CC BY
33
рианты Б. с1иЬУп, Б. ег^егШсйв и Б. 1урИ1тиг1ит, которые чаще других изолируют от крупного рогатого скота, свиней, птицы. Циркуляция происходит среди животных различных видов, они длительное время способны персистировать в среде обитания, тем самым сохраняя очаг инфекции.
Литература
1. Джупина С.И., Ведерников В.Л. Изучение эпизоотической ситуации инфекционных болезней сельскохозяйственных животных в области (крае, АССР). - М., 1981. - 28 с.
2. ХлыстуновА.Г. Методы эпизоотологического исследования. - М.: Лань, 2004. - 168 с.
---------♦-----------
УДК 619:615.779.9 Г.Е. Григорьев, О.А. Гольдберг,
С.А. Лепехова, О.П. Ильина, Е.В. Коваль
МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ЗАЖИВЛЕНИЯ ИНФИЦИРОВАННЫХ ПОВРЕЖДЕНИЙ КОЖИ ПОД ВЛИЯНИЕМ АНТИСЕПТИКА «АНАВИДИН»
В статье приведены результаты морфологических исследований, в которых установлено, что применение нового сибирского антисептика «Анавидин» способствует ускорению заживления инфицированных повреждений кожи у животных.
Ключевые слова: антисептик «Анаведин», морфология, рана.
G.E. Grigoriev, O.A. Goldberg,
S.A. Lepekhova, O.P. Ilyina, E.V. Koval
MORPHOLOGICAL ESTIMATION OF THE INFECTED SKIN LESION HEALING UNDER THE INFLUENCE OF THE “ANAVIDIN” ANTISEPTIC
The morphological research results in which it is determined that new Siberian antiseptic "Anavidin" application helps fasten the animal infected skin lesion healing are given in the article.
Key words: antiseptic "Anavedin", morphology, injury.
Клинический опыт, накопленный в области теории и практики лечения инфицированных повреждений кожи, свидетельствует о том, что даже применение самых эффективных средств не снижает риск возникновения различных осложнений [1].
Лечение длительно не заживающих гнойно-некротических повреждений кожи относится к числу важных разделов ветеринарии, так как эта патология наносит значительный экономический ущерб крупным специализированным и фермерским хозяйствам. Расходы на лечение, потери молока, мяса, преждевременная выбраковка животных влияют на формирование стада и его воспроизводство. При развитии инфекции происходит нарушение регенерации и эпителизации повреждений кожи, что приводит к патологическому течению заживления [2].
Широкое применение антибиотиков, эффективность которых вначале была отличной, привело к возникновению ряда сложных проблем [3]. Мутагенное действие антибиотиков на патогенную микрофлору обусловило изменение как этиологической структуры гнойной инфекции, так и биологических свойств микробной клетки с появлением антибиотикорезистентных штаммов [4,5].
Эта проблема указывает на необходимость пересмотра мнения о монопольном положении антибиотиков и переходе на более обоснованную стратегию и тактику лечения гнойно-септических инфекций, включая интерес к забытой группе антибактериальных препаратов - антисептиков [6,7,8,9].
Изложенное выше, а также тот факт, что одним из способов профилактики и лечения гнойных ран является применение антисептиков, побудило нас к морфологической оценке заживления инфицированных повреждений кожи под влиянием нового сибирского антисептика «Анавидин».
Материалы и методы исследований. Работа выполнена на базе научного отдела экспериментальной хирургии с виварием Научного центра реконструктивной и восстановительной хирургии НЦ РВХ СО РАМН. Животных содержали в условиях вивария при свободном доступе к воде и пище соответственно нормативам ГОСТ «Содержание экспериментальных животных в питомниках НИИ» (вет. удостоверение 238 № 0015220 от 25 марта 2009 г., служба ветеринарии Иркутской области). В эксперимент включали крыс-самцов линии Вистар в возрасте не менее 6 месяцев весом 200-250 г. Опыты на животных выполнялись в соответствии с правилами гуманного обращения с животными, которые регламентированы «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных», утвержденных Приказом МЗ СССР №742 от 13.11.84 г. «Об утверждении правил проведения работ с использованием экспериментальных животных» и №48 от 23.01.85 г. «О контроле за проведением работ с использованием экспериментальных животных».
