CC BY
27
ЛИТЕРАТУРА
1. Автандилов, Г.Г. Основы количественной патологической анатомии / Г.Г. Автандилов. - М.: Медицина, 2002. - 240 с.
2. Базаров, М.К. Статистическая обработка результатов наблюдений средствами Microsoft Excel: пособие для аспирантов / М.К. Базаров. - Оренбург: Изд. центр ОГАУ, 2008. - 44 с.
3. Жеребцов, Н.А. Цитология, гистология и эмбриология / Н.А. Жеребцов. -Ульяновск, 2000. - 144 с.
4. Клиническое руководство по лабораторным тестам: под ред. Н. Тица. - М.: Юни-мед ПРЕСС, 2004. - 960 с.
5. Колодина, Л.Н. Нейрогормональная регуляция лактации / Л.Н. Колодина, В.В. Корхов //Акушерство и гинекология. - 1985. - № 5. - С. 5-8.
6. Медведева, М.А. Клиническая ветеринарная лабораторная диагностика: Справочник для ветеринарных врачей / М.А. Медведева. - М.: ООО «Аквариум-Принт», 2008. - 416 с.
7. Племяшов, К.В. Молочная железа - морфология, физиология и биохимические аспекты лактогенеза / К.В. Племяшов, В.И. Соколов, Ю.В. Конопатов. - СПб: ГАВМ, 2007. - 30 с.
8. Anipko, V.V. Definition of selenium concentrations change in a blood after application of selenium preparations by fluorometric technique / V.V. Anipko, V.S. Maryakhina, L.L. Abramova // Topic problem of biophotonics. III international symposium, 16-22 July 2011. - St-Peterburg; Nizhniy Novgorod, 2011. - P. 77-78.
9. Hennighausen, L. Developing a mammary gland is a stat affair / L. Hennighausen, G.W. Robinson, K.U. Wagner // J. Mammary Gland Biol. - Neoplasia. - 1997. - №> 2. - Р. 365-372.
10. Rousel, A.M. Trace Elements in Man and Animals / A.M. Rousel, R.A. Anderson, A.E. Favier // Plenum Publishers. - New York, 2000. - 358 p.
УДК 636.4:087.7:612.015.3
ВЛИЯНИЕ ДОБАВКИ ГУМИНОВОЙ ПРИРОДЫ НА ОБМЕН ВЕЩЕСТВ В ОРГАНИЗМЕ СВИНОМАТОК
О.М. БУЧКО Институт биологии животных НААН г. Львов, Украина, 79034
(Поступила в редакцию 22.01.2012)
Введение. Учитывая высокую чувствительность к стрессам продуктивных свиней, их низкую резистентность, склонность к нарушениям обмена веществ, неблагоприятные условия содержания, становится понятной необходимость изучения особенностей метаболизма свиней в различные возрастные и технологические периоды для лучшего обеспечения физиологических потребностей их организма в условиях промышленного выращивания [5].
Как известно, во второй половине супоросности (с 85-х до 114-х суток) у свиноматок повышается обмен веществ, потребность в энергии возрастает в 8 раз [7]. Эти изменения в ее организме объясняют тем, что свиноматка много энергии и питательных веществ использует на формирование плода. Для этого периода характерны большие затраты, связанные с использованием субстратных и энергетических веществ. Для предупреждения истощения организма свиноматок от
опороса к опоросу, снижения живой массы, улучшения осеменения и предупреждения бесплодия, повышения массы тела поросят при рождении, их резистентности, молочности маток, смягчения действия стрессовых ситуаций, предупреждения маститов у лактирующих свиноматок используют в их кормлении БАВ [2, 4].
