АНАЛИЗ БИОХИМИЧЕСКОГО СОСТАВА И АНТИОКСИДАНТНЫХ СВОЙСТВ ОРЕХОВ, РЕАЛИЗУЕМЫХ НА ПОТРЕБИТЕЛЬСКОМ РЫНКЕ Текст научной статьи по специальности «Промышленные биотехнологии»

DOI: http://doi.org/10.20914/2310-1202- 2020-2-124-130_Оригинальная статья/Research article_

УДК 634.5:581.192.4_Open Access Available online at vestnik-vsuet.ru

Анализ биохимического состава и антиоксидантных свойств _орехов, реализуемых на потребительском рынке_

Людмила П. Нилова " nilova_l_p@mail.ru © 0000-0002-5154-7095 _Светлана М. Малютенкова 1 malutesha66@mail.ru 0000-0002-8081-6688_

1 Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого, ул., Политехническая, 29, г. Санкт-Петербург,

195251, Россия_

Аннотация. Представлены результаты исследований биохимического состава и антиоксидантных свойств орехов, реализуемых на потребительском рынке г. Санкт-Петербурга. Объектами исследований выбраны ядра орехов: сладкого миндаля, фундука, кешью, грецкого ореха. В орехах определяли общее содержание липидов по Сокслету, жирно-кислотный состав, содержание витамина Е, фракционный состав токоферолов и фитостеролов, общих фенольных соединений и флавоноидов, антиоксидантную активность методом FRAP с хлоридом железа, о-фенантролином и Тритоном Х 100. Орехи отличались содержанием липидов (42,6-65,4%) с преобладанием ненасыщенных жирных кислот от 80,4 до 92,4 относительных %. В составе жирных кислот миндаля, фундука и кешью превалировала олеиновая кислота, а в грецких орехах - линолевая. Наибольшее количество полиненасыщенных жирных кислот содержал грецкий орех. Антиоксидантные свойства орехов формировались комплексом водо- и жирорастворимых антиоксидантов. Жирорастворимые антиоксиданты включали витамин Е с преобладанием а-токоферола в ядрах сладкого миндаля и фундука, у-токоферола - в грецком орехе и кешью. Все фракции токоферолов содержали только ядра сладкого миндаля. В липидах фундука отсутствовали у- и 8-токоферолы, а в кешью и грецком орехе - в-токоферолы. В составе фитостеролов идентифицированы в-ситостерол, кампестерол и стигмастерол с преобладанием в-ситостерола во всех ядрах орехов. Водорастворимые антиоксиданты представлены преимущественно фенольными соединениями, количество которых варьирует в широких пределах в зависимости от вида орехов: кешью <миндаль <фундук <грецкий орех. Установлено, что фенольные соединения оказывают существенное влияние

(R2=0,985) на значения антиоксидантной активности (FRAP)._

Ключевые слова: миндаль, фундук, кешью, грецкий орех, жирно-кислотный состав, стерины, токоферолы, флавоноиды, FRAP

Analysis of biochemical composition and antioxidant properties _of nuts sold in the consumer marke_

Liudmila P. Nilova " nilova_l_p@mail.ru © 0000-0002-5154-7095 _Svetlana M. Malyutenkova 1 malutesha66@mail.ru 0000-0002-8081-6688

1 Peter the Great St.Petersburg Polytechnic University, Politechnicheskaya St., 29, Saint-Petersburg, 195251, Russia Abstract. The results of studies of the biochemical composition and antioxidant properties of nuts sold in the consumer market of St. Petersburg were presented in the work. The objects of research were kernels of nuts: sweet almonds, hazelnuts, cashews, walnuts. Total Soxhlet lipids, fatty acid composition, vitamin E, fractional composition of tocopherols and phytosterols, total phenolic compounds and flavonoids, antioxidant activity by FRAP with ferric chloride, o-phenanthroline and Triton X 100 were determined in nuts. Nuts varied in lipid content (42.6-65.4%) with a predominance of unsaturated fatty acids from 80.4 to 92.4 relative%. Oleic acid prevailed in the fatty acids of almonds, hazelnuts and cashews, while linoleic acid prevailed in walnuts. Walnuts contained the highest amount of polyunsaturated fatty acids. The antioxidant properties of nuts were formed by a complex of water and fat-soluble antioxidants. Fat-soluble antioxidants included vitamin E with a predominance of а-tocopherol in the kernels of sweet almonds and hazelnuts, y-tocopherol - in walnuts and cashews. Only sweet almond kernels contained all the tocopherol fractions. y- and 8-tocopherols were absent in hazelnut lipids, while в-tocopherols were absent in cashews and walnuts. в-sitosterol, campesterol and stigmasterol with a predominance of в-sitosterol were identified in the composition of phytosterols in all nut kernels. Water-soluble antioxidants are mainly represented by phenolic compounds, the amount of which varies widely depending on the type of nuts: cashews <almonds <hazelnuts <walnuts. Phenolic compounds were found to have a significant effect (R2 = 0.985) on the values of antioxidant activity (FRAP). Keywords: almonds, hazelnuts, cashews, walnuts, fatty acid composition, sterols, tocopherols, flavonoids, FRAP

