CC BY
61
Химия растительного сырья. 1998. №1. С. 33-43
УДК 66.015.2
УЛУЧШЕНИЕ ЭКОЛОГИЧНОСТИ И ПОВЫШЕНИЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ БИОХИМИЧЕСКИХ ПРОИЗВОДСТВ
© Н.А. Войнов, Р.А. Степень, С.М. Воронин, Д.В. Буйко
Сибирский государственный технологический университет, г. Красноярск (Россия) E-mail: [email protected]
Представлен новый подход к проведению культивирования аэробных микроорганизмов в турбулентной пленке жидкости с целью улучшения экологичности и эффективности процесса ферментации. Разработанные пленочные биореакторы и экологически чистая технология позволяют значительно интенсифицировать тепло массоперенос, снизить расход потребляемого газа и объем отработанной жидкости, увеличить производительность и концентрацию редуцирующих веществ в ферментативной среде и тем самым повысить рентабельность биохимических производств.
ность. Биосинтез протекает в мягких условиях при 30-45оС, рН 3-7 и давлении ~ 0,1 Мпа. Процесс менее трудоемок по сравнению с получением сельскохозяйственной продукции и органическим синтезом белков. Эти преимущества позволяют получать для животноводства и птицеводства микробиологическим путем важнейшие кормовые добавки с высокой кормовой ценностью и в большом количестве. По данным ряда специалистов мировой дефицит белка оценивается в 30— 35 млн. т. Основным направлением снижения и ликвидации этого дефицита является производство биомассы посредством микробного синтеза. Однако строительство новых микробиологических производств вызывает резкий протест общественности из-за серьезного загрязнения окружающей среды некоторыми компонентами жидких и газовых выбросов этих производств, обуславливающих острые респираторные и аллергические заболевания у людей. Отработанная культуральная жидкость относится к высококонцентрированным стокам, которые требуют глубокой очистки и утилизации.
Так, при получении 1 т кормовых дрожжей расхо-
Введение
Важным стимулом развития производства является снижение его отходов, прежде всего тех, которые оказывают вредное воздействие на человека. В полной мере это относится к биохимическим предприятиям, отходы которых существенно загрязняют близлежащие территории [1]. Вследствие большого потребления технологической воды и воздуха промышленная биотехнология является источником большого количества воздушных и водных выбросов. Их экологическая опасность определяется, в первую очередь, присутствием в выбросах живых клеток микроорганизмов и субстрата, попадание которых в окружающую среду вызывает нежелательные и неконтролируемые изменения структуры экологических ниш в почве и воде.
Область применения микроорганизмов чрезвычайно велика. Микроорганизмы обладают высокой скоростью накопления биомассы, которая в 500—5000 раз выше, чем у растений или животных. Микробные клетки способны накапливать большое количество белка. Благодаря высокой специфичности микроорганизмов в микробиологическом производстве отсутствует многостадий-
дуется до 300 м3 производственной воды, и отра-
ботанная жидкость содержит фураны, фенолы, терпены, соединения фтора, мышьяка, соли тяжелых металлов и другие вредные вещества.
В связи с этим возникает необходимость в создании принципиально новых экологически чистых и эффективных производств белково-витаминных концентратов и других продуктов микробиологического синтеза. Концепция создания экологически чистой технологии процесса ферментации изложена ранее [2]. Устранение загрязняющих среду выбросов наиболее эффективно осуществляется при организации замкнутых циклов по газу и жидкости. Однако это возможно только при существенном сокращении объема технологических потоков за счет переработки концентрированных (неразбавленных) гидролизатов после их глубоко-
го облагораживания и организации развитого контакта газа с жидкостью в биореакторе.
Анализ известных способов взаимодействия газа с жидкостью показал, что на современном этапе наиболее эффективны процессы переноса импульса, тепла и массы, протекающие при контакте газа с культуральной жидкостью, стекающей в виде пленки по твердой пленкообразующей поверхности. Сравнение показателей газожидкостных биореакторов, представленное в таблице, также указывает на перспективность промышленного использования пленочных аппаратов. В пленочном биореакторе ([3], рис.1) культуральная жидкость из емкости культивирования 4 осевым насосом 1 через циркуляционную трубу 5 поступает в верхнюю часть контактных труб 6.