В последние годы особо актуальным становится поиск, разработка и внедрение экологически чистых, малотоксичных и высокоэффективных препаратов, которые можно употреблять животным с кормом. Такими препаратами являются продукты жизнедеятельности растительных и животных организмов - производных торфогуматов и апи-культур, которые используются в животноводстве и птицеводстве. Эти препараты нетоксичны, в организме животных быстро метаболизиру-ют, имеют функциональные группы и способны к хелатообразованию [3, 6]. Полифенольные препараты, полученные из торфа, известны своими иммуномодулирующими, адаптогенными и антиоксидантными особенностями, нормализацией обмена веществ у животных и птицы, проявлением синергизма с витаминами и минеральными элементами [8].
Цель работы - изучить влияние биологически активной кормовой добавки «Гумилид» на некоторые показатели белкового, энергетического, минерального обмена супоросных и лактирующих свиноматок и на их продуктивность.
Материал и методика исследований. Исследования проводили на свиноферме частного фермерского хозяйства Львовской области на свиноматках крупной белой породы. По принципу аналогов было сформировано две группы животных - контрольная и опытная, по три супоросных свиноматки в каждой. Каждая свиноматка содержалась отдельно. Все свиноматки поросились в течение одних суток. Кормление животных проводили стандартным рационом вволю, со свободным доступом к корму и воде. Отъем поросят, родившихся от исследуемых свиноматок, проводили в 40-суточном возрасте.
За 2 недели до и 9 суток после опороса (21 сутки) свиноматкам опытной группы к рациону добавляли 1%-ный раствор биологически активной кормовой добавки «Гумилид» из расчета 0,5 мл/кг живой массы. Свиноматки контрольной группы содержались на стандартном рационе.
Биологически активная кормовая добавка «Гумилид» (ТУ У 15.700493675-004:2009) разработана в научно-исследовательской лаборатории им. проф. Л.А. Христевой ДГАУ из гуминовых веществ. Это вещество гуминовой природы получено в результате кислотно -щелочного гидролиза торфа и представляет собой вязкую жидкость темно-коричневого цвета со специфическим запахом.
Материалом для исследований служила кровь свиноматок обеих групп, которая была отобранная из окулярной вены за 14 суток до опороса, за 10 и 25 суток после опороса. В плазме крови определяли содержание общего белка, глюкозы, неорганического фосфора (Р), обще-
197
го кальция (Са), активность аланинаминотрансферазы (АлАТ), аспар-татаминотрансферазы (АсАТ) и щелочной фосфатазы (ЩФ) [9]. У животных всех групп (как поросят, так и свиноматок) учитывали состояние здоровья, количество родившихся поросят, их сохранность, среднесуточные привесы и среднюю массу гнезда 10-, 25-суточных поросят и поросят после отъема от свиноматок. Полученные цифровые данные обрабатывали статистически.
Результаты исследований и их обсуждение. Как известно из литературных источников, во время супоросности и лактации в организме свиноматки изменяется тип и интенсивность обмена веществ. Во вторую половину супоросности увеличивается потребность плодов в питательных веществах, особенно в белке. Поэтому для понимания биохимических механизмов, происходящих в организме свиноматок в этот период онтогенеза, и уровня обеспечения плодов и новорожденных поросят строительным материалом, большое стратегическое значение имеет определение показателей белкового обмена в их крови [1, 7].
В ходе исследований было установлено позитивное влияние «Гу-милида» на белковый обмен свиноматок. Так, у животных опытной группы на 10-е и 25-е сутки после опороса концентрация общего белка была выше на 15 и 11 % (Р<0,01) по отношению к контрольным свиноматкам (табл. 1). На 25-е сутки после опороса содержание белка в крови обеих групп животных уменьшалось относительно периода до опороса на 11 % (Р<0,01), однако у свиноматок опытной группы оно было выше на протяжении всего периода исследований.
Таблица 1. Концентрация общего белка в плазме крови свиноматок, г/л (М±ш, п=3)
Сутки Группы животных
контрольная опытная
14-е до опороса 90,43±1,28 102,35±1,25**
10-е после опороса 88,05±1,36 103,97±1,77**
25-е после опороса 80,62±1,08" 90,45±1,60**"
Примечание: * - достоверность отличий в значениях показателей между контрольной и опытной группами животных (*Р<0,05; ***Р<0,001); • - достоверность отличий в значениях показателей по отношению к свиноматкам до опороса (Т<0,05; ••Р<0,001).