Введение

Орехи уже давно признаны источником питательных веществ в традиционных диетах многих стран мира. Их рассматривают как источники растительного белка, пищевых волокон и липидов [1, 2]. Наиболее важное значение имеют липиды орехов. Их благоприятный жирно-кислотный состав с преобладанием ненасыщенных жирных кислот и биологически-активных веществ (БАВ) - токоферолов,

Для цитирования Нилова Л.П., Малютенкова С.М. Анализ биохимического состава и антиоксидантных свойств орехов, реализуемых на потребительском рынке // Вестник ВГУИТ. 2020. Т. 82. № 2. С. 124-130. doi:10.20914/2310-1202- 2020-2-124-130_

© 2020, Нилова Л.П. и др. / М^а КР. et а1.

фитостеролов и фитостанолов, способствует снижению риска сердечно-сосудистых заболеваний [3, 4]. В 2003 году FDA (Food and Drug Administration), США рекомендовало включение в диету лесных орехов, включая миндаль, фундук, кешью и грецкий орех, в количестве 42,5 г в день как часть диеты с низким содержанием насыщенных жиров и холестерина для снижения риска сердечно-сосудистых заболеваний [5]. Другие данные свидетельствуют о том, что снижению

For citation

Nilova L.P., Malyutenkova S.M. Analysis of biochemical composition and antioxidant properties of nuts sold in the consumer marke. Vestnik VGUIT [Proceedings of VSUET]. 2020. vol. 82. no. 2. pp. 124-130.

(in Russian). doi:10.20914/2310-1202- 2020-2-124-130_

This is an open access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution 4.0 International License

124 БД Agris

риска сердечно-сосудистых заболеваний способствует высокое содержания в орехах антиокси-дантов фенольной природы, которые повышают антиоксидантную защиту организма [6, 7].

Орехи содержат водо- и жирорастворимые антиоксиданты. Их количество варьирует от вида и ботанического сорта орехов, географических факторов, а также в каком виде их употребляют (сырые, обжаренные или пищевые продукты с их использованием) [1, 8, 9]. Употребление орехов в смеси с сухофруктами не всегда приносит пользу, синергетический эффект антиоксидантов уставлен только для смесей инжир-грецкий орех, инжир-фундук и абрикос-фундук. Сочетание миндаля с сухофруктами, напротив, обуславливает антагонистический эффект в модельных системах пищеварения [10].

Максимальное количество фенольных соединений содержат орехи пекан (1284-2016 мг/100 г) и каштан (1580-3673 мг/100 г), в фундуке много проантоцианидов, причем в большей степени в виде олигомеров и полимеров [1, 11]. Содержание флавоноидов очень низкое почти во всех орехах, в основном в составе фенольных соединений превалируют фенольные кислоты преимущественно в связанном состоянии [12-14]. Увеличение их количества повышает антиокси-дантную активность орехов, теснота взаимосвязи может составлять R2 = 0,9901, как было установлено для грецкий орехов, реализуемых в США [3]. Среди четырех видов исследованных орехов (миндаль, фундук, грецкий орех и арахис), реализуемых в торговле в России, наибольшей антиоксидантной активностью обладал грецкий орех [15]. Комплекс водорастворимых антиоксидантов орехов может дополняться присутствием аскорбиновой кислоты, но обычно зрелые орехи ее не содержат или содержат в незначительных количествах - до 15 мг/100 г [16]. Лидером по содержанию аскорбиновой кислоты считается каштан съедобный (40-70 мг/100 г), но необходимость термической обработки для употребления существенно снижает ее содержание (в 2,5-3 раза) [17]. Обработка орехов -удаление кожуры и, особенно обжаривание, снижают содержание фенольных соединений и антиоксидантную активность [6, 18, 19]. В кожуре фундука может содержаться 51,9 и 203,1 мг эквивалента галловой кислоты/г и токоферолов от 226 до 593 мкг/г с преобладанием а-токоферола. Общая антиоксидантная активность составляет от 309 до 1375 мкмоль эквивалента тролокса/г кожуры фундука, что более чем в 100 раз выше, чем для фундука без кожуры [19]. Обжаренная кожура фундука содержит наибольшее количество общих фенольных кислот по сравнению с натуральными и жареными орехами [14].

Высокое содержание липидов в орехах обеспечивает их жирорастворимыми антиокси-дантами, в первую очередь токоферолами. Различные виды орехов отличаются не только их общим количеством, но и качественным составом. Самое высокое содержание а-токо-ферола у миндаля и фундука, которое может доходить до 24,2 и 31,4 мг/100 г экстрагированного масла соответственно. в- и у-токоферолы преобладают в бразильских орехах, кешью, арахисе, орехах пекан, кедровом орехе, фисташках и грецких орехах. в-токоферол практически отсутствует или его количество составляет менее 4 мг/100 г экстрагированного масла [20, 21]. На фракционный состав витамина Е оказывает влияние видовое разнообразие орехов. Так, в 24 сортах миндаля композиция токоферолов, мг/100 г, включает а-токоферол (8,0-20,9), у-токоферол (0,08-0,59 ), в-токоферол (0,02-0,12) и а-токотриенол (0,01-0,30) [22]. Каротиноиды не оказывают значительного влияния на антиок-сидантные свойства орехов, так как содержаться в микроколичествах или полностью отсутствуют. Только фисташки богаты лютеином / зеаксан-тином и в-каротином при общем содержании каротиноидов 1-3 мг/100 г [20, 21, 23].

