Влияние протеазы и фитазы на физиологическое состояние спиртовых дрожжей при культивировании Текст научной статьи по специальности «Промышленные биотехнологии»

ВестнщФТУМт:/Proceedings of VSUET ISSN 2226-910X E-ISSN 2310-1202

DOI: http://doi.org/1Q.2Q914/2310-12Q2-2Q19-4-98-1Q2_Оригинальная статья/Research article_

УДК 640_Open Access Available online at vestnik-vsuet.ru

Влияние протеазы и фитазы на физиологическое состояние _спиртовых дрожжей при культивировании_

Татьяна С. Ковалева 1 [email protected]

Геннадий В. Агафонов 1 [email protected] 0000-0002-2133-5606

Алексей Н. Яковлев 1 [email protected] _Светлана Ф. Яковлева 1 [email protected]_

1 Воронежский государственный университет инженерных технологий, пр-т Революции, 19, г. Воронеж, 394036, Россия Аннотация. В производстве этилового спирта применяются дрожжи Saccharomyces cerevisiae. Основные требования, предъявляемые к дрожжам, используемым в производстве этилового спирта из крахмалсодержащего сырья: спиртовые дрожжи, применяемые при переработке крахмалистого сырья, должны иметь высокую бродильную активность; полную сбраживаемость сахаров, устойчивость к продуктам метаболизма, устойчивость к развитию посторонней микрофлоры. В качестве источника протеазы использовали протеолитический ферментный препарат Пролайв BS Ликвид. В качестве источника фитазы применяли ферментный препарат Кингфос. Изучали влияние ферментных препаратов нейтральной протеазы Пролайв BS Ликвид и фитазы Кингфос на бродильную активность спиртовых дрожжей Saccharomyces cerevisiae расы XII. Максимальной бродильной активностью обладают дрожжи, культивируемые на сусле, полученном с использованием протеазы и фитазы. Продолжительность фазы экспоненциального роста в опыте составляет 14-16 часов, в контроле 18-20 ч. Экспоненциальная фаза описывается уравнением Моно. Дрожжи в опыте по сравнению с дрожжами в контроле размножаются более интенсивно и к 14-16 ч роста накапливают в культуральной среде около 170 млн дрожжевых клеток, а дрожжи в контроле около 95 млн дрожжевых клеток к 18-20 ч роста. Удельная скорость роста была максимальна в логарифмической фазе и составила 0,35 млн клеток/см3ч в опытных образцах и 0,25 млн клеток/см3ч в контроле. Установлено, что максимальное накопление дрожжевых клеток наблюдалось при внесении в сусло ферментного препарата нейтральной протеазы Пролайв BS Ликвид дозировкой 0,2 ед. ПС/г крахмала и ферментного препарата фитазы Кингфос дозировкой 0,5 ед. ФС/г крахмала, содержание дрожжевых клеток в зрелых дрожжах достигало 170 млн клеток/см3 к 16-18 ч культивирования, дрожжи имеют высокую бродильную активность.

Ключевые слова: осахаривание, ферментные препараты, глюкоамилаза, разваренная масса, величина рН, температура, ячменное сусло, гидролих крахмала, мультиэнзимный комплекс

Effect of protease and phytase on the physiological state of alcoholic _yeast in cultivation_

Tatyana S. Kovaleva 1 [email protected]

Gennady V. Agafonov 1 [email protected] 0000-0002-2133-5606

Aleksey N. Yakovlev 1 [email protected] _Svetlana F. Yakovleva 1 [email protected]_