Полученные данные можно объяснить тем, что гуминовые вещества за счет их донорно-акцепторных особенностей могут попадать в клетку в ионно-дисперсном состоянии и, таким образом, влиять на интенсификацию процессов окислительного фосфорилирования. Дополнительная энергия, которая при этом вырабатывается, в первую очередь используется клетками на усиление синтеза белка [3]. Существует также гипотеза о том, что под влиянием гуминовых веществ в печени животных и птицы активируется система внутриклеточных гидролаз, что в свою очередь вызывает повышение синтеза белков крови и в целом стимулирует расщепление и усвоение корма [8].
198
Известно, что в поддержании нормального уровня общего белка в организме принимают участие две аминотрансферазы (АсАТ и АлАТ), которые при усилении синтеза белка запускают процессы переамини-рования. Активность АлАТ повышалась у свиноматок опытной группы по отношению к контролю на 10-е (в 1,2 раза) (Р<0,05) и 25-е (в 1,5 раза) (Р<0,01) сутки после опороса, что можно объяснить стимуляцией глюконеогенеза под влиянием гуминовых веществ. Активность АсАТ увеличивалась у свиноматок опытной группы на 25-е сутки после опороса в 2,3 раза относительно контроля (Р<0,001) и была выше, чем в период до опороса, на 12 % (Р<0,01) (табл. 2), что свидетельствует о стимуляции катаболического термогенеза в их организме под влиянием гуматов [1].
Таблица 2. Активность аминотрансфераз в плазме крови свиноматок, Од/л (М±т, п=3)
Сутки Группы животных АсАТ АлАТ
14-е до опороса Контрольная 5,68±0,14 2,08±0,08
Опытная 7,29±0,13*** 4,02±0,45**
10-е после опороса Контрольная 5,39±0,48 2,75±0,13
Опытная 5,81±0,93 3,32±0,11*
25-е после опороса Контрольная 3,54±0,52" 1,82±0,16
Опытная 8,23±0,11 ***"• 2,68±0,12**^
Примечание: * - достоверность отличий в значениях показателей между контрольной и опытной группами животных (*Р<0,05; ***Р<0,001); • - достоверность отличий в значениях показателей по отношению к свиноматкам до опороса (Т<0,05; ••Р<0,001).
Повышение активности обеих аминотрансфераз в пределах физиологической нормы в крови свиноматок опытной группы под влиянием «Гумилида» может свидетельствовать о стимуляции глюконеогенеза (АлАТ) и перераспределении энергетических ресурсов (АсАТ) организма. Активация описанных процессов необходима для прохождения физиолого-биохимических реакций, обеспечивающих нормальное протекание адаптационных механизмов в организме поросных и лак-тирующих свиноматок, а через него плодов и раннего постнатального онтогенеза поросят [6, 7].
Об интенсификации энергетических процессов и активации процессов аэробного окисления в тканях животных опытной группы под влиянием «Гумилида» свидетельствует установленное нами увеличение концентрации ключевого метаболита энергетического обмена -глюкозы. Так, в плазме крови свиноматок опытной группы на 10-е и 25-е сутки после опороса установлено повышение ее содержания относительно контрольных животных на 10 % (Р<0,01) (табл. 3).