Антиоксиданттные свойства липидов орехов дополняются фитостеролами. Их количество в орехах составляет, в мг/100 г сухого вещества, от 15,9 для каштанов до 255,2 для фисташек, причем более половины в свободной форме. В большинстве орехов в-ситостерин является основным фитостеролом, составляя 62,4-87,1% [23, 24].

Но, несмотря на присутствие в орехах различных антиоксидантов, при обжарке или иной термической обработке происходит их значительная потеря [6, 20, 21], что может снизить роль орехов, реализуемых на потребительском рынке преимущественно в обжаренном виде, в проявлении их антиоксидантных свойств.

Цель работы - изучение биохимического состава и антиоксидантных свойств, наиболее распространенных на потребительском рынке ядер орехов.

Материалы и методы

В качестве объектов исследований были выбраны самые распространенные в розничной торговле ядра орехов: миндаля сладкого обжаренные «О'Кей», производства ЗАО «Орехпром», г. Краснодар, страна происхождения Россия; фундука обжаренного цельного «Семушка», производства ООО «Комсервис», Московская обл., страна происхождения Грузия; кешью жареные «2аскЕдта», производства ООО «БиоПак», г. Москва, страна происхождения Вьетнам; грецкого ореха «Семушка», производства ООО «Комсервис», Московская обл., страна происхождения Чили. Ядра орехов были приобретены в розничной торговле г. Санкт-Петербурга.

В ядрах орехов определяли общее содержание липидов, жирно-кислотный состав, содержание витамина Е и фракционный состав токоферолов и фитостеролов, содержание общих фенольных соединений и флавоноидов, антиоксидантную активность.

Исследование липидов. Общее количество липидов определяли по Сокслету. Подготовку пробы для определения жирно-кислотного состава и БАВ осуществляли путем измельчения пробы ядер орехов с гексаном. Гексановую фракцию отделяли, а затем гексан отгоняли в ротационном испарителе. Определение жирно-кислотного состава проводили методом газовой хроматографии по ГОСТ 31665-2012 на хроматографе Agilent 6890 Series, Agilent Technologies, США. Витамин Е определяли методом Эммери-Энгеля с ортофенантролином спектрофотометрически при длине волны 520 нм. Фракционный состав токоферолов и фитостеролов определяли хромато-масс-спектромет-рией на газовом хроматографе «MAESTRO 7820А» с масс-селективным детектором модели «5975». Регистрацию масс-спектров проводили в интервале масс от 40 до 800 m/z. Полученные масс-спектры идентифицировали с помощью электронных библиотечных масс-спектров прибора (библиотеки NIST11.L., DD2011.L.). Относительное содержание гомологов токоферолов и фитостеролов рассчитывали по площади пиков и выражали в относительных% (% отн).

Исследование фенольных соединений, флавоноидов и антиоксидантной активности ядер орехов проводили на спектрофотометре SHIMADZU 1240 («SHIMADZU», Япония). Общие фенольные соединения определяли методом Фолина-Чокальтеу при длине волны 750 нм. Полученные результаты выражены в мг галловой кислоты. Общие флавоноиды

определяли по ГОСТ 55312-2012 при длине волны 420 нм. Полученные результаты выражали в мг рутина. Антиоксидантную активность определяли методом FRAP с хлоридом железа, орто-фенантролином и Тритоном Х 100 при длине волны 505 нм. Результаты выражали в пересчете на тролокс (trolox 97%, Acros organics, USA) - тролокс эквивалент (ТЭ).

Результаты и обсуждение

Исследуемые образцы ядер орехов различались содержанием липидов, которое варьировало от 42,6% в кешью до 65,4% в фундуке, и составом жирных кислот (таблица 1). И хотя ненасыщенные жирные кислоты преобладали в липидах всех орехов (80,4-92,4% отн.), но их количество зависело от вида и имело ряд: кешью <грецкий орех <фундук <миндаль. В липи-дах миндаля, фундука и кешью превалировала олеиновая кислота, а в грецких орехах - линолевая. Линоленовая кислота в достаточном количестве содержалась только в грецком орехе, в миндале и кешью составило менее 1%, а в фундуке не была идентифицирована. В результате грецкий орех лидировал по содержанию полиненасыщенных жирных кислот (ПНЖК), суммарное количество которых достигло 72,2%. В целом исследуемые образцы орехов имели типичный жирно-кислотный состав, соответствующий опубликованным данным в научной литературе [1, 13, 16, 23].

Жирно-кислотный состав образцов ядер орехов Fatty acid composition of nut kernel samples

Таблица 1. Table 1.