1 Voronezh State University of Engineering Technologies, Revolution Av., 19 Voronezh, 394036, Russia

Abstract. Saccharomyces cerevisiae yeast is used in the production of ethyl alcohol. The main requirements for yeast used in the production of ethyl alcohol from starch-containing raw materials: alcohol yeast used in the processing of starchy raw materials must have high fermentation activity; complete fermentability of sugars, resistance to metabolic products, resistance to the development of extraneous microflora. Proteolytic enzyme preparation Prolive BS Liquid was used as a source of protease. Kingphos enzyme preparation was used as a source of phytase. The effect of the enzyme preparations of the neutral protease Prolive BS Liquid and Phytase Kingphos on the fermentation activity of alcohol yeast Saccharomyces cerevisiae race XII was studied. The maximum fermentation activity is possessed by yeast cultivated on the wort, obtained using protease and phytase. The duration of the exponential growth phase in the experiment is 14-16 hours, in the control -18-20 hours. The exponential phase is described by the Mono equation. Compared to the yeast in the control, the yeast in the experiment multiplies more intensively, and by 14-16 hours of growth, about 170 million yeast cells accumulate in the culture medium, and the yeast in the control-about 95 million yeast cells by 18-20 h of growth. The specific growth rate was maximum in the logarithmic phase and amounted to 0.35 million cells / cm3 • h in the experimental samples and 0.25 million cells / cm3 • h in the control. It was found that the maximum accumulation of yeast cells was observed when the neutral enzyme Prolive BS Liquid was added to the wort with a dosage of 0.2 units. PS/g of starch and enzyme preparation Phytase Kingfos with a dosage of 0.5 units. FS/g of starch, the yeast cell content in mature yeast reached 170 million cells / cm3 by 16-18 hours of cultivation, the yeast has a high fermentation activity.

Keywords: saccharification, enzyme preparations, glucoamylase, boiled mass, pH, temperature, barley wort, hydrolyzed starch, multienzyme complex

Введение

В производстве этилового спирта применяются дрожжи Saccharomyces cerevisiae, которые являются одноклеточными микроорганизмами.

Для цитирования

Ковалева Т.С., Агафонов Г.В., Яковлев А.Н., Яковлева С.Ф. Влияние протеазы и фитазы на физиологическое состояние спиртовых дрожжей при культивировании // Вестник ВГУИТ. 2019. Т. 81. № 4. С. 98-102. doi:10.20914/2310-1202-2019-4-98-102_

© 2019, Ковалева Т.С. и др. / Kovaleva Т^. et а1.

Дрожжи Saccharomyces cerevisiae являются факультативными анаэробами, по типу питания -хемоорганогетеротрофами; по отношению к активной кислотности среды - ацидофилами [1-4].

For citation

Kovaleva T.S., Agafonov G.V., Yakovlev A.N., Yakovleva S.F. Effect of protease and phytase on the physiological state of alcoholic yeast in cultivation. Vestnik VGUIT [Proceedings of VSUET]. 2019. vol. 81. no. 4. pp. 98-102. (in Russian).

doi:10.20914/2310-1202-2019-4-98-102_

This is an open access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution 4.0 International License

98 БД Agris

Ковалева Т.С и др. &естник,<ВГУИТ, 2019, Т. 81, №. 4,

Основные требования, предъявляемые к дрожжам, используемым в производстве этилового спирта из крахмалсодержащего сырья: спиртовые дрожжи, применяемые при переработке крахмалистого сырья, должны иметь высокую бродильную активность, полную сбра-живаемость сахаров, устойчивость к продуктам метаболизма (особенно к спирту), к развитию посторонней микрофлоры.

Для нормального метаболизма дрожжевых клеток необходимо содержание в питательной среде всех веществ, а также необходимы условия, исключающие стрессовые воздействия, вызываемые температурами, высокими концентрациями углеводов и этанола [5,6].

Совокупность характеристик, отражающих потребности дрожжевых организмов в определенных физико-химических условиях среды, относят к физиологическим признакам. Одним из основных признаков является способность к сбраживанию сахаров до этанола и углекислого газа. Способность дрожжей сбраживать определенное количество сахара за единицу времени называют бродильной активностью, которая определяется по количеству выделившегося диоксида углерода в единицу времени. Одновременно определяют процесс размножения дрожжей и накопление в клетках гликогена [7-11].

Повышение бродильной активности дрожжей может быть достигнуто применением сбалансированного состава питательной среды.