Увеличение уровня глюкозы под влиянием гуматов свидетельствует о том, что организм имеет дополнительную энергию на снижение интоксикации, возникающей при опоросе, а также на поддержание высокого уровня жизнедеятельности свиноматок во время лактации
Таблица 3. Концентрация глюкозы в плазме крови свиноматок, г/л (М±ш, п=3)
Сутки Группы животных
контрольная опытная
14-е до опороса 3,89±0,15 4,77±0,14**
10-е после опороса 3,88±0,13 4,29±0,14*
25-е после опороса 3,72±0,11 4,12±0,12*^^
Примечание: * - достоверность отличий в значениях показателей между контрольной и опытной группами животных (*Р<0,05; ***Р<0,001); • - достоверность отличий в значениях показателей по отношению к свиноматкам до опороса (Т<0,05; "Р<0,001).
Высокая концентрация глюкозы в крови свиноматок опытной группы свидетельствует также о более интенсивном прохождении процессов глюконеогенеза, что было подтверждено повышенной активностью АлАТ.
Об активации энергетических процессов и повышении уровня дополнительного фонда фосфатов в организме под влиянием «Гумили-да» свидетельствует установленное нами возрастание активности ЩФ у свиноматок опытной группы. Этот фермент катализирует отщепление фосфатной группы из органических моноэфиров ортофосфорной кислоты, а также отвечает за усвоение животными фосфора из рационов. У свиноматок опытной группы активность фермента увеличивалась на 10-е сутки после опороса в 2,19 раза (Р<0,01) и на 25-е сутки после опороса в 3,8 раза (Р<0,001) относительно контрольных животных (табл. 4). Из литературы известно, что во второй половине супо-росности и во время опороса активное увеличение и уничтожение плаценты вызывает повышение активности ЩФ за счет плацентарной изо-формы [7].
Таблица 4. Активность щелочной фосфатазы в плазме крови свиноматок, Од/л (М±т, п=3)
Сутки Группы животных
контрольная опытная
14-е до опороса 3,08±1,21 7,06±0,23*
10-е после опороса 3,38±0,85 7,42±0,32**
25-е после опороса 3,59±0,14 13,93±0,92***"
Примечание: * - достоверность отличий в значениях показателей между контрольной и опытной группами животных (*Р<0,05; ***Р<0,001); • - достоверность отличий в значениях показателей по отношению к свиноматкам до опороса (Т<0,05; "Р<0,001).
Повышение активности ЩФ в крови свиноматок опытной группы на 25-е сутки после опороса в 1,97 раза (Р<0,001) относительно периода до опороса (табл. 4) может свидетельствовать об усилении процессов фосфорилирования под влиянием гуминовых веществ [2, 3].
Важным показателем минерального обмена в организме является концентрация общего кальция и неорганического фосфора. В резуль-
200
тате исследований нами было установлено, что прибавление к корму «Гумилида» вызывало снижение концентрации общего кальция в крови свиноматок на 10-е (в 1,4 раза) (Р<0,01) и 25-е (в 1,3 раза) (Р<0,01) сутки после опороса по отношению к животным контрольной группы (табл. 5). Скармливание гуминовых веществ вызывало повышение количества неорганического фосфора в плазме крови свиноматок на 10-е сутки после опороса на 13 % относительно контроля (Р<0,05).
Таблица 5. Содержание общего кальция и неорганического фосфора в плазме крови свиноматок, ммоль/л (М±т, п=3)
Сутки Группы животных Кальций Фосфор
14-е до опороса Контрольная 4,27±0,21 2,28±0,05
Опытная 3,4±0,19* 2,93±0,15**
10-е после опороса Контрольная 4,19±0,16 1,79±0,05
Опытная 3,02±0,11** 2,05±0,16*
25-е после опороса Контрольная 4,33±0,15 1,63±0,14
Опытная 3,26±0,12** 1,86±0,16
Примечание: * - достоверность отличий в значениях показателей между контрольной и опытной группами животных (*Р<0,05; **Р<0,001).