1
Рис. 1. Схема плёночного биореактора: 1 — осевой насос; 2 — камера для газа; 3 — теплообменная камера; 4 — емкость для культивирования; 5 — циркуляционная труба; трубчатая насадка; 7 — винтовая шероховатость (спираль); Т — теплоноситель
Затем она, интенсивно перемешиваясь, стекает в виде вращающейся турбулентной пленки вниз по внутренней поверхности труб, обтекая витки винтовой спирали 7. При этом культуральная жидкость насыщается газом и из нее отводятся продукты метаболизма, а также через стенки труб
6 осуществляется отвод или подвод тепла. Исследования [4 — 6] показали, что скорость переноса кислорода в турбулентную пленку составляет 10 кг/(м3ч) и более, поверхностный коэффициент массоотдачи (2 — 5) 10-2 м/с, что в десятки раз выше значений, достигаемых в известных про-
2
3
4
мышленных биореакторах. Вследствие высокой скорости подвода кислорода, отвода тепла и продуктов метаболизма пленочные биореакторы способны перерабатывать высококонцентрированные питательные среды (содержание редуцирующих веществ в пределах 30 — 100 кг/м3) при достиже-
нии концентрации микроорганизмов в культуральной жидкости до 100 кг/м3. Это позволяет значительно уменьшить габариты биореактора, на порядок снизить расход воды и газа, обеспечив тем самым их качественную очистку.
Таблица
Показатели биореакторов
Газлифтный Газлифгаый с мгха-ничзскимиустрой-ствами С самовсасывающей мешалкой Струйный Шахтный Пленочный
Скорость переноса кислорода, кг/(м3ч)
1,1 - 4,0 4 - 7 7 0,4 - 0,7 1 - 3 10
Объемный коэффициент массоотдачи, ч-
200 - 450 450 - 1000 1000 100 - 150 250 - 400 1500 - 4000
Поверхностный коэффициент массоотдачи, м/с
(1,3 - 5)-10-4 (5 - 6)-10-4 6-10-4 (0,4-0,7)-10-4 (1,5 - 4)-10-4 (2 - 5)-10-2
Концентрация редуцирующих веществ, кг/м3
8 - 30 30 30 8 30 100
Удельный расход воздуха, м3/кг
30 - 50 34 29 - 43 10 19 0 - 10
Концентрация биомассы (АСВ), кг/м3
4 - 10,5 10 10 4 10 50 - 100
Коэффициент заполнения
0,33 0,7 0,4 0,33 0,33 0,8
Удельный расход энергии, кВт-ч/кг
0,8 - 1,75 2 - 3 3 - 4 0,4 - 0,5 0,6 - 0,7 0,6 - 1,4
В пленочных биореакторах отвод тепла осуществляется непосредственно в зоне биохимической реакции, что не требует дополнительных конструктивных решений и не влияет на процессы переноса тепло- и массообмена. Вследствие интенсивного отвода продуктов метаболизма из пленки исключается их накапливание в культуральной жидкости, что свойственно для аппаратов других типов. Небольшие габариты пленочных биореакторов при высокой их производительности позволяют проводить ферментацию при избыточном давлении и в стерильных условиях. Это увеличивает степень насыщения жидкости кислородом и
дает возможность изменять концентрацию газа в культуральной жидкости в процессе ферментации. Кроме того важно, что при проектировании пленочных биореакторов легко решаются проблемы масштабного перехода и полученные в лабораторных условиях результаты могут быть без поправок перенесены на промышленные образцы.