Жирные кислоты | Fatty Яд ра орехов | Nut kernels

миндаль сладкий almond sweet фундук hazelnut кешью cashew грецкий орех walnut

Липиды, % | Lipids, % 56,4 65,4 42,6 64,8

Миристиновая | Myristic С14:0 0,1 - 0,1 -

Пальмитиновая | Palmitic С16:0 4,9 5,4 10,5 7,5

Пальмитолеиновая | Palmitoleic С16:1 0,2 0,2 0,5 -

Стеариновая | Stearic С18:0 2,2 2,2 8,5 3,4

Олеиновая | Oleic С18:1 65,0 78,5 61,2 16,7

Линолевая | Linoleic С18:2 26,1 13,5 18,2 61,4

Линоленовая | Linolenic С18:3 0,8 - 0,3 10,8

Арахиновая | Arachinic С20:0 0,4 0,2 0,5 0,1

Гадолеиновая | Gadoleic С20:1 0,3 - 0,2 0,1

Сумма насыщенных жирных кислот | Total SFA 7,6 7,8 19,6 11,0

Сумма мононенасыщенных жирных кислот Total MFA 65,5 78,7 61,9 16,8

Сумма ПНЖК | Total PUFA 26,9 13,5 18,5 72,2

Липиды орехов содержали витамин Е, лидером среди них был грецкий орех (таблица 2). В сладком миндале его количество было меньше на 20,5%, а фундуке - на 56,6%

по сравнению с грецким орехом. Меньше всего витамина Е содержали кешью. В зависимости от фракционного состава токоферолов, липиды орехов можно было разделить на две группы.

В сладком миндале и фундуке преобладал а-токоферол 91,0 и 96,2%, соответственно, обладающий максимальной биологической активностью. В грецком орехе и кешью преобладал у-токоферол, обладающий большей анти-оксидантной активностью, чем а-токоферол. Причем в орехах кешью у-токоферола было больше в 1,8 раз, чем в грецком орехе, зато 5-токоферола, наоборот, меньше в 4,5 раза.

Не во всех липидах орехов были идентифицированы четыре фракции токоферолов. Все фракции содержал только сладкий миндаль. В липидах фундука отсутствовали у- и 5-токоферолы, а в кешью и грецком орехе - Р-токоферолы. Исходя из состава токоферолов, наибольшее количество антиоксидантов липидной природы содержит грецкий орех.

Таблица 2.

Содержание витамина Е, фитостеролов и их фракционный состав в образцах ядер орехов

Table 2.

Content of vitamin E, phytosterols and their fractional composition in samples of nut kernels

Биологически активные вещества | Biologically active substances Ядра орехов | Nut kernels

миндаль сладкий almond sweet фундук hazelnut кешью cashew грецкий орех walnut

Витамин Е, мг/100 г | Vitamin E, mg / 100 g 28,4 ± 1,0 15,5 ± 0,6 6,9 ± 0,3 35,7 ± 1,0

в том числе токоферолы, % отн. | including tocopherols, % rel.

а-токоферол | а-tocopherol 91,0 96,2 13,6 27,8

ß-токоферол | ß - tocopherol 1,5 3,8 - -

у-токоферол | у - tocopherol 3,4 - 80,3 44,7

5-токоферол | 5 - tocopherol 0,1 - 6,1 27,5

Фитостеролы, мг/100 г | Phytosterols, mg / 100 g 108,0 ± 4,0 122,0 ± 4,0 128,2 ± 4,0 102,5 ± 4,0

в том числе, % отн. | including, % rel.

ß-ситостерол | ß-sitosterol 92,5 93,2 92,9 88,9

кампестерол | campesterol 4,2 6,3 6,5 9,7

стигмастерол | stigmasterol 3,3 0,5 0,6 1,4

Различия в содержании фитостеролов между орехами были не столь существенными по сравнению с токоферолами. Между максимальным содержанием фитостеролов в кешью и минимальным в грецком орехе разница составила 20%. Были идентифицированы три фитостерола -ß-ситостерол, кампестерол и стигмастерол. Во всех орехах преобладал ß-ситостерол, в зависимости от количества которого получился ряд: грецкий орех <миндаль <фундук <кешью. Это подтверждает данные других исследователей о преобладании ß-ситостерола в составе липидов орехов, хотя его доля по данным [24] составляет 87,1%. На втором месте по количественному содержанию находился кампестерол, хотя в миндале его количество было незначительно больше, чем стигмастерола. А вот в фундуке и кешью на долю стигмастерола приходилось не более 0,6%.

Все образцы орехов содержали фенольные соединения, количество которых варьировало в широких пределах в зависимости от вида орехов: кешью <миндаль <фундук <грецкий орех (таблица 3). Аналогичная зависимость была получена при исследовании орехов, реализуемых в торговле г. Самара [15], где содержание фенольных соединений максимальным было

у грецкого ореха и превышало фундук и миндаль в 12 и 14 раз, соответственно. Но грецкий орех, реализуемый в г. Самара, содержал в 2,5 раза меньше фенольных соединений, чем реализуемый в г. Санкт-Петербург. В тоже время Chen с соавторами [23] определили, что в грецких орехах содержание фенольных соединений доходило до 1625 мг/100 г, и было максимальным из восьми исследованных лесных орехов. Это подтверждает многофакторное влияние на их биохимический состав.