Материалы и методы

В качестве источника протеазы использовали протеолитический ферментный препарат Пролайв BS Ликвид. Ферментный препарат нейтральной протеазы Пролайв BS Ликвид получают путём глубинного культивирования бактериального штамма Вас. тЬй^. Представляет собой сиропообразную жидкость светло-коричневого цвета удельной плотностью 1,25 г./см3 и обладает высокой протеолитической активностью. Пролайв BS Ликвид - это эндофермент, гидролизу-ющий пептидные связи в белках с образованием растворимых пептидов и аминокислот, что способствует обогащению среды дополнительным азотистым питанием для дрожжей. Активность ферментного препарата 600-750 ед. ПС/см3. Оптимальные условия действия препарата: рН 5,5-7,5; температура 50-55 °С.

В качестве источника фитазы применяли ферментный препарат Кингфос. Ферментный препарат Кингфос (Kingphos) содержит фитазу (Мю inоsitоU hехарhоsрhаtе рhоsрhо hуdrоlаsе ЕС №.: 3.1.3.8) с активностью не менее 10000 ед./г (10%). Продуцент -РкЫа pastoris. По внешнему виду ферментный препарат Кингфос представляет собой порошок белого или желтоватого цвета. Оптимальные условия действия препарата: рН 5,5-6,5; температура 40-45 °С.

Для подсчета клеток дрожжей применяли камеру Горяева. Для определения процентного содержания нежизнеспособных клеток на предметном стекле каплю дрожжей Saccharomyces cerevisiae смешивали с каплей метиленового синего. Приготовленный препарат просматривали в 10 полях зрения. Определяли

С. 98-102 [email protected]

процентное содержание нежизнеспособных клеток по отношению к общему числу клеток, наблюдаемых в поле зрения. Хорошие засевные дрожжи содержат не более 1% мертвых клеток.

Количество почкующихся клеток характеризует способность дрожжей к размножению: активные дрожжи содержат 50-70% клеток с почками. Из дрожжевой суспензии готовят препарат «раздавленная капля» и определяют процентное содержание почкующихся клеток по отношению к суммарному количеству дрожжей с почками и без них.

Изучали влияние ферментных препаратов нейтральной протеазы Пролайв BS Ликвид и фитазы Кингфос на бродильную активность спиртовых дрожжей Saccharomyces cerevisiae расы XII. При приготовлении дрожжевого сусла в него вносили ферментный препарат Пролайв BS Ликвид при дозировке 0,3 ед. ПС/г крахмала и ферментный препарат фитазы Кингфос при дозировке 0,5 ед. ФС/г крахмала. В контроле дополнительные ферментные препараты при приготовлении дрожжевого сусла не вносили. В сусло при температуре 30 °С вносили дрожжи в количестве 10% от объема сусла. Процесс дрожжеге-нерации проводили 18-20 ч при температуре 28-30 °С в колбах на 750 см3. Ежечасно весовым методом определяли количество выделенного углекислого газа.

Результаты и обсуждение По полученным данным построили график (рисунок 1).

4 8 12 16

Продолжительность культивирования,ч Duration of cultivation, h

Рисунок 1. Влияние ферментных препаратов на бродильную активность спиртовых дрожжей: 1 - контроль; 2 - протеаза 0,2 ед. ПС/г крахмала; 3 - фитаза 0,5 ед. ФС/г крахмала; 4 - протеаза 0,2 ед. ПС/г крахмала, фитаза 0,5 ед. ФС/г крахмала Figure 1. The effect of enzyme preparations on the fermentation activity of alcoholic yeast: 1 - control; 2 - protease 0,2 ed. PS/g starch; 3 - phytase 0.5 ed. FS/g starch; 4 - protease 0.2 unit's PS/g starch, phytase 0.5 ed. FS/g starch

Из рисунка 1 видно, что максимальной бродильной активностью обладают дрожжи, культивируемые на сусле, полученном с использованием протеазы и фитазы. Кроме того, максимальная бродильная активность спиртовых дрожжей в контроле наблюдается к 12 ч роста, а в опытных образцах - к 10 ч роста.

