CC BY
57
УДК 615.25: 616-001.47
Г.Е. Григорьев 2, О.А. Гольдберг С.А. Лепехова О.П. Ильина 2, Е.В. Коваль ‘, В.А. Суворикова 1
ВЛИЯНИЕ НОВОГО СИБИРСКОГО АНТИСЕПТИКА «АНАВИДИН» НА ЗАЖИВЛЕНИЕ КОЖНОЙ ИНФИЦИРОВАННОЙ РАНЫ
1 Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии СО РАМН (Иркутск) 2 Иркутская государственная сельскохозяйственная академия (Иркутск)
В результате проведенных экспериментальных исследований с использованием крыс установлено, что применение нового сибирского антисептика «Анавидин» способствует, ускорению заживления гнойных кожных ран, о чем. свидетельствует, существенное уменьшение площади, раны, уже на 3-и сутки, в 2 раза — на 9-е сутки, и. 0 значение показателя, к 19-м суткам. Преобладание в грануляционной ткани фибробластов у животных основной группы, обеспечивает, более быстрый темп созревания соединительной ткани, чем. в контроле, на 3—4 дня, с закрытием, раневого дефекта созревающим эпителием, к 19-м суткам., тогда как у животных контрольных групп раны, находились под струпом, до 19-х суток исследования.
Ключевые слова: гнойная кожная рана, антисептики, анавидин
THE INFLUENCE OF NEW SIBERIAN ANTISEPTIC «ANAVIDIN» ON INFECTED SKIN WOUND HEALING
G.E. Grigoriev ‘, 2, O.A. Goldberg 1, S.A. Lepekhova 1, O.P. Iljina 2,
E.V. Koval 1, V.A. Suvorikova 1
1 Scientific Center of Reconstructive and Restorative Surgery SB RAMS, Irkutsk
2 Irkutsk State Agricultural Academy, Irkutsk
As a result of taken experiments using rats it was estelished that use of new Siberian antiseptic «Anavidin» advance the healing of purulent skin wounds, what is proved, by significant reduce of wound area on the 3rd day,
2 times on the 9th day and 0 mark till 19th day. The predominance in granulation, tissue fibroblasts in animals of main group provides faster to 3—4 days connective tissue gestation than in control group, covering wound, defect by gestating epithelium, till the 19th day, at the same time animals of control group had. wounds under eschar till the 19th day of research.
Key words: purulent skin wound, antiseptic, Anavidin
Лечение ран до настоящего времени относится к числу наиболее актуальных проблем современной хирургии. Способы лечения гнойно-некротических процессов, предложенные хирургией, свидетельствуют о том, что даже применение самых эффективных средств не снижает риск возникновения различных осложнений [3]. Широкое применение антибиотиков, эффективность которых в начале была отличной, привело к возникновению ряда сложных проблем [5, 6]. Мутагенное действие антибиотиков на патогенную микрофлору обусловило изменение как этиологической структуры гнойной инфекции, так и биологических свойств микробной клетки с появлением антибиотикорезистентных штаммов [1, 2].
Эта проблема указывает на необходимость пересмотра мнения о монопольном положении антибиотиков и переходе на более обоснованную стратегию и тактику лечения гнойно-септических инфекций, включая интерес к забытой группе антибактериальных препаратов — антисептиков [4, 7, 8, 9].
Изложенное выше, а так же тот факт, что одним из способов профилактики и лечения гнойных ран является применение антисептиков, побудило нас к изучению возможности использования нового сибирского антисептика «Анавидин» в лечении инфицированных кожных ран.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Работа выполнена на базе научного отдела экспериментальной хирургии с виварием Научного центра реконструктивной и восстановительной хирургии Сибирского отделения РАМН. Животных содержали в условиях вивария при свободном доступе к воде и пище соответственно нормативам ГОСТа «Содержание экспериментальных животных в питомниках НИИ» (вет. удостоверение 238 № 0015220 от 25 марта 2009 г, служба ветеринарии Иркутской области). В эксперимент включали крыс-самцов породы Вистар в возрасте не менее 6 месяцев, весом 200 — 250 г. Опыты на животных выполнялись в соответствии с правилами гуманного обращения с животными, которые регламентированы «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных», утвержденных Приказом МЗ СССР № 742 от 13.11.84 г. «Об утверждении правил проведения работ с использованием экспериментальных животных» и № 48 от 23.01.85 г. «О контроле за проведением работ с использованием экспериментальных животных».
У всех экспериментальных крыс моделировали инфицированную кожную рану. Животные были разделены на три группы. Первую составили крысы, с ежедневным промыванием инфицированной раны физиологическим раствором (КГ-1).
Вторую — животные, которым раны обрабатывали 0,02% раствором хлоргексидина биглюконата (КГ-2). Третью — животные, которым гнойные раны промывали 0,02% раствором анавидина (ОГ). Забор материала для морфологического исследования производился на 1-е, 3-и, 7-е, 11-е и 19-е сутки после внесения микст-инфекта Е. соН + Ps. аегид. (0,5:0,5) 109 микробных тел. С целью оценки динамики заживления раневого процесса, в эти же сроки определяли площадь ран планиметрическим методом.