У всех экспериментальных крыс моделировали инфицированное повреждение кожи. Животные были разделены на три группы. Первую составили крысы с ежедневным промыванием инфицированного повреждения кожи физиологическим раствором (КГ-1), вторую - животные, которым раны обрабатывали 0,02 % раствором хлоргексидина биглюконата (КГ-2), третью - животные, которым раны промывали 0,02 % раствором анавидина (ОГ). Забор материала для морфологического исследования производился на 1-, 3-, 7-, 11- и 19-е сутки после внесения микст-инфекта E. coli+ Ps. aeruginosa (0,5:0,5) 109 микробных тел. С целью оценки динамики заживления в эти же сроки определяли площадь ран планиметрическим методом.
Результаты исследований и их обсуждений. На 1-е сутки исследований площадь повреждений кожи экспериментальных животных всех групп была одинаковой (рис.1).
На 3-и сутки при сравнении в группах КГ-1 и КГ-2 данный показатель статистически не отличался от 1-х суток и в группах. Однако отметим существенное снижение показателя в основной группе по сравнению с 1-ми сутками и с КГ-1, КГ-2 (pw=0,001; pu=0,002; pu=0,002).
На 7-е сутки имелось существенное снижение показателя у животных КГ-2 и ОГ по сравнению с 3-ми сутками (pw<0,05) и КГ-1 (ри<0,05). В ОГ показатель был минимальным и существенно ниже КГ-1 и КГ-2
(ри=0,0001; ри=0,0001).
На 9-е сутки эксперимента показатель площади повреждений кожи. был минимальным в ОГ по сравнению с КГ-2 (pu=0,0002) и КГ-1 (pu=0,0001), а также по сравнению с 7-ми сутками (pw=0,0001). Однако отметим, что показатель в группе КГ-1 существенно снижался по сравнению с 7-ми сутками (pu=0,002).
□г
го
Cl
_й
ГО
ЕТ
о
1=
500
450
400
350
300
250
200
150
100
50
0
\
Л
<?>
\
\
Сутки исследования
■ |_ о
□ КГ-1
В OJ - Г К
Рис.1. Результаты исследования площади инфицированных повреждений у животных экспериментальных групп в динамике 1-19 суток
На 11—15-е сутки эксперимента выявленная закономерность по изменению площади повреждений кожи сохранялась. Показатель площади повреждений кожи был минимальным в ОГ по сравнению с КГ-2, КГ-1 (ри<0,05) и показателем в предыдущие сутки (р«у<0,05). Максимальные показатели площади повреждений кожи выявлялись в группе КГ-1.
К девятнадцатым суткам исследований отмечали заживление инфицированных повреждений кожи в основной группе, площадь была существенно ниже, чем в КГ-1 (ри=0,0001).
Далее нами были оценены гистологические изменения в поврежденных тканях при обработке их новым сибирским антисептиком «Анавидин».
Клиническая картина инфицированных повреждений кожи во всех группах животных до начала лечения была одинаковой. Раны характеризовались подрытыми, рубцово-фибринозными краями, вялыми и тусклыми грануляциями, с очагами некротических изменений. При морфологической оценке препаратов животных всех групп в области раны на 1-е сутки (4-е сутки с момента нанесения кожного дефекта) выявлены поверхностно колонии микробов, некротизированная ткань, лейкоциты, детрит, фибрин (рис. 2). В подлежащих тканях выявляли отек, плазматическое пропитывание, диффузно распределенные лейкоциты в подлежащей соединительной ткани (рис. 2).
Таким образом, при морфологическом исследовании тканей раны на 1-е сутки различий в группах выявлено не было.
Рис. 2. Крыса. 1-е сутки после инфицирования кожного дефекта (4-е сутки от момента нанесения дефекта): А - ОГ; Б - КГ-1; В - КГ-2; 1 - некротизированная ткань, лейкоциты, детрит, фибрин;
2 - отек, плазматическое пропитывание, диффузно распределенные лейкоциты в подлежащей соединительной ткани. Окраска гематоксилином и эозином. А,Б,В ув. х 80
На поверхности ран животных всех групп выявляли колонии микробов, некротизированную ткань, лейкоциты, детрит, фибрин, в подлежащих тканях отек, плазматическое пропитывание, диффузно распределенные лейкоциты в подлежащей соединительной ткани.
Применение нового сибирского антисептика «Анавидин» для лечения инфицированных повреждений кожи у крыс способствовало уменьшению процессов воспаления, в частности, отека окружающих тканей, укорачивало период очищения раны. Орошение травмированной раневой поверхности «Анавидином» при-
водило к быстрой некротизации дистрофически измененных тканей, их резорбции и отторжению в виде гнойно-некротического детрита.