Создание малогабаритных пленочных биореакторов возможно только при больших плотностях орошения, которым соответствует турбулентное течение пленки жидкости с высокими значениями критерия Рейнольдса. Поиск [4] способов увеличения удерживающей способности
пленочного аппарата и стабилизации ее работы привел к использованию на пленкообразующей поверхности крупномасштабной искусственной винтовой шероховатости. В этой связи в работе проведены комплексные исследования гидродинамики, тепло- и массообмена в пленке жидкости, стекающей по поверхности насадок с крупномасштабной винтовой шероховатостью, разработаны и исследованы экологически чистые схемы выращивания микроорганизмов.
Экспериментальная часть
Основными параметрами пленочного течения, которые необходимы при проведении расчетов биореактора и технологических параметров процесса ферментации, являются средняя толщина пленки жидкости, коэффициенты тепло- и массо-отдачи. Подача жидкости на поверхность трубы осуществлялась через кольцевой зазор шириной 10-25 мм. Изучался процесс в трубах диаметром 27, 50 и 80 мм и длиной 0,7-6 м. Измерение толщины пленки жидкости на поверхности трубчатых насадок пленочного биореактора проводили [4] методами отсечки питания и фотографирования при числе Рейнольдса 2000-100000. В качестве исследуемой жидкости использовалась вода с температурой 15-55оС, ферментативная среда на основе гидролизата и дрожжевая суспензия при 36-40оС. Вязкость дрожжевой суспензии изменялась от 0,6- 10-6 до 2,54- 10-6 м2/с. При исследовании использовались дрожжи Candida scottii с концентрацией абсолютно сухих микроорганизмов x = 4 — 120 кг/м3.
Массоотдача в пленке жидкости изучалась [7] на примере абсорбции кислорода воздуха водой, водой с добавкой поверхностно-активных веществ (ПАВ), ферментативной средой на основе гидролизата и культуральной жидкостью. Концентрация растворенного в жидкости кислорода измерялась с помощью датчика с тефлоновой мембраной, работающего на принципе гальванического элемента с серебряным катодом и цинковым анодом.
Исследования [6] теплоотдачи в биореакторе проводились в пленке воды, воды с добавкой ПАВ и культуральной жидкости. При расчетах коэффициент теплоотдачи относился к поверхности гладкой трубы. При нахождении количества переданного тепла учитывались его потери в окружающую среду с поверхности пленки. Расчет осуществлялся для участка с линейным распределением температуры по длине трубы по специально разработанной методике.
Процесс феpментации в туpбулентной пленке осуществлен [5, 7, 9] на примере выращивания дрожжей Candida scottii в феpментативной среде на основе гидpолизата древесины. Выделяющееся в процессе биохимических реакций тепло отводилось водой.
Температура культуpальной жидкости при ферментации поддерживалась на оптимальном уровне 36-380 С, кислотность среды — в диапазоне pH = 4,2...4,6. Измерение концентрации кислорода в емкости для культивиpования и в пленке культуральной жидкости проводилось датчиком мембранного типа. Конденсация прессованных (75% влажности) дрожжей определялась вакуум-филь^ова^ем на воронке Бюхнеpа. Содержание редуцирующих веществ находили эбулиостатиче-ским методом.
Обсуждение результатов
Как показали исследования [4], при стекании жидкости по гладкой поверхности насадки толщина пленки не превышает 5 мм (рис. 2, точки 1 и 2), а при значениях числа Рейнольдса Re > 50000 наблюдается нарушение равномерного стекания жидкости по периметру трубы, возникает струйное течение. Кроме того, при наличии больших значений коэффициента кинематической вязкости дрожжевой суспензии происходит частичный срыв жидкости с поверхности пленки.