РЕЗУЛЬТАТЫ
На 1-е сутки исследования площадь ран экспериментальных животных всех групп была одинаковой (рис. 1).
На 3-и сутки при сравнении в группах КГ-1 и КГ-2 данный показатель статистически не отличался от 1-х суток и в группах. Однако отметим существенное снижение показателя в основной группе по сравнению с 1-ми сутками и с КГ-1, КГ-2 (рш = 0,001; ри = 0,002; ри = 0,002).
На 7-е сутки имелось существенное снижение показателя у животных КГ-2 и ОГ по сравнению с 3-ми сутками (рш < 0,05) и КГ-1 (ри < 0,05). В ОГ показатель был минимальным и был существенно ниже КГ-1 и КГ-2 (ри= 0,0001; ри = 0,0001).
На 9-е сутки эксперимента показатель площади ран был минимальным в ОГ по сравнению с КГ-2
(ри = 0,0002) и КГ-1 (ри = 0,0001), а так же по сравнению с 7-ми сутками (рш = 0,0001). Однако отметим, что показатель в группе КГ-1 существенно снижался по сравнению с 7-ми сутками (ри = 0,002).
На 11 — 15-е сутки эксперимента выявленная закономерность по изменению площади ран сохранялась. Показатель площади ран был минимальным в ОГ по сравнению с КГ-2, КГ-1 (ри < 0,05) и показателем в предыдущие сутки (рш < 0,05). Максимальные показатели площади ран выявлялись в группе КГ-1.
К 19-м суткам исследования отмечали заживление ран в основной группе, площадь ран была существенно ниже, чем в КГ-1 (ри = 0,0001).
Далее нами были оценены гистологические изменения в тканях при моделировании кожной гнойной раны, обработанной новым сибирским антисептиком «Анавидин».
Клиническая картина гнойной кожной раны во всех группах животных до начала лечения была одинаковой. Раны характеризовались подрытыми, рубцово-фибринозными краями, вялыми и тусклыми грануляциями, с очагами некротических изменений, при морфологической оценке препаратов животных всех групп в области раны на 1-е сутки (4-е сутки с момента нанесения кожного дефекта) выявлено: поверхностно колонии микробов, некротизированная ткань, лейкоциты, детрит, фибрин (рис. 2). В подлежащих тканях выявляли:
Рис. 2. Крыса. 1-е сутки после инфицирования раны (4-е сутки от момента нанесения дефекта): А - ОГ; Б - КГ-1; В - КГ-2; 1 - некротизированная ткань, лейкоциты, детрит, фибрин; 2 - отек, плазматическое пропитывание, диффузно распределенные лейкоциты в подлежащей соединительной ткани. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 80.
отек, плазматическое пропитывание, диффузно распределенные лейкоциты в подлежащей соединительной ткани (рис. 2).
Таким образом, при морфологическом исследовании тканей раны на 1-е сутки различий в группах выявлено не было.
На поверхности ран животных всех групп выявляли колонии микробов, некротизированную ткань, лейкоциты, детрит, фибрин, в подлежащих тканях отек, плазматическое пропитывание, диффузно распределенные лейкоциты в подлежащей соединительной ткани.
Применение нового сибирского антисептика «Анавидин» для лечения гнойных кожных ран у крыс способствовало уменьшению процессов воспаления, в частности отека окружающих тканей, укорачивало период очищения раны. Орошение травмированной раневой поверхности «Анавиди-ном» приводило к быстрой некротизации дистрофически измененных тканей, их резорбции и отторжению в виде гнойно-некротического детрита.
При морфологическом исследовании на 3-и сутки у животных основной группы с обработкой новым сибирским антисептиком «Анавидин», выявляли на поверхности раны фибрин и лейкоциты, в глубине раны грануляционная ткань с новообразованными капиллярами, фибробласта-ми и лейкоцитами. Таким образом, под раневым слоем идет процесс созревания грануляционной ткани. В ней фибробласты, они еще беспорядочно ориентированы в пространстве. В контрольной группе 1 с обработкой ран физиологическим раствором грануляционная ткань находится на разных стадиях резорбции клетками воспалительного инфильтрата, с формирующимися микроабсцессами. В тканях, прилежащих к ране, наблюдается нарушение кровообращения, сопровождающееся расширением и полнокровием сосудов.
На 11-е сутки исследования у животных основной группы с обработкой новым сибирским антисептиком «Анавидин», выявляли на поверхности
раны узкую полоску некротизированной ткани, под ней созревающая соединительная ткань в которую с боков врастает эпителий, в глубине раны сформированная соединительная ткань из зрелых фибробластов.
В контрольной группе 1 с обработкой ран физиологическим раствором грануляционная ткань находится на разных стадиях образования и созревания. Фибробласты грануляционной ткани отличаются от зрелых фибробластов соединительной ткани более крупными ядрами, обилием цитоплазмы. В молодой грануляционной ткани присутствует большое количество лейкоцитов.