Копаема Т.Л. еЬ аС. Ргосее^^ о/ УЛЪЕТ, 2019, vo^ 81, по. Прямая ассимиляция аминокислот обеспечивает не только интенсификацию синтеза белка, но и активирует содержащиеся в дрожжевой клетке ферменты, на что указывает высокая бродильная активность. Микроэлементы, такие как кальций, цинк, магний, получаемые при гидролизе фитина, также способствуют повышению бродильной активности дрожжей.

™ 180

Й -S

s ^

(U Й

о ^ Л о

160 140 120 100 80 60 40 20 0

4 8 12 16

Продолжительность культивирования,ч Duration of cultivation, h

Рисунок 2. Влияние ферментных препаратов на динамику накопление биомассы дрожжей: 1 - контроль; 2 - протеаза 0,2 ед. ПС/г крахмала; 3 - фитаза 0,5 ед. ФС/г крахмала; 4 - протеаза 0,2 ед. ПС/г крахмала, фитаза 0,5 ед. ФС/г крахмала Figure 2. Influence of enzyme preparations on dynamics of yeast biomass accumulation: 1 - control; 2 - protease 0,2 PS/g starch; 3 - phytase 0,5 PS/g starch; 4 - protease 0,2 PS/g starch, phytase 0,5 FS/g starch

Из рисунка 2 видно, что дрожжевой клетке присущи 4 фазы жизнедеятельности, которые характеризуются различным приростом дрожжевых клеток.

1. Лаг-фаза. Характеризуется очень сложным ферментативным процессом, чрезвычайно чувствительными к составу среды, ее температуре, активной кислотности. В этой фазе незначительно увеличивается объем дрожжевых клеток, синтезируются нуклеиновые кислоты, и аккумулируется энергия для дальнейшего активного накопления биомассы. Продолжительность лаг-фазы для дрожжей в опыте 1-2 ч, а в контроле 2-3 ч.

2. Логарифмическая фаза или фаза экспоненциального роста. Характеризуется высокой активностью размножения клеток. Количество почкующихся клеток быстро увеличивается, достигая 45-50%. Биомасса дрожжей при этом постепенно повышается вследствие образования новых дочерних клеток, которые, вырастая до материнской клетки, начинают почковаться, образуя новую генерацию. В этой фазе наблюдается максимальная скорость роста дрожжевых клеток. Продолжительность периода в опыте

4, рр. 98-102 [email protected]

составляет 14-16 ч, в контроле 18-20 ч. Экспоненциальная фаза описывается уравнением Моно:

М = М0ек,

где М1 - количество дрожжей за время ,, кг; М0 - начальное, засевное количество дрожжей, кг; е - основание натурального логарифма; к - удельная скорость роста или коэффициент образования биомассы (зависит от расы дрожжей, концентрации питательной среды и ее состава, аэрации и других факторов); , - время размножения дрожжей.

3. Стационарная фаза. Характеризуется постепенным замедлением темпа роста. Образование новых клеток практически прекращается, заканчивается их почкование, т. к. истощается питательная среда, образуются продукты метаболизма, которые тормозят рост и размножение клеток. Для поддержания жизнедеятельности клетки используют оставшиеся в культуральной среде питательные вещества. Клетки увеличиваются в размере, масса их также возрастает. Прирост биомассы в этой фазе может составить 5-10% от массы дрожжей, накопленных в логарифмической фазе. В этот период происходят внутриклеточные биосинтетические процессы, которые формируют зрелость дрожжевой клетки. Ферментные системы дрожжевой клетки перестраиваются с активного синтеза биомассы на процессы обмена, поддерживающие их жизнедеятельность. Воспроизводство новых замедляется. Наступает фаза спада.