Рис. 2. Зависимость средней толщины пленки дрожжевой суспензии, вязкостью V = 1 х 10-6 м2/с от числа Рейнольдса при стекании по внутренней стенке трубы диаметром d = 51 мм, длиной ! = 1,6 м. Экспериментальные точки (1—2) — гладкая поверхность трубы, (3—6) — поверхность с винтовой спиралью из проволоки при высоте выступа h = 1,85 мм; 3,0; 5,5; 6. Линии 1—5 — расчет по уравнениям работы [4] для винтовой спирали. Линия 6 данные для кольцевой шероховатости при h = 3 мм
Увеличение удерживающей способности насадки достигнуто путем организации течения по шероховатой поверхности. Это повышает трение жидкости о поверхность и приводит к росту толщины пленки, а отрыв пограничного слоя за выступом шероховатости обеспечивает интенсивное перемешивание пленки. Установка винтовой спирали, изготовленной из проволоки или ленты, на внутренней поверхности трубы является наиболее выгодным вариантом выполнения шероховатости, так как в этом случае центробежная сила, вызванная вращательным движением жидкости, стабилизирует пленочное течение. Толщина слоя турбулентной жидкости, по сравнению с ее стеканием по гладкой поверхности трубы, увеличивается до пяти раз и может достигать 20 мм и более (рис. 2, точки 3—6). Важнейшим преимуществом течения пленки жидкости по внутренней поверхности тру-
бы с регулярной винтовой шероховатостью является ее более равномерное распределение по периметру трубы при отклонении от вертикального положения.
При выполнении отношения расстояния между витками спирали s к толщине витка (диаметр проволоки или толщина ленты, из которых выполнена шероховатость) ^ равного 6—8, достигается максимальная толщина пленки жидкости. Величина средней толщины пленки дрожжевой суспензии при концентрации абсолютно сухих дрожжей в ней х < 80 кг/м3 удовлетворительно рассчитывается по уравнениям, полученным ранее [4].
Результаты экспериментальных исследований массоотдачи в турбулентной пленке воды, стекающей по гладкой и шероховатой поверхностям представлены на рисунке 3. Исследования массо-обмена показали [6], что установка винтовой ше-
роховатости на внутренней поверхности трубы является наиболее выгодным вариантом по сравнению с другими известными [4] типами шерохо-
ватости. При этом коэффициент массоотдачи (рис.
3, точки в, г, д) возрастает в десять и более раз по сравнению с гладкой поверхностью.
Рис. 3. Зависимость коэффициента массоотдачи от числа Рейнольдса при стекании пленки воды по гладкой (линии 1 и 2) и шероховатой (линии 3—5) вертикальной стенке трубы при t = tg = 200C: а — внутренняя гладкая поверхность (диаметр трубы d = 27 мм, длина трубы l = 2 м); 5 — наружная гладкая поверхность (d = 30 мм, l = 2 м); в, г, д — внутренняя поверхность с винтовой спиралью (d = 51 мм, l = 1,6 м, s/h = 10, в — h=1,85 мм, г — 3,0, д — 5,0). Сплошные линии расчет по формулам работы [6]
Наличие редуцирующих веществ в ферментативной среде приводит к уменьшению поверхностного натяжения и, как было установлено экспериментально, снижает интенсивность переноса массы в пленке. Аналогичные результаты были получены при исследовании массоотдачи в пленке воды с добавкой поверхностно активных веществ (ПАВ). При стекании пленки жидкости с ПАВ по гладкой поверхности трубы, числе Рейнольдса Re < 10000 и поверхностном натяжении жидкости ст = 25-10-3 Н/м происходит уменьшение коэффициента массоотдачи до пяти раз по сравнению с чистой жидкостью. Однако с увеличением числа Рейнольдса влияние ПАВ на массообмен уменьшается. В случае стекания пленки жидкости по поверхности с крупномасштабной шероховатостью снижение коэффициента массоотдачи составляет
не более 30% и практически не зависит от нагрузки по жидкости.
Проведено исследование [7] влияния неизо-термичности процесса на абсорбцию. Такое явление наблюдается в промышленном пленочном биореакторе, когда температура пленки t отличается от температуры подаваемого газа ^. При t > tg происходит испарение воды с поверхности пленки и снижение коэффициента массоотдачи вдвое. С увеличением числа Рейнольдса и разности температуры между жидкостью и газом влияние неизо-термичности возрастает. Установлено также, что при конденсации влаги из воздуха на поверхность пленки коэффициент массоотдачи увеличивается до 35%.