Установленный в ходе наших исследований достаточно высокий уровень кальция у свиноматок контрольной группы может свидетельствовать о том, что в данном хозяйстве необходимо пересмотреть балансирование рациона по кальцию, а также по витамину Д и фитазе, которые улучшают всасывание Са и Р в организме. Снижение концентрации Са и повышение уровня Р в крови свиноматок опытной группы до уровня физиологических норм (Са - 2,5-3,25 мМоль/л и Р - 1,782,58 мМоль/л) (табл. 5) подтверждает гипотезу о том, что гуминовые вещества вызывают нормализацию минерального обмена в крови свиноматок и регулируют количество данных элементов в организме [5, 10].
В ходе исследований нами учитывались показатели продуктивности свиноматок обеих групп. От свиноматок контрольной группы количество поросят при рождении в среднем становило 8,33 гол., а от опытных - 9,5 гол., что на 12 % больше (Р<0,001). Живая масса 10-суточных поросят, рожденных от свиноматок контрольной группы, составляла в среднем 0,93 кг (средняя масса гнезда - 7,44 кг), а от опытных - 1,07 кг (средняя масса гнезда - 10,7 кг), что на 13 % больше (Р<0,05). Живая масса 25-суточных поросят контрольной группы составляла в среднем 6,58 кг (средняя масса гнезда - 52,11 кг), а опытных - 7,45 кг (средняя масса гнезда - 66,05 кг), что на 12 % больше (Р<0,001). Живая масса поросят контрольной группы в 54-суточном возрасте (конец опыта) составляла 12,33 кг (сохранность - 86,25 %), а опытных животных - в среднем 14,67 кг (сохранность - 98,75 %), что на 16 % больше (табл. 6).
Таблица 6. Влияние «Гумилида» в рационе свиноматок на показатели продуктивности (М±ш, п=6-8)
Показатели Группы животных
контрольная опытная
Количество поросят при рождении, гол. 8,33±0,17 9,50±0,13***
Масса гнезда в 10 дн., кг 7,44±0,99 10,70±0,99*
Масса поросят в 10 дн., кг 0,93±0,03 1,07±0,06*
Масса гнезда в 25 дн., кг 52,11±0,97 66,05±1,84***
Масса поросят в 25 дн., кг 6,58±0,06 7,45±0,02***
Сохранность поросят в 54-суточном возрасте, % 86,25 98,75
Примечание: * - достоверность отличий в значениях показателей между контрольной и опытной группами животных (*Р<0,05; ***Р<0,001).
Все описанные позитивные изменения в организме свиноматок повлияли на их молочность, развитие плодов и качество потомства. Полученные результаты свидетельствуют о более высокой плодовитости, большей массе тела новорожденных поросят, более низком уровне заболеваемости и гибели животных в возрасте от 1 до 54 суток в группе свиноматок, которым к корму прибавляли гуминовую добавку, в сравнении с животными, которые содержались на стандартном рационе.
Таким образом, в результате наших исследований было установлено, что при скармливании в конце супоросности и начале лактации свиноматкам биологически активной кормовой добавки «Гумилид» в их организме активируется белковый и энергетический обмен, усиливаются анаболические процессы, улучшается перевариваемость питательных веществ рациона и нормализуется минеральный обмен. Более высокие показатели исследованных нами веществ крови, в пределах физиологических норм, у свиноматок опытной группы относительно контроля на 25-е сутки после опороса (период, когда «Гумилид» уже не скармливался) могут свидетельствовать о пролонгированности его позитивного действия на организм и лучшую послеопоросную восстановительную возможность их организма.
Заключение. В результате исследований было установлено:
1) в плазме крови свиноматок, которым к основному рациону прибавляли биологически активную кормовую добавку «Гумилид», установлены более высокий уровень белка, глюкозы, неорганического фосфора и более низкий - общего кальция, большая активность АлАТ, АсАТ и ЩФ по отношению к контрольной группе животных;
2) живая масса 54-суточных поросят, рожденных от свиноматок, которым скармливали гуминовую добавку, была на 16 %, а сохранность на 12 % выше, чем у животных, содержащихся на стандартном рационе.