В составе фенольных соединений доля флавоноидов была незначительна и не превышала 3,9% (миндаль), 1,2% (фундук). В грецком орехе доля флавоноидов составила лишь 0,2%. В исследуемых образцах сладкого миндаля количество флавоноидов было больше на 1,84 мг/100 г, чем в официальной базе Министерства сельского хозяйства США [16], хотя по другим орехам, полученные значения не достигли среднестатистических данных.

Фенольные соединения орехов в большей степени содержат фенольные кислоты, а также проантоцианидины [1, 3, 23], что также оказывает влияние на их антиоксидантные свойства.

Таблица 3.

Фенольные соединения, флавоноиды и антиоксидантная активность образцов ядер орехов

Table 3.

Phenolic соmроunds, flavonoids, and fntioxidant fctivity of gut rernel samples

Биологически активные вещества Biologically active substances Ядра орехов | Nut kernels

миндаль сладкий almond sweet фундук hazelnut кешью cashew грецкий орех walnut

Фенольные соединения, мг галловой кислоты/100 г Phenolic compounds, mg gallic acid / 100 g 428,6 ± 10,5 865,4 ± 10,0 254,2 ± 10,0 1366,0 ± 12,0

Флавоноиды, мг рутина / 100 г Flavonoids, mg rutin/100g 16,84 ± 0,30 10,26 ± 0,25 2,18 ± 0,10 2,90 ± 0,10

Антиоксидантная активность, мг тролокс экв./100 г Antioxidant activity, mg trolox eq./100 g 26,70 ± 0,60 57,9 ± 0,82 11,98 ± 0,50 81,2 ± 1,85

Антиоксидантная активность орехов, определенная методом FRAP, изменялась в широких пределах с минимальным значением у орехов кешью и максимальным у грецкого ореха. В фундуке и миндале значения антиок-сидантной активности были ниже на 28,7 и 67,1%, чем у грецких орехов. Похожие данные были получены [15], где значения анти-оксидантной активности, определенной этим же методом, установили последовательность: миндаль <фундук <грецкий орех.

Возможно это связано с преобладанием в составе витамина Е токоферолов, причем а-токоферола, обладающего самой низкой антиоксидантной активностью среди гомологов токоферола, а токотриенолы, обладающие большей антиоксидантной активностью, в работе не исследовались. Таким образом, можно говорить о формировании антиоксидантных свойств орехов под влиянием фенольных соединений, что подтверждает исследования, проведенные другими авторами. Так, Wu с соавторами [25], исследуя антиоксидантную активность гидрофильных и липофильных фракций орехов, установили, что она обусловлена гидрофильными антиокси-дантами. Их доля в сладком миндале, фундуке и грецком орехе составляет 96%, в кешью 76%.

Заключение

Ядра орехов сладкого миндаля, фундука, кешью и грецкого ореха, реализуемые на потребительском рынке г. Санкт-Петербурга, хотя и

Для установления влияния основных БАВ на антиоксидантные свойства исследуемых образцов ядер орехов были рассчитаны коэффициенты корреляции (R2) (таблица 4), которые установили наибольшее влияние фенольных соединений. Его коэффициент корреляции R2 составил 0,985. Зависимость между флавоноидами и значениями FRAP полностью отсутствовала, а жирорастворимые антиокси-данты - витамин Е и фитостеролы оказывали влияние, но слабое.

Таблица 4. Table 4.

отличаются содержанием липидов (42,6-65,4%), но в их составе преобладают ненасыщенные жирные кислоты от 80,4 до 92,4 отн. %. В составе жирных кислот миндаля, фундука и кешью превалировала олеиновая кислота, а в грецких орехах -линолевая. Наибольшее количество полиненасыщенных жирных кислот содержит грецкий орех.

Антиоксидантные свойства орехов формирует комплекс водо- и жирорастворимых антиоксидантов. Жирорастворимые антиокси-данты включают витамин Е с преобладанием а-токоферола в сладком миндале и фундуке, у-токоферола - в грецком орехе и кешью, и фитостеролов с преобладанием ß-ситостерола во всех исследованных орехах. Водорастворимые антиоксиданты представлены преимущественно фенольными соединениями с максимальным их содержанием в грецком орехе, которые оказывают существенное влияние на значения FRAP.