На основании уравнений сопряженного неэк-вимолярного тепло- и массообмена проведена [8] обработка опытных данных при абсорбции кислорода из воздуха водой. Подтверждено, что при
неизотермической абсорбции сопротивление мас-сопереносу сосредоточено в фазах. Испарение воды в воздух определяется диффузионным сопротивлением газовой фазы, в то время как процесс абсорбции кислорода — сопротивлением жидкой фазы, которые существенно влияют друг на друга. Расчетные зависимости, необходимые для определения коэффициента массоотдачи в ферментативной среде, приведены в работе [7].
Наличие микроорганизмов в культуральной жидкости, дыхательная активность которых сопоставима со скоростью абсорбции кислорода,
приводит к снижению величины растворенного кислорода в пленке культуральной жидкости. Согласно данным (рис. 4) с увеличением концентрации микроорганизмов в культуральной жидкости в ней снижается количество кислорода. При концентрации микроорганизмов в жидкости 100 кг/м3 накопления кислорода в пленке, при ее стекании по поверхности трубы с винтовой спиралью, практически не происходит. Расчетные зависимости для определения концентрации газа в жидкости с учетом дыхательной активности микроорганизмов представлены ранее [7].
0
м
Рис. 4. Изменение концентрации кислорода в пленке дрожжевой суспензии по длине трубчатой насадки при d = 51 мм, h = 3 мм, s/h = 10, Re = 50000: Линии — расчет по уравнениям работы [7] при температуре жидкости 38oC; равновесная концентрация кислорода в жидкости 6-10-3 кг/м3; дыхательная активность микроорганизмов 4,17• 10-5 кг/(кг-с). Точки: 1 — концентрация микроорганизмов x = 0,001 кг/м3; 2 — 50; 3 — 100
Результаты исследования теплоотдачи в пленке, стекающей по поверхности с винтовой шероховатостью, представлены на рисунке 5. Наличие искусственной шероховатости на поверхности трубы позволяет увеличить коэффициент теплоотдачи в 1,58 раза. Максимальная интенсивность теплоотдачи достигнута при геометрической высоте выступа винтовой спирали И = 0,13 мм. При
дальнейшем увеличении И коэффициент теплоотдачи уменьшается, что обусловлено образованием застойных зон на дне впадины около выступов, наличием зазора между витками винтовой шероховатости и поверхностью трубы, а также изменением структуры потока жидкости вследствие увеличения газосодержания в пленке жидкости.
а х10"3 Вт/(м 2К)
10
1
1000 10000 яе
Рис. 5. Зависимость коэффициента массоотдачи а от числа Рейнольдса пленки Яе = 4 Г/у при d = 51 мм; 1 = 1,9 м; Рг = v/a = 4,2—5. Экспериментальные точки: 1 — гладкая поверхность трубы; 2, 3 и 4 — поверхность с винтовой спиралью, соответственно при И = 2 мм, б/И = 10; И = 3 мм, б/И = 6; И = 0,13 мм, б/И = 10. Линии расчет по уравнениям работы [7]
При выращивании дрожжей С. бсойп непрерывным способом [9] на гидролизате древесины, с концентрацией редуцирующих веществ в ферментативной среде 40 кг/м3 концентрация абсолютно сухой биомассы дрожжей составила 64 кг/м3, экономический коэффициент в зависимости от скорости протока (0,18 — 0,27) ч-1 равен 43 — 58%. Полученные данные показали принципиальную возможность интенсификации процесса культивирования дрожжей. При проведении исследований оказалось возможным изменять в широком интервале концентрацию растворенного кислорода в емкости для культивирования за счет изменения кратности циркуляции жидкости через трубчатые насадки, чего невозможно достигнуть в условиях барботажа и эрлифта. Реализация свободного сте-кания пленки культуральной жидкости в режиме слабого взаимодействия с потоком воздуха исключила интенсивное пенообразование и обеспечила равномерное распределение биомассы в объеме культуральной жидкости. Небольшие добавки пеногасителя в процессе выращивания дрожжей стабилизировали слой крупноячеистой пены высотой 30...70 мм в верхней части емкости для культивирования. Относительно высокая кратность циркуляции жидкости (50—100) и от-
вод тепла непосредственно из реакционной зоны позволили легко поддерживать оптимальную температуру ферментации.
