регионе, где интенсивно выращивают также тыквенные культуры и подсолнечник — растения-хозяева для P. syringae рv. aptata. Фитопатогенные бактерии обычно выживают в почве в непе-регнивших растительных остатках, и, таким образом, совместное использование в севообороте подсолнечника и сахарной свёклы приводит к накоплению инфекции.
В последнюю очередь, семена сахарной свёклы не тестируют на
заражённость этим патогеном, а фунгициды-протравители не защищают всходы от семенной бактериальной инфекции или раннего заражения от других источников. Известно, что P. syringae pv. aptata сохраняется в поливной воде, которая также может служить источником первичного заражения даже в отсутствие других причин (Riffaud, Morris, 2002). Кроме того, установленный нами факт заражения растений P. syringae pv. aptata при откладке яиц свекловичным долгоносиком-стеблеедом Lixus subtilis Sturm требует дальнейшего изучения этого вектора.
Бактериальное заболевание — корневой рак (корончатый галл, тератома, crown gall — англ.), вызываемый Agrobacterium tumefaciens, способно поражать двудольные растения 93 семейств во всех районах их возделывания, и поэтому представляет серьёзную опасность для сельскохозяйственного производства (Kado, 2014). Наиболее часто оно встречается на плодовых и лесных породах, винограде, ягодниках, технических, бобовых и цветочно-декоративных культурах. Типичные симптомы заболевания — наросты (тератомы), которые формируются в местах внедрения этого типичного раневого паразита. Они в основном встречаются на шейке корня, но могут развиваться на других частях корней и на стволах или стеблях растений. Этот патоген может сохраняться в почве неограниченное время. Входными воротами для бактериальной инфекции служат повреждения, которые вызываются различными факторами. При заражении растений бактериями происходит аномальная клеточная пролиферация (гиперплазия), которая приводит к образованию корончатых галлов. В результате поражения растение отстаёт в развитии и происходит нарушение движения воды и сока по сосудам в стебле (стволе). Растения, поражённые корончатым галлом, силь-
28 САХАР № 11 • 2017
m Щелково kly агрохим ^
www.betaren.ru
нее повреждаются вредителями, ветром и заморозками, в результате чего поражаются грибной и бактериальной инфекцией и быстро гибнут. Хотя наросты могут появляться в течение всей вегетации растений, наиболее сильный их рост наблюдают при температуре воздуха от 20 до 30°С и большом количестве атмосферных осадков или относительной влажности воздуха не менее 95 %.
Меры борьбы с заболеванием включают в себя: 1) проверку почвы на заражённость вирулентными штаммами A. tumefaciens; 2) применение высокоустойчивых сортов сельскохозяйственных культур; 3) борьбу с насекомыми и нематодами — переносчиками патогена. Многие биопрепараты были эффективны в борьбе с данным заболеванием, но, к сожалению, в списке пестицидов и ядохимикатов, разрешённых для применения в Российской Федерации, пока не указано ни одного из них (Справочник пестицидов.., 2016).
Кроме P. betavasculorum и других энтеробактерий бактериальная гниль корнеплодов сахарной свёклы может вызываться молочнокислой бактерией Leuconostoc mesenteroides subsp. dextranicum, проявляющей патогенность при заражении корнеплодов, но не при инокуляции черешков листьев. Другие молочнокислые бактерии также часто обнаруживают в загнивающих корнеплодах, но сами по себе они не способны вызывать поражение растительной ткани. Бактерии рода Leuconostoc — грам-положительные, постоянно присутствующие в квашеных овощах, молочных продуктах, навозе, вине и на сахарных заводах (Adesogan et al., 2003). Среди них также есть фитопатогены (Conn et al., 1995).
Молочнокислые бактерии инги-бируют развитие других микроорганизмов, поскольку они снижают pH за счёт синтеза органических кислот, перекиси водорода и бак-терицинов в ходе роста популя-
ции на богатой сахаром среде (Strausbaugh, Gillen, 2008). Известно, что вид L. mesenteroides — обычно первичный организм, начинающий ферментацию растительного субстрата, постепенно замещается другими видами (Adesogan, et al., 2003). Так, L. mesenteroides subsp. dextranicum вызывает максимальное развитие корневой гнили при инокуляции в чистом виде. Присутствие в растении энтеро-бактерий и других лактобацилл снижает вредоносность болезни.
Выводы
В связи с усилением в России вредоносности бактериальных болезней сахарной свёклы, вызываемых различными группами бактерий, необходима точная идентификация патогенов, изучение путей их распространения, сохранения, и разработка мер борьбы, ограничивающих распространение и обеспечивающих снижение ущерба от бактериальных болезней. Проведена оценка устойчивости 54 образцов сахарной свёклы к бактериальным патогенам и выявлено, что многие её генотипы были устойчивы (Панычева, 2017).
Список литературы
1. Adesogan, A.r.Effect of Lactobacillus buchneri, Lactobacillus fermentum, Leuconostoc mesenteroides, or a chemical additive on the fermentation, aerobic stability, and nutritive value of crimped wheat grains / A.T. Adesogan [and oth.] // J. Dairy Sci. - 2003. - V. 86. - Р. 1789-1796.