55

£ 50 45 40 35 30 25 20 15 10 5

и

S ^ ¡2 ^ « "и о о

й е

И

S "о

° Л

и "В ¡3 I

s!

s

i

0 4 8 12 16 20

Продолжительность культивирования,ч Duration of cultivation, h

Рисунок 3. Влияние ферментных препаратов на динамику размножения дрожжей: 1 - контроль; 2 - протеаза 0,2 ед. ПС/г крахмала; 3 - фитаза 0,5 ед. ФС/г крахмала; 4 - протеаза 0,2 ед. ПС/г крахмала, фитаза 0,5 ед. ФС/г крахмала

Figure 3. The effect of enzyme preparations on the dynamics of yeast reproduction: 1 - control; 2 - protease 0.2 unit's PS/g starch; 3 - phytase 0.5 units FS/g starch; 4 - protease 0.2 unit's PS/g starch, phytase 0.5 units FS / g starch

0

КовалеваТ.С и др. ВестникВТУИШ, 2019, Т. 81, №. 4, С- 98-102

4. Фаза затухания (отмирания). В среде в значительном количестве накапливаются »

продукты метаболизма. Фаза характеризуется |

отсутствием роста и размножения клеток. Масса клеток уменьшается, т. к. все питательные вещества культуральной среды использованы в предыдущей фазе. Идет постепенное отмирание клеток. Для поддержания жизнедеятельности клеток начинают использовать собственные запасы. Наблюдается автолиз клеток.

Дрожжи в опыте по сравнению с дрожжами в контроле размножаются более интенсивно и к 14-16 ч роста накапливают в культуральной среде около 170 млн дрожжевых клеток, а дрожжи в контроле около 95 млн дрожжевых клеток к 18-20 ч роста. Таким образом, процесс культивирования дрожжей при использовании дополнительных ферментных препаратов можно ограничить 14-16 ч роста, и при этом дрожжевых клеток накапливается почти в 2 раза больше, чем в контроле. Все это позволяет уменьшит количество засевных дрожжей, вносимых в бродильный аппарат, что приводит к уменьшению потерь сбраживаемых углеводов на накопление биомассы дрожжей и увеличению выхода спирта.

Более высокий уровень почкования дрожжевых клеток (рисунок 3) в опыте достигался к 12 ч, а в контроле - к 14 ч, что соответствует примерно середине логарифмической фазы и составляет 50% в опыте и 40% - в контроле.

Быстро возникающее энергичное брожение угнетает процесс дыхания и вследствие этого приостанавливает почкование и размножение клеток, также происходит быстрое обеднение субстрата питательными веществами, что, в свою очередь, создает неблагоприятные условия для почкования. В конце культивирования дрожжевые клетки потребляли свои резервные вещества, такие как гликоген, и количество почкующихся клеток достигало 4-5%.

Весьма характерным показателем является скорость роста культуры дрожжей. Мы пользовались удельной скоростью роста, которую определяли по приросту количества клеток за определенный отрезок времени.

postevestnik-vsuet. ru

^ £ § *

я « g '3

I ^

0,4 0,35 0,3 0,25 0,2 0,15 0,1 0,05 0

4 8 12 16

Продолжительность культивирования,ч ^^^^ ^ Duration ofcultivation, h ^

Рисунок 4. Влияние ферментных препаратов на скорость размножения дрожжей: 1 - контроль;

2 - протеаза 0,2 ед. ПС/г крахмала; 3 - фитаза 0,5 ед. ФС/г крахмала; 4 - протеаза 0,2 ед. ПС/г крахмала, фитаза 0,5 ед. ФС/г крахмала

Figure 4. Effect of enzyme preparations yeast reproduction rate: 1 - control; 2 - protease 0.2 ed. PS/g starch;

3 - phytase 0.5 ed. FS/g starch; 4 - protease 0.2 unit's PS/g starch, phytase 0.5 ed. FS/g starch

Удельная скорость роста была максимальна в логарифмической фазе (рисунок 4), когда брожение протекает слабо и составила 0,35 млн клеток/см3ч в опытных образцах и 0,25 млн клеток/см3ч - в контроле.

Заключение

Исследовано влияние различных источников дополнительного питания и ферментных препаратов протеазы и фитазы на процесс культивирования дрожжей в спиртовом производстве.

Установлено, что максимальное накопление дрожжевых клеток наблюдается при внесении в сусло ферментного препарата нейтральной протеазы Пролайв BS Ликвид дозировкой 0,2 ед. ПС/г крахмала и ферментного препарата фитазы Кингфос дозировкой 0,5 ед. ФС/г крахмала, содержание дрожжевых клеток в зрелых дрожжах достигает 170 млн клеток/см3 к 16-18 ч культивирования, дрожжи имеют высокую бро-

дильную активность.