В пленочном биореакторе с повышением содержания редуцирующих веществ в питательном сусле (8 = 1 — 5%) (рис. 6), в отличие от известных способов выращивания, происходит незначительное увеличение удельных энергозатрат У на подвод кислорода. Для каждого диаметра трубчатой насадки пленочного биореактора существует оптимальный расход культуральной жидкости, при котором достигается наибольший эффект насыщения газа жидкостью. С увеличением диаметра контактной трубы количество на ступени биореактора уменьшается. Минимальные затраты электроэнергии на подвод газа в культуральную жидкость при установке трубчатой насадки с винтовой шероховатостью достигаются на длине трубы 1,5 - 2 м, высоте выступа шероховатости И = 4—5 мм и параметре шероховатости б/И = 6—8.
Полученные результаты могут служить теоретической основой для модернизации существующей технологии биохимических производств, обеспечивающей значительное улучшение их экологического состояния и технико-экономических показателей.
—Э е~ -И—X— 4 \ № /
: ♦ --А -- 4 *1 |Е= гЧ к
Y,
кВт и
2
1
0
0
I, м
Рис. 6. Зависимость удельных затрат энергии на подвод кислорода в биореактор от длины насадки при d = 80 мм; И = 4 мм; б/И = 6; Яе = 170000. Линии: 1 — 8 = 5%, 2 — 3%, 3 — 1%
Традиционная схема получения продуктов микробиологического синтеза включает биореактор, систему подготовки воздуха и установку очистки газа. Вследствие большого объема воздуха, перекачиваемого через биореакторы, установки подготовки воздуха и очистки отработанного газа имеют значительные габариты, что определяет высокую стоимость оборудования и большие эксплуатационные расходы. В этой связи возникает необходимость создания технологии с использованием отработанного газа.
Основной принцип создания экологически чистой технологии состоит в организации замкнутого цикла по газу, реализуемого за счет удаления выделяющихся в реакторе двуокиси углерода и других продуктов метаболизма, возврата очищенного газа в реактор после добавления в него необходимого количества кислорода. Внедрение предлагаемого способа позволяет достичь полного использования кислорода, повысить стерильность процесса, исключить линию подготовки воздуха и его вместе с микроорганизмами в атмосферу. Поглощение двуокиси углерода из газа может проводиться известными методами химической или физической сорбции (рис.7). Реализация предлагаемого способа ведения микробиологического синтеза предполагает использование высокоэффек-
тивных пленочных биореакторов, способных перерабатывать высококонцентрированные питательные среды при низких расходах потребляемого газа и энергии.
Кроме того, разработана [10] технологическая схема с замкнутым циклом по газу при получении кислорода из атмосферного воздуха путем его контакта с нейтральной жидкостью. В этом случае атмосферный воздух поступает в абсорбер, контактирует с нейтральной жидкостью, обладающей большой поглотительной способностью по кислороду. Насыщенная кислородом культуральная жидкость поступает в дегазатор, где осуществляется выделение кислорода, который затем поступает в биореактор. Газ с продуктами метаболизма из биореактора поступает на очистку в абсорбер, контактирует с абсорбентом, который затем отводится на регенерацию, а очищенный газ вновь поступает в биореактор.
Несомненный интерес представляет разработанный способ совмещенного культивирования микроорганизмов (рис. 8), потребляющих в процессе своей жизнедеятельности кислород и выделяющих двуокись углерода, с микроорганизмами, использующими двуокись углерода и выделяющими кислород [11]. Такое совмещение апробировано при получении биомассы дрожжей Candida
бсоНіі и хлореллы, которая может быть использо- робиологического синтеза при существенном сована в качестве кормовой добавки. Совмещенный кращении необходимого для этой цели оборудо-
способ позволяет организовать экологически чис- вания и резком снижении капитальных и эксплуа-
тое и безотходное производство продуктов мик- тационных затрат.