ЛИТЕРАТУРА
1. Аитова, М.Д. Характеристика азотистого метаболизма и биосинтеза белка у крупного рогатого скота и свиней / М.Д. Аитова, К.Т. Еримбетов, А.П. Баранов // Сель-
202
скохозяйственные животные. Физиологические и биохимические параметры организма. -Боровск, 2002. - 354 с.
2. Белоусов, М.В. Исследование химических и токсических свойств гуминовых кислот низинного древесно-травяного торфа Томской области / М.В. Белоусов, Р.Р. Ахмеджанов, М.В. Гостищева // Бюллетень сибирской медицины. - 2009. - № 4 (2). -С. 27-33.
3. Грибан, В.Г. Щодо ефективносп використання гумшових препаратов у скотарс-твi та мехашзму 1'х ди на органiзм / В.Г. Грибан, В.Г. £фiмов, В.М. Ракитянський [та ш.] // Наук.-техн. бюл. 1БТ i ДНДК1 ветпрепаратгв та корм. доб. - Львiв, 2010. - Вип. 11. -№ 2-3.- С. 402-405.
4. Долгополов, В.Н. Перспективы применения Гумивала в продуктивном животноводстве / В.Н. Долгополов // Итоги и перспективы применения гуминовых препаратов в продуктивном животноводстве, коневодстве и птицеводстве (Москва, 21 декабря 2006 г.). - М., 2006. - С. 40-43.
5. £фiм ов, В.Г. Стан мшерального обмшу у свиней на промисловому комплекс / В.Г. £фiмов, К.Л. Костюшкевич, £.О. Лосева // Наук. вюник вет. мед. - Бша Церква, 2010. - Вип. 5 (78). - С. 68-71.
6. Комиссаров, И.Д. Биологическая активность гуминовых препаратов / И.Д. Комиссаров // Досягнення та перспективи застосування гумшових речовин у сшьському господарствг - Дншропетровськ, 2008. - С. 75-78.
7. Понд, У.Дж. Биология свинки / Дж.У. Понд, К.А. Хаупт. - М.: Колос, 1983. - 334 с.
8. Степченко, Л.М. Регуляторш мехашзми ди бюлогтчно активних речовин гу-мшово!' природи на органiзм продуктивно!' птищ / Л.М. Степченко // Фiзiологiчний журнал. - 2010. - Т. 56. - № 2. - С. 306.
9. Фiзiолого-бiохiмiчнi методи дослщжень у бюлогп, твариннищта та ветеринарнiй медицинi / В.В. Влiзло, Р.С. Федорук, 1.А. Макар [та ш.]. - Львiв, 2004. - 400 с.
10. Czech, A. Biochemical and haematological blood parameters of sows during pregnancy and lactation fed the diet with different source and activity of phytase / A. Czech // Animal Feed Science and Technology. - 2004. - Vol. 116. - P. 211-223.
УДК 636. 92:616.15
ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРОЛИКОВ В УСЛОВИЯХ СТРЕССА И ПРИ ЕГО ИММУНОКОРРЕКЦИИ
Т.Я. ВИШНЕВСКАЯ, Л.Л. АБРАМОВА ФГБУ ВПО «Оренбургский государственный аграрный университет» г. Оренбург, Российская Федерация, 460014
(Поступила в редакцию 23.01.2012)
Введение. Организм кроликов, как животных с хорошо развитой нервной системой, в течение жизни подвергается влиянию многочисленных факторов, вызывающих стресс. Возникновение стресса у животных - результат изменяющихся внешних условий среды: резкая смена распорядка дня, изменение рациона, длительное отсутствие воды, отлов и пересадка в новые клетки, скученное содержание, перевозка и другие действия персонала. Температура воздуха является одним из важнейших микроклиматических факторов, ее изменения могут повлечь за собой серьезные нарушения в адаптационных механизмах животных. Так, нарушение микроклимата в помещении, где содержатся животные, приводит к накоплению в воздухе пыли и вредных газов,
203