Литература

1 Яковлев А.Н., Агафонов Г.В., Яковлева С.Ф., Алексеева Н.И. и др. Влияние мультиэнзимной композиции на процесс брожения ржаного сусла //Производство спирта и ликероводочных изделий. 2013. № 3. С 26-28.

2 Яковлева С.Ф., Яковлев А.Н., Корнеева О.С. Получение этилового спирта из ржи с использованием мультиэнзимной композиции //Биотехнология. 2011. № 6. С. 63-69.

3 Mikulski D., Klosowski G., Rolbiecka A. Influence of phytase and supportive enzymes applied during high gravity mash preparation on the improvement of technological indicators of the alcoholic fermentation process // Biomass and Bioenergy. 2015. V. 80. P. 191-202.

4 Son C.K. Impacts of liquefaction time and enzymes on ethanol yield of very high gravity processfor beverage ethanol production // Vietnam Journal of Science and Technology. 2016. V. 54. № 4A. P. 242.

5 Фараджева Е.Д., Федоров В.А., Агафонов Г.В. Общая технология бродильных производств. Воронеж: ИПЦ «Научная книга». 2012. 728 с.

6 Polyakov V.A., Serba Е.М., Overchenko М.В., Ignatova N.I. et al. The effect of a complex phytase-containing enzyme preparation on the process of rye wort fermentation // Food and Raw Materials. 2019. V. 7. P. № 2. P. 221-228.

Kovaléva T.S. et ai. Proceedings of VSUET, 2019, voC. 81, no. 4, pp. 98-102

post@vestnik-vsuet. ru

7 Fang L., Wang T., Lamsal B. Use of surfactant and enzymes in dry-grind corn ethanol fermentation improves yield of ethanol and distillers corn oil // Industrial crops and products. 2018. № 111. P. 329-335.

8 Yuan Z., Li G., Hegg, E.L. Enhancement of sugar recovery and ethanol production from wheat straw through alkaline pre-extraction followed by steam pretreatment // Bioresource technology. 2018. № 266. P. 194-202.

9 Xu Y., Zhang M., Roozeboom K., Wang, D. Integrated bioethanol production to boost low-concentrated cellulosic ethanol without sacrificing ethanol yield // Bioresource technology. 2018. № 250. P. 299-305.

10 Franco J.H., Minteer S.D., de Andrade A.R. Product analysis of operating an ethanol/02 biofuel cell shows the synergy between enzymes within an enzymatic cascade //Journal of The Electrochemical Society. 2018. V. 165. №9. P. H575-H579.

llLukajtis R., Kucharska K., Holowacz I., Rybarczyk P. et al. Comparison and optimization of saccharification conditions of alkaline pre-treated triticale straw for acid and enzymatic hydrolysis followed by ethanol fermentation // Energies. 2018. V. 11. № 3. P. 639.

References

1 Yakovlev A.N., Agafonov G.V., Yakovleva S.F., Alekseeva N.I. et al. Influence of a multi-enzyme composition on the process of fermentation of rye wort. Production of alcohol and alcoholic beverages. 2013. no. 3. pp. 26-28. (in Russian).

2 Yakovleva S.F., Yakovlev A.N., Korneeva O.S. Obtaining ethyl alcohol from rye using a multi-enzyme composition. Biotechnology. 2011. no. 6. pp. 63-69. (in Russian).

3 Mikulski D., Klosowski G., Rolbiecka A. Influence of phytase and supportive enzymes applied during high gravity mash preparation on the improvement of technological indicators of the alcoholic fermentation process. Biomass and Bioenergy. 2015. vol. 80. pp. 191-202.

4 Son C.K. Impacts of liquefaction time and enzymes on ethanol yield of very high gravity processfor beverage ethanol production. Vietnam Journal of Science and Technology. 2016. vol. 54. no. 4a. pp. 242.