2. Anderson, L.M. An Extracellular Protease of Pseudomonas fluorescens Inactivates Antibiotics of Pantoea agglomerans / L.M. Anderson [and oth.] // Phytopathology. - 2004. -V. 94. - P. 1228-1234.
3. Arabiat, S. First Report of Pseudomonas syringae pv. aptata Causing Bacterial Blight of Sugar Beet (Beta vulgaris) in Oregon / S. Arabiat [and oth.] // Plant Disease - 2016. -V. 100(11). - P. 2334.
4. Conn, K.E. Leuconostoc mesenteroides subsp. mesenteroides,
the first report of a coccoid bacterium causing a plant disease / K.E. Conn [and oth.] // Phytopathology. - 1995.
- V. 85. - Р. 593-599.
5. De Boer, S.H. Blackleg of Potato / S.H. de Boer // The Plant Health Instructor. - 2004. - P. 23.
6. De Mendonca, M. Endemic and Soilborne Nature of Erwinia carotovora var. atroseptica, a pathogen of Mature Sugarbeets / M. de Mendonca [and oth.] // Ecology and Epidemiology. -1979. - V. 69. - Р. 1093-1099.
7. Dutta, B. First report of bacterial blight of sugar beet caused by Pseudomonas syringae pv. aptata in Georgia, USA / B. Dutta [and oth.] // Plant Disease. - 2014. - V. 98. - P. 1423.
8. Dye, D.W. A taxonomic study of the genus Erwinia. II. The «carotovora» group / D.W. Dye // New Zealand Journal of Science. - 1969. - V. 12.
- P. 81-97.
9. Hanson, R.M. Fusarium yellows / R.M. Harveson [and oth.] (eds.) // Compendium of Beet Diseases and Pests, 2nd ed. American Phyto-pathological Society, St. Paul, MN. -2009. - P. 28-29.
10. Haverson, R.M. Compendium of Beet Diseases and Pests (2nd ed.). St. Paul, MN: American Phytopathological Society. - 2009. -P. 58-59.
11. http://мниап.рф/analytics/Mi-rovoj-rynok-sahara / Дата обращения 22.10.2017.
12. Johnson, K.B. Assessment of Environmental Factors Influencing Growth and Spread of Pantoea agglomerans on and Among Blossoms of Pear and Apple / K.B. Johnson [and oth.] // Phytopathology. - 2010. -T. 90. - P. 1285-1294.
13. Kado, C.I. Historical account on gaining insights on the mechanism of crown gall tumorigenesis induced by Agrobacterium tumefaciens / C.I. Kado // Frontiers in microbiology. - 2014.
- V. 5. - P. 23-35.
14. Koike S.T. First Report of Bacterial Leaf Spot of Swiss Chard Caused by Pseudomonas syringae pv. aptata in California / S.T. Koike [and oth.] // Plant Disease. - 2003. - V. 87.
- P. 1,397.2-1,397.2.
15. Moliszewska, E. Tubercle disease
№ 11 • 2017 САХАР
29
РЖЧ ЩЕЛКОВО kUJ АГРОХИМ
российский аргумент защиты
(Xanthomonas beticola) and other gall-malformed diseases of sugar beet roots: a review / E. Moliszewska [and oth.] // Journal of Plant Diseases and Protection. - 2016. - V. 123(5). -P. 197-203.
16. Morris, C.E. The relationship of host range, physiology, and genotype to virulence on cantaloupe in Pseudomonas syringae from cantaloupe blight epidemics in France / C.E. Morris [and oth.] // Phytopathology. - 2000. - V. 90. -P. 636-646.
17. Perombelon, M. Ecology of the soft rot erwinias / M. Perombelon [and oth.] // Annual Review of Phytopathology. - 1986. - V. 18(1). -P. 361-387.
18. Riffaud C.M.-H. Detection of Pseudomonas syringae pv. aptata in Irrigation Water Retention Basins by Immunofluorescence Colony-staining / C.M.-H. Riffaud [and oth.] // European Journal of Plant Pathology.
- 2002. - V. 108. - P. 539-545.
19. Saleh, O.I. Bacterial Vascular Necrosis and Root Rot Disease of Sugar Beet in Egypt / O.I. Saleh [and oth.] // Journal of Phytopathology. -1996. - V. 144 (5). - P. 225-230.
20. Stojsin, V. First Report of Pseudomonas syringae pv. aptata Causing Bacterial Leaf Spot on Sugar Beet in Serbia / Stojsin V. [and oth.] // Plant Disease. - 2015. - V. 99 (22). -P. 281.
21. Strausbaugh, C.A. Bacteria and yeast associated with sugar beet root rot at harvest in the Intermountain West / C.A. Strausbaugh, A.M. Gillen // Plant Dis. - 2008. - V. 92. - P. 357363.