Зависимость (R2) антиоксидантной активности (FRAP) образцов орехов от содержания в них биологически активных веществ

Dependence (R2) of antioxidant activity (FRAP) of nut samples on the content of biologically active substances in them

Антиоксидантная активность Antioxidant activity Витамин Е Vitamin E Фитостеролы Phytosterols Фенольные соединения Phenolic compounds Флавоноиды Flavonoids P- value

FRAP 0,435 0,361 0,985 0,038 <0,05

Литература

1 Alasalvar C., Bollin B.W. Review of nut phytochemicals, fat-soluble bioactives, antioxidant components and health

effects//British Journal of Nutrition. 2015. № 113.P. S68-78. doi:10.1017/S0007114514003729

2 Yada S., Lapsley K., Huang G. A review of composition studies of cultivated almonds: Macronutrients and micronutrients // Journal of Food Composition and Analysis. 2011. V. 24. №4-5. P. 469^180. doi: 10.1016/j .jfca.2011.01.007

3 Yang J., Liu H.R., Halim L. Antioxidant and antiproliferative activities of common edible nut seeds // LWT - Food Science and Technology. 2009. V. 42. № 1. P. 1-8. doi:10.1016/j.lwt.2008.07.007

4 Albert C.M., Gaziano J.M., Willett W.C., Manson J.E. et al. Nut consumption and decreased risk of sudden cardiac death in the physicians'health study //Archives of Internal Medicine. 2002. № 162. P. 1382-1387. doi:10.1001/archinte,162.12.1382

5 Food and Drug Administration (FDA), Qualift Health Claims: Letter of Enforcement Discretion - Nuts and Coronary Heart Disease, Docket № 02P-0505, Food and Drug Administration, Washington, DC, 2003.

6 Chang S.K., Alasalvar C., Boiling B.W., Shahid F. Nuts and their co-products: Hie impact of processing (roasting) on phenolics, bioavailability, and health benefits - A comprehensive review // Journal of Functional Foods. 2016. № 26. P. 88-122. doi: http://dx.doi.Org/10.1016/j.jff.2016.06.029

7 Alasalvar C., Salvado J.S., Ros E. Bioactives and health benefits of nuts and dried fruits // Food Chemistry. 2020. V. 314. 126192. doi: 10.1016/j.foodchem.2020.126192.

S Болотова А.С. Химический состав орехов интродуцированных сортов сладкого миндаля в южном Кыргыстане // Sciences of Europe. 2017. № 13 (13). С. 8-12.

9 Нилова Л.П., Шеленга Т.В., Васипов В.В. Влияние муки кедрового ореха на биохимический состав изделий из пшеничной муки // Технология и товароведение инновационных пищевых продуктов. 2017. № 2 (43). С. 3-8.

10 Kamiloglu S., Pasli А.А., Ozcelik В., Capanoglu Е. Evaluating the in vitro bioaccessibility of phenolics and antioxidant activity during consumption of dried fruits with nuts // LWT - Food Science and Technology. 2014. V. 56. № 2. Р. 284-289. doi: 10.1016/j.lwt.2013.11.040

11 Lainas K., Alasalvar C., Boiling B.W. Effects of roasting on proanthocyanidin contents of Turkish Tombul hazelnut and its skin // Journal of Functional Foods. 2016. № 23. P. 647-653. doi: 10.1016/j.jff.2016.03.029

12 Kalogeropoulos N, Cliiou A., Ioannou M.S., Karathanos V.T. Nutritional evaluation and health promoting activities of nuts and seeds cultivated in Greece // International Journal of Food Sciences and Nutrition. 2013. № 64. Р. 757-767. doi: 10.3109/09

13 Slatnar A., Mikulic-Petkovsek M., Stampar F., Veberic R. et al. HPLC-MSn identification and quantification of phenolic compounds in hazelnut kernels, oil and bagasse pellets // Food Research International. 2014. № 64. Р. 783-789. doi: 10.1016/j.foodres.2014.08.009

14 Pelvan E., Olgun E.O., Karadag A., Alasalvar C. Phenolic profiles and antioxidant activity of Turkish Tombul hazelnut samples (natural, roasted, and roasted hazelnut skin)// Food Chemistry. 2018. №244. P. 102-108. doi:10.1016/j.foodchem.2017.10.011

15 Дмитриева A.H., Макарова H.B. Сравнительный анализ химического состава и антиоксидантных свойств орехоплодного сырья // Хранение и переработка сельхозсырья. 2015. № 12. С. 40-43.

16 U.S. Department of Agriculture (USDA), National Nutrient Database for Standard Reference, Release 19. URL: http://www.nal.usda.gov/fnic/foodcomp/search

17 Barros A., Nunes F.M., Goimlves В., Bennett R.N. et al. Effect of cooking on total vitamin С contents and antioxidant activity of sweet chestnuts (Castanea sativa Mill.) // Food Chemistry. 2011. № 128. P. 165-172. doi: 10.1016/j .foodchem.2011.03.013

18 Ta§ N.G., Gokmen V. Phenolic compounds in natural and roasted nuts and their skins: a brief review // Current Opinion in Food Science.'2017. № 14. P. 103-109. doi:10.1016/j.cofs.2017.03.001

19 Ta§ N.G., Gokmen V. Bioactive compounds in different hazelnut varieties and their skins. // Journal of Food Composition and Analysis. 2015. №43. P. 203-208. doi:10.1016/j.jfca.2015.07.003

20 Stuetz W., Schlormann W., Gle M. B-vitamins, carotenoids and a-/y-tocopherol in raw and roasted nuts // Food Chemistry. 2017. №221. P. 222-227. doi:10.1016/j.foodchem.2016.10.065