В контрольной группе 2 с обработкой ран 0,02% водным раствором хлоргексидина биглюконата на поверхности раны полоска некротизированной ткани, грануляционная ткань, участки созревшей соединительной ткани с очагами инкапсулированной некротизированной ткани.
К девятнадцатым суткам эксперимента раневой дефект животных основной группы покрыт созревающим эпителием (рис. 3).
У животных контрольных групп некротизированная ткань на поверхности раны, созревающая соединительная ткань, участки сформированной соединительной ткани.
Таким образом, в результате проведенных исследований установлено, что применение нового сибирского антисептика «Анавидин» способствует ускорению заживления гнойных кожных ран, о чем свидетельствует существенное уменьшение площади раны уже на 3-и сутки, уменьшение площади ран в 2 раза на 9-е сутки и 0 значение показателя к 19-м суткам. Преобладание в грануляционной ткани фибробластов у животных основной группы обеспечивает более быстрый темп созревания соединительной ткани, чем в контроле, на 3 — 4 дня, с закрытием раневого дефекта созревающим эпителием к 19-м суткам, тогда как, у животных контрольных групп раны находились под струпом до 19-х суток исследования.
Рис. 3. Крыса. 19-е сутки после инфицирования раны: А - ОГ; Б - КГ-1; В - КГ-2; 1 - некротизированная ткань (струп) на поверхности раны; 2 - созревающая соединительная ткань; 3 - сформированная соединительная ткань; 4 - эпителий, закрытие раны. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 80.
ЛИТЕРАТУРА
1. Беро Р., Кастилио Ж.Д., Генеольт Л. Проблема антибиотикорезистентности // Ветеринар — 2009. - № 2. - С. 28-34.
2. Басарева О.И. и др. Изучение биологической активности комплексных соединений металлов с некоторыми антимикробными средствами // Человек и его здоровье : Курск. науч.-практ. вестн. — 2007. - № 4. - С. 5-11.
3. Госпитальная инфекция в многопрофильной хирургической клинике / под ред. Е.Г. Григорьева, А.С. Когана. - Новосибирск : Наука, 2003. - 207 с.
4. Даценко Б.М. Теория и практика местного лечения гнойных ран. - Киев : Здоровье, 1995. - 379 с.
5. Киричек Л.Т. Антибиотики в современной химиотерапии // Международный медицинский журнал. - 2003. - Т. 9, № 1. - С. 104-108.
6. Колесов А.П., Столбовой А.В., Кочеро-вец В.И. Анаэробные инфекции в хирургии. - Л. : Медицина, 1989. - 160 с.
7. Практическое руководство по антиинфек-ционной химиотерапии / под ред. Л.С. Страчун-ского, Ю.Б. Белоусова. - М. : Боргес, 2002. -383 с.
8. Фадеева Т.В. Микробиологические аспекты инфицирования, реинфицирования при висцеральных гнойных процессах (в условиях многопрофильной клинике) : автореф. дис. ... докт. биол. наук. - Иркутск, 2007. - 47 с.
9. Черкесов И.В. Обоснование применения 0,1% раствора мирамистина и 0,5% мази «Мирами-стин» для лечения больных с одонтогенными флегмонами челюстно-лицевой области // Нижегор. мед. ж. - 2008. - № 2. - С. 303-304.
Сведения об авторах
Григорьев Георгий Евгеньевич - младший научный сотрудник научного отдела экспериментальной хирургии с виварием Научного центра реконструктивной и восстановительной хирургии СО РАМН (664079, г. Иркутск, мкр. Юбилейный, д. 100, а/я 1).
Гольдберг Олег Аронович - кандидат медицинских наук, заведующий лабораторией патоморфологии Научного центра реконструктивной и восстановительной хирургии СО РАМН (664079, г. Иркутск, мкр. Юбилейный, д. 100, а/я 1).
Лепехова Светлана Александровна - кандидат биологических наук, заведующая научным отделом экспериментальной хирургии с виварием Научного центра реконструктивной и восстановительной хирургии СО РАМН (664079, г. Иркутск, мкр. Юбилейный, д. 100, а/я 23; тел.: 8 (964) 356-01-85; e-mail: lepekhova_sa@mail.ru).
Ильина Ольга Петровна - доктор ветеринарных наук, заведующая кафедрой анатомии, патофизиологии и физиологии животных факультета биотехнологии и ветеринарной медицины, декан факультета биотехнологии и ветеринарной медицины Иркутской государственной сельскохозяйственной академии.
Коваль Елена Владимировна - научный сотрудник группы бактериологии Научного центра реконструктивной и восстановительной хирургии СО РАМН (664079, г. Иркутск, мкр. Юбилейный, д. 100, а/я 1).
Суворикова Виктория Анатольевна - младший научный сотрудник научного отдела экспериментальной хирургии с виварием Научного центра реконструктивной и восстановительной хирургии СО РАМН (664079, г. Иркутск, мкр. Юбилейный, д. 100, а/я 1).