При морфологическом исследовании на 3-и сутки у животных основной группы с обработкой новым сибирским антисептиком «Анавидин» выявляли на поверхности раны фибрин и лейкоциты, в глубине раны грануляционная ткань с новообразованными капиллярами, фибробластами и лейкоцитами. Таким образом, под раневым слоем идет процесс созревания грануляционной ткани. В ней фибробласты, они еще беспорядочно ориентированы в пространстве. В контрольной группе 1 с обработкой ран физиологическим раствором грануляционная ткань находится на разных стадиях резорбции клетками воспалительного инфильтрата, с формирующимися микроабсцессами. В тканях, прилежащих к ране, наблюдается нарушение кровообращения, сопровождающееся расширением и полнокровием сосудов.
На 11-е сутки исследований у животных основной группы с обработкой новым сибирским антисептиком «Анавидин» выявляли на поверхности раны узкую полоску некротизированной ткани, под ней созревающая соединительная ткань, в которую с боков врастает эпителий, в глубине раны сформированная соединительная ткань из зрелых фибробластов.
В контрольной группе 1 с обработкой ран физиологическим раствором грануляционная ткань находится на разных стадиях образования и созревания. Фибробласты грануляционной ткани отличаются от зрелых фибробластов соединительной ткани более крупными ядрами, обилием цитоплазмы. В молодой грануляционной ткани присутствует большое количество лейкоцитов.
В контрольной группе 2 с обработкой ран 0,02 % водным раствором хлоргексидина биглюконата на поверхности раны полоска некротизированной ткани, грануляционная ткань, участки созревшей соединительной ткани с очагами инкапсулированной некротизированной ткани.
Рис. 3. Крыса. 19-е сутки после инфицирования дефекта А - ОГ; Б - КГ-1; В - КГ-2;
1 - некротизированная ткань (струп) на поверхности раны; 2 - созревающая соединительная ткань; 3 - сформированная соединительная ткань; 4 - эпителий, закрытие раны. Окраска гематоксилином
и эозином. А,Б,В,Г ув. х ВО
К девятнадцатым суткам эксперимента раневой дефект животных основной группы покрыт созревающим эпителием (рис. 3).
У животных контрольных групп некротизированная ткань на поверхности раны, созревающая соединительная ткань, участки сформированной соединительной ткани.
Таким образом, в результате проведенных исследований установлено, что применение нового сибирского антисептика «Анавидин» способствует ускорению заживления гнойных кожных повреждений, о чем свидетельствует существенное уменьшение площади раны уже на 3-и сутки, уменьшение площади ран в 2 раза на 9-е сутки и нулевое значение показателя к 19-м суткам. Преобладание в грануляционной ткани фиб-робластов у животных основной группы обеспечивает более быстрый темп созревания соединительной ткани, чем в контроле, на 3-4 дня, с закрытием раневого дефекта созревающим эпителием - к 19-м суткам, тогда как у животных контрольных групп раны находились под струпом до 19-х суток исследований.
Литература
1. Даценко Б.М. Теория и практика местного лечения гнойных ран. - Киев: Здоровье, 1995. - 379 с.
2. Колесов А.П., Столбовой А.В., Кочеровец В.И. Анаэробные инфекции в хирургии. - Л.: Медицина, 1989. - 160 с.
3. КиричекЛ.Т. Антибиотики в современной химиотерапии // Междунар. мед. журн. - 2003 - Т. 9. - № 1. -С. 104-108.
4. Беро Р., Кастилио Ж.Д., Генеольт Л. Проблема антибиотикорезистентности // Ветеринар. - 2009. -№ 2. - С. 28-34.
5. Изучение биологической активности комплексных соединений металлов с некоторыми антимикробными средствами / О.И. Басарева, А.В. Заикин, Д.А. Хапчаева [и др.] // Человек и его здоровье. - 2007. - № 4. - С. 5-11.
6. Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии / под ред. Л.С. Страчунского, Ю.Б. Белоусова. - М.: Боргес, 2002. - 383 с.
7. Григорьев Е.Г. Госпитальная инфекция в многопрофильной хирургической клинике / под ред. Е.Г. Григорьева, А.С. Когана. - Иркутск, 2005. - Гл. 5. - С. 125.
8. Фадеева Т.В. Микробиологические аспекты инфицирования, реинфицирования при висцеральных гнойных процессах в условиях многопрофильной клиники: автореф. дис. ... д-ра биол. наук. - Иркутск, 2007. - 47 с.
9. Черкесов И.В. Обоснование применения 0,1 % раствора мирамистина и 0,5 % мази "Мирамистин" для лечения больных с одонтогенными флегмонами челюстно-лицевой области // Нижегор. мед. журн. -2008. - № 2. - С. 303-304.