22. Thomson, S.V. Sugar and root yield of sugar beets as affected by bacterial vascular necrosis and rot, nitrogen fertilization, and plant spacing / S.V. Thomson [and oth.] // Phytopathology. - 1981. - V. 71. -P. 605-608.
23. Thomson, S.V. Beet Vascular Necrosis and Rot of Sugarbeet: General Description and Etiology / S.V. Thomson [and oth.] // Phytopathology. - 1976. - V. 67(10).
- P. 1183-1189.
24. Walker J.C. Disease resistance
in the vegetable crops. II / J.C. Walker // The Botanical Review. — 1953. — Т. 19(10). - P. 606-643.
25. Whitney, E.D. (1986). Compendium of Beet Diseases and Insects (2nd ed.). St. Paul, MN: American Phytopathological Society.
26. Whitney, E.D. Bacterial Vascular Necrosis and Rot of Sugar Beet: Effects on Cultivars and Quality / E.D. Whitney and R.T. Lewellen [and oth.] // Phytopathology. - 1977. -V. 67(10). - P. 912-916.
27. Панычева, Ю.С. Селекция растений сахарной свёклы на устойчивость к бактериозам: проблемы и решения / Ю.С. Панычева // Успе-
хи современной науки. — 2017. — Т. 1. - № 10. - С. 90-93.
28. Путилина, Л.Н. Сосудистый бактериоз сахарной свёклы и меры ограничения его развития в ЦЧР / Л.Н. Путилина [и др.] // Сахар. — 2016. - № 5. - С. 29-32.
29. Селиванова, Г.А. Причины широкого распространения корневых гнилей в ЦЧР / Г.А. Селиванова // Сахарная свёкла. - 2013. - № 5. -С. 27-30.
30. Справочник пестицидов и ядохимикатов, разрешённых к применению на территории Российской Федерации. - М. : Агрорус, 2016. - 804 с.
Аннотация. Сахарная свёкла поражается с заметным экономическим ущербом по меньшей мере 43 видами фитопатогенных грибов, 13 видами вирусов, 10 видами нематод, 2 видами спироплазм и фитоплазм и 11 видами бактерий. Бактериальные патогены вызывают болезни различной этиологии: от корончатого галла или рака корней до листовой пятнистости. Примерно 10 лет назад появились первые сообщения об усилении вредоносности бактериозов в южных регионах России, в том числе о заболевании, получившем название «сосудистый бактериоз сахарной свёклы». Причина заболевания приписана поражению растений комплексом фитопатогенных бактерий. Однако не приведено данных, показывающих, что при искусственном заражении этими патогенами на растениях вызываются симптомы «сосудистого бактериоза», и необходима более точная идентификация возбудителей нового заболевания. В связи с усилением в России вредоносности бактериальных болезней сахарной свёклы, вызываемых различными группами бактерий, необходима точная идентификация патогенов, изучение путей их распространения, сохранения, и разработка мер борьбы, ограничивающих распространение и обеспечивающих снижение ущерба от бактериальных болезней. Проведена оценка распространения бактериальных патогенов Pseudomonas syringae pv. aptata, Pseudomonas syringae pv. syringae, Clavibacter michiganensis sbsp. sepedonicus, Pantoea agglomerans, Pantoea ananatis, Xanthomonas betae, Pectobacterium atrosepticum, Pectobacterium carotovorum/P. wasabiae, Pectobacterium betavasculorum в Краснодарском крае при визуальном обследовании, ПЦР и микробиологической/фитопатологической диагностике собранных образцов поражённых растений.
Ключевые слова: сахарная свёкла, бактериозы, диагностика, вредоносность. Summary. Sugar beet is affected at least by 43 species of phytopathogenic fungi, 13 viruses, 10 species of nematodes, 2 species spiraplasma and phytoplasmas, and 11 species of bacteria. Bacterial pathogens can cause diseases of different etiology: from «crown gall» to leaf spots. About 10 years ago, the increased severity of bacterial diseases in the southern regions of Russia was reported, including disease, called «vascular bacteriosis of sugar beet». The cause of the disease was attributed to infection by a complex of plant pathogenic bacteria. However, there is no data showing that these pathogens produce symptoms of «vascular bacteriosis» on plants under artificial infection, and more accurate identification of causative agents of new disease is needed. In connection with the increased harmfulness of bacterial diseases of sugar beet in Russia, caused by different groups of bacteria, we need an accurate identification of the pathogens, ways of their distribution, preservation, and search for control measures to limit the spread and reduce the damage from bacterial diseases of sugar beet. We assessed and confirmed the distribution of bacterial pathogens Pseudomonas syringae pv. aptata, Pseudomonas syringae pv. syringae, Clavibacter michiganensis sbsp. sepedonicus, Pantoea agglomerans, Pectobacterium atrosepticum, Pectobacterium carotovorum/P. wasabiae, and Pectobacterium betavasculorum by visual examination, PCR and microbiological/phytopathological identification in collected samples from in Krasnodar region.
Keywords: sugar beet, bacterial diseases, diagnosis, harmfulness.
30 САХАР № 11 • 2017
Igo Щелково
kly АГРОХИМ ^
www.betaren.ru