21 Komsteiner M., Wagner K.-H., Elmadfa I. Tocopherols and total phenolics in 10 different nut types // Food Chemistry. 2006. V. 98. №2. P. 381-387. doi:10.1016/j.foodchem.2005.07.033

22 Kerry Yi.Zh., Wilkinson L., Wirthensohn M.G. Lipophilic antioxidant content of almonds (Primus dulcis): A regional and varietal study //'journal ofFood Composition and Analysis. 2015. № 39. P. 120-127. doi:10.1016/j.jfca.2014.12.003

23 Chen C-Y.O., Blumberg J.B. Phytochemical composition of nuts // Asia Pacific journal of clinical nutrition. 2008. V. 17. № 1. P. 329-332. doi:10.6133/apjcn.2008.17.sl.81

24 WangM,3iangL., WuX.,3iao Ya. etal. Quantitative detennination of free and esterifredphytosterol profile in nuts and seeds commonly consumed in China by SPE/GC-MS // LWT - Food Science and Technology. 2019. № 100. P. 355-361. doi: 10.1016/j .lwt.2018.10.077

25 Wu X., Beecher G.R., Holden J.M., Haytowitz D.B. et al. Lipophilic and hydrophilic antioxidant capacities of common foods in the United States // J. Agric. Food Chem., 2004. № 52. Р. 4026-4037. doi: 10.1021/jf049696w.

References

1 Alasalvar C., Bollin B.W. Review of nut phytochemicals, fat-soluble bioactives, antioxidant components and health effects. British Journal ofNutrition. 2015. no. 113. pp. 68-78. doi: 10.1017/S0007114514003729

2 Yada S., Lapsley K., Huang G. A review of composition studies of cultivated almonds: Macronutrients and micronutrients. Journal of Food Composition and Analysis. 2011. vol. 24. по. 4-5. pp. 469-480. doi: 10.1016/j.jfca.2011.01.007

3 Yang J., Liu H.R., Halim L. Antioxidant and antiproliferative activities of common edible nut seeds. LWT - Food Science and Technology. 2009. vol. 42. no. 1. pp. 1-8. doi:10.1016/j.lwt.2008.07.007

4 Albert C.M., Gaziano J.M., Willett W.C., Manson J.E. et al. Nut consumption and decreased risk of sudden cardiac death in the physicians'health study. Archives of Internal Medicine. 2002. no. 162. pp. 1382-1387. doi: 10.1001/archinte.162.12.1382

5 Food and Drug Administration (FDA), Qualifi Health Claims: Letter of Enforcement Discretion - Nuts and Coronary Heart Disease, Docket № 02P-0505, Food and Drug Administration, Washington, DC, 2003.

6 Chang S.K., Alasalvar C., Bolling B.W., Shahid F. Nuts and their co-products: The impact of processing (roasting) on phenolics, bioavailability, and health benefits - A comprehensive review. Journal of Functional Foods. 2016. no. 26. pp. 88-122. doi: 10.1016/j.jff.2016.06.029

7 Alasalvar C., Salvado J.S., Ros E. Bioactives and health benefits of nuts and dried fruits. Food Chemistry. 2020. no. 314. 126192. doi: 10.1016/j.foodchem.2020.126192

8 Bolotova A.S. Chemical composition of nuts of introduced varieties of sweet almonds in southern Kyrgyzstan. Sciences of Europe. 2017. № 13 (13). pp. 8-12. (in Russian).

9 Nilova L.P., Shelenga T.V., Vasipov V.V. Influence of pine nut flour on biochemical composition of bakery products. Technology and the study of merchandise of innovative foodstuffs. 2017. no. 2 (43). pp. 3-8. (in Russian).

10 Kamiloglu S., Pasli A.A., Ozcelik B., Capanoglu E. Evaluating the in vitro bioaccessibility of phenolics and antioxidant activity during consumption of dried fruits with nuts. LWT - Food Science and Technology. 2014. vol. 56. no. 2. pp. 284-289. doi: 10.1016/j.lwt.2013.11.040

11 Lainas K., Alasalvar C., Bolling B.W. Effects of roasting on proanthocyanidin contents of Turkish Tombul hazelnut and its skin. Journal of Functional Foods. 2016. no. 23. pp. 647-653. doi: 10.1016/j.jff.2016.03.029

12 Kalogeropoulos N., Chiou A., Ioannou M.S., Karathanos, V.T. Nutritional evaluation and health promoting activities of nuts and seeds cultivated in Greece. International Journal of Food Sciences and Nutrition. 2013. no 64. pp. 757-767. doi: 10.3109/09637486.2013.793298

13 Slatnar A., Mikulic-Petkovsek M., Stampar F., Veberic R. et al. HPLC-MSn identification and quantification of phenolic compounds in hazelnut kernels, oil and bagasse pellets. Food Research International. 2014. no. 64. pp. 783-789. doi: 10.1016/j.foodres.2014.08.009

14 Pelvan E., Olgun E.O., Karadag A., Alasalvar C. Phenolic profiles and antioxidant activity of Turkish Tombul hazelnut samples (natural, roasted, and roasted hazelnut skin). Food Chemistry. 2018. no. 244. pp. 102-108. doi: 10.1016/j.foodchem.2017.10.011

15 Dmitrieva A.N., Makarova N.V. Comparative analysis of the chemical composition and antioxidant properties of nut raw materials. Storage and Processing of Farm Products. 2015. no. 12. pp. 40-43. (in Russian).