5 Faradzheva E.D., Fedorov V.A., Agafonov G.V. General technology of fermentation. Voronezh, Nauchnaya kniga, 2012. 728 p. (in Russian).

6 Polyakov V.A., Serba E.M., Overchenko M.B., Ignatova N.I. et al. The effect of a complex phytase-containing enzyme preparation on the process of rye wort fermentation. Food and Raw Materials. 2019. vol. 7. pp. no. 2. pp.221-228.

7 Fang L., Wang T., Lamsal B. Use of surfactant and enzymes in dry-grind corn ethanol fermentation improves yield of ethanol and distillers corn oil. Industrial crops and products. 2018. no. 111. pp. 329-335.

8 Yuan Z., Li G., Hegg, E.L. Enhancement of sugar recovery and ethanol production from wheat straw through alkaline pre-extraction followed by steam pretreatment. Bioresource technology. 2018. no. 266. pp. 194-202.

9 Xu Y., Zhang M., Roozeboom K., Wang, D. Integrated bioethanol production to boost low-concentrated cellulosic ethanol without sacrificing ethanol yield. Bioresource technology. 2018. no. 250. pp. 299-305.

10 Franco J.H., Minteer S.D., de Andrade A.R. Product analysis of operating an ethanol/O2 biofuel cell shows the synergy between enzymes within an enzymatic cascade. Journal of The Electrochemical Society. 2018. vol. 165. no. 9. pp. H575-H579.

11 Lukajtis R., Kucharska K., Holowacz I., Rybarczyk P. et al. Comparison and optimization of saccharification conditions of alkaline pre-treated triticale straw for acid and enzymatic hydrolysis followed by ethanol fermentation. Energies. 2018. vol. 11. no. 3. pp. 639.

Сведения об авторах Татьяна С. Ковалева аспирант, кафедра технологии бродильных и сахаристых производств, Воронежский государственный университет инженерных технологий, пр-т Революции, 19, г. Воронеж, 394036, Россия, [email protected] Геннадий В. Агафонов д.т.н., профессор, кафедра технологии бродильных и сахаристых производств, Воронежский государственный университет инженерных технологий, пр-т Революции, 19, г. Воронеж, 394036, Россия, [email protected]

https://orcid.org/0000-0002-2133-5606 Алексей Н. Яковлев к.т.н., доцент, кафедра технологии бродильных и сахаристых производств, Воронежский государственный университет инженерных технологий, пр-т Революции, 19, г. Воронеж, 394036, Россия, [email protected] Светлана Ф. Яковлева к.т.н., доцент, кафедра биохимии и биотехнологии, Воронежский государственный университет инженерных технологий, пр-т Революции, 19, г. Воронеж, 394036, Россия, [email protected]

Вклад авторов Все авторы в равной степени принимали участие в написании рукописи и несут ответственность за плагиат

Конфликт интересов Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Information about authors Tatyana S. Kovaleva graduate student, technology of fermentation and sugar industries department, Voronezh State University of Engineering Technologies, Revolution Av., 19 Voronezh, 394036, Russia, [email protected]

Gennady V. Agafonov Dr. Sci. (Engin.), professor, technology of fermentation and sugar industries department, Voronezh State University of Engineering Technologies, Revolution Av., 19 Voronezh, 394036, Russia, [email protected] https://orcid.org/0000-0002-2133-5606

Aleksey N. Yakovlev Cand. Sci. (Engin.), technology of fermentation and sugar industries department, Voronezh State University of Engineering Technologies, Revolution Av., 19 Voronezh, 394036, Russia, [email protected] Svetlana F. Yakovleva Cand. Sci. (Engin.), biochemistry and biotechnology department, Voronezh State University of Engineering Technologies, Revolution Av., 19 Voronezh, 394036, Russia, [email protected] Contribution

All authors are equally involved in the writing of the manuscript and are responsible for plagiarism

Conflict of interest The authors declare no conflict of interest.

Поступила 22/10/2019_После редакции 01/11/2019_Принята в печать 15/11/2019

Received 22/10/2019 Accepted in revised 01/11/2019 Accepted 15/11/2019