Свежий МЭА I МЭА после регенерации '
,___ СО2
Инертный газ + СО 2
£01
А
С3
Конденсат
Рис. 7. Схема выращивания микроорганизмов с замкнутым циклом по газу. 1 — биореактор; 2 — абсорбер; 3 — десорбер; Т — теплообменник; С — сепаратор; Е — сборная емкость; К — компрессор; Ф — фильтр
Рис. 8. Схема совмещенного выращивания микроорганизмов: 1 — реактор для дрожжей; 2 — реактор для хлореллы; Т — теплообменник; С — сепаратор; Е — сборная емкость; К — компрессор
В заключении следует отметить, что теоретические и экспериментальные разработки по ферментации кормовых дрожжей в турбулентной пленке культуральной жидкости прошли проверку на Красноярском биохимическом заводе.
Выводы
1. На основании всестороннего изучения гидродинамики, тепло- и массообмена, биохимического процесса в пленке культуральной жидкости предложено и реализовано новое решение процесса ферментации, позволяющее существенно повысить экологичность предприятий, значительно
интенсифицировать массоперенос, заметно снизить расход потребляемого газа и увеличить концентрацию веществ в ферментативной среде, что дает возможность улучшить рентабельность производства.
2. Анализ показателей работы биореакторов свидетельствует, что пленочные аппараты являются наиболее совершенным типом оборудования, который может удовлетворять требованиям, предъявляемым к современным биореакторам.
3. Разработаны схемы экологически чистой технологии ферментации микроорганизмов, практически исключающие выбросы вредных примесей в атмосферу.
4. Проведенные исследования и результаты промышленной апробации свидетельствуют о перспективности применения разработанных подходов для усовершенствования процесса аэробной ферментации.
Литература
1. Степень Р.А., Репях С.М., Бука Э.С. Основы экологии. Красноярск, 1997. 196 с.
2. Николаев Н.А., Войнов Н.А., Марков В. А., Гаврилов А.В. Экологически чистая технология промышленного производства микробного синтеза // Биотехнология. 1993. № 3. С. 23-24.
3. Патент № 2012593 (РФ), МКИ3 С12 М1/4. Аппарат для выращивания микрорганизмов / Вой-нов Н.А., Николаев Н.А., Коновалов Н.М. // БИ. 1994. № 9.
4. Николаев Н.А., Войнов Н.А. Закономерности гидродинамики и массопереноса в турбу-
лентных пленках жидкости // Изв. ВУЗов. Химия и хим. технол. 1991. №12. С. 3-25.
5. Nikolaev N.A., Voynov N.A., Markov V.A. Liquid film bioreactors for cell mass production // Acta Biotechnoloqica. 1991. №3. Р. 205-210.
6. Коновалов Н.М., Войнов Н.А., Марков В. А., Николаев Н.А. Массоотдача при свободном стекании пленки жидкости по наружным и внутренним поверхностям труб // Теор. основы хим. технол. 1993. №3. С. 309-314.
7. Войнов Н.А. Процесс ферментации кормового белка в пленочных биореакторах; способы интенсификации и методы расчета: Дис. ... док. техн. наук. Красноярск, 1995. 370 с.
8. Осипова Л.Э., Войнов Н.А., Николаев Н.А. Моделирование процесса неизотермической абсорбции // Массообменные процессы и аппараты химической технологии: Межвуз. темат. сб. научн. тр. Казань, 1994. С. 108-114.
9. Получение кормовых дрожжей в пленочном биореакторе / Войнов Н.А., Николаев Н.А., Марков В.А., Гаврилов А.В. // Биотехнология. 1993. №6. С. 27-28.
10. А.с. 1655980 (СССР), МКИ3 С12 N1/16. Способ получения биомассы микроорганизмов / Николаев Н.А., Войнов Н.А., Марков В.А. // БИ. 1991. № 22.
11. А.с. 1717628 (СССР), МКИ3 С12 N1/16. Способ получения биомассы дрожжей / Войнов Н.А., Марков В. А., Николаев Н.А. // БИ. 1992. №9.
Поступило в редакцию