16 U.S. Department of Agriculture (USDA), National Nutrient Database for Standard Reference, Release 19. Available at: http://www.nal.usda.gov/fnic/foodcomp/search.

17 Barros A., Nunes F.M., Gon3alves B., Bennett R.N. et al. Effect of cooking on total vitamin C contents and antioxidant activity of sweet chestnuts (Castanea sativa Mill.). Food Chemistry. 2011. no. 128. pp. 165-172. doi: 10.1016/j.foodchem.2011.03.013

18 Ta§ N.G., Gokmen V. Phenolic compounds in natural and roasted nuts and their skins: a brief review. Current Opinion in Food Science. 2017. no. 14. pp. 103-109. doi: 10.1016/j.cofs.2017.03.001

19 Ta§ N.G., Gokmen V. Bioactive compounds in different hazelnut varieties and their skins. Journal of Food Composition and Analysis. 2015. no. 43. pp. 203-208. doi: 10.1016/j.jfca.2015.07.003

20 Stuetz W., Schlormann W., Gle M. B-vitamins, carotenoids and a-/y-tocopherol in raw and roasted nuts. Food Chemistry. 2017. no. 221. pp. 222-227. doi: 10.1016/j.foodchem.2016.10.065

21 Kornsteiner M., Wagner K.-H., Elmadfa I. Tocopherols and total phenolics in 10 different nut types. Food Chemistry. 2006. vol. 98. no. 2. pp. 381-387. doi: 10.1016/j.foodchem.2005.07.033

22 Kerry Yi.Zh., Wilkinson L., Wirthensohn M.G. Lipophilic antioxidant content of almonds (Prunus dulcis): A regional and varietal study. Journal of Food Composition and Analysis. 2015. no. 39. pp. 120-127. doi: 10.1016/j.jfca.2014.12.003

23 Chen C-Y.O., Blumberg J.B. Phytochemical composition of nuts // Asia Pacific journal of clinical nutrition. 2008. vol. 17. no. 1. pp. 329-332. doi: 10.6133/apjcn.2008.17.s1.81

24 Wang M., Zhang L., Wu X., Zhao Ya. et al. Quantitative determination of free and esterified phytosterol profile in nuts and seeds commonly consumed in China by SPE/GC-MS. LWT - Food Science and Technology. 2019. no. 100. pp. 355-361. doi: 10.1016/j.lwt.2018.10.077

25 Wu X., Beecher G.R., Holden J.M., Haytowitz D.B. et al. Lipophilic and hydrophilic antioxidant capacities of common foods in the United States. J. Agric. Food Chem. 2004. no. 52. pp. 4026-4037. doi: 10.1021/jf049696w. (in Russian).

Сведения об авторах

Людмила П. Нилова к.т.н., доцент, высшая школа сервиса и торговли, институт промышленного менеджмента, экономики и торговли, Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого, ул. Политехническая, 29, г. Санкт-Петербург, 195251, Россия, nilova_l_p@mail.ru

https://orcid.org/0000-0002-5154-7095 Светлана М. Малютенкова к.т.н., доцент, высшая школа сервиса и торговли, институт промышленного менеджмента, экономики и торговли, Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого, ул. Политехническая, 29, г. Санкт-Петербург, 195251, Россия, malutesha66@mail.ru https://orcid.org/0000-0002-8081-6688

Вклад авторов Людмила П. Нилова написала рукопись, корректировала её до подачи в редакцию и несет ответственность за плагиат Светлана М. Малютенкова предложила методику проведения эксперимента

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Information about authors

Li lid mi la P. Nilova Cand. Sci. (Engin.), associate professor, graduate school of service and trade, institute of industrial management, economics and trade, Peter the Great St. Petersburg Polytechnic University, Politechnicheskaya St., 29, Saint-Petersburg, 195251, Russia, nilova_l_p@mail.ru

https://orcid.org/0000-0002-5154-7095 Svetlana M. Malyutenkova Cand. Sci. (Engin.), associate professor, graduate school of service and trade, institute of industrial management, economics and trade, Peter the Great St. Petersburg Polytechnic University, Politechnicheskaya St., 29, Saint-Petersburg, 195251, Russia, malutesha66@mail.ru https://orcid.Org/0000-0002-8081-6688

Contribution

Liudmila P. Nilova wrote the manuscript, correct it before filing

in editing and is responsible for plagiarism

Svetlana M. Malyutenkova proposed a scheme of the

experiment

Conflict of interest

The authors declare no conflict of interest.

Поступила 28/04/2020_После редакции 07/05/2020_Принята в печать 16/05/2020

Received 28/04/2020 Accepted in revised 07/05/2020 Accepted 16/05/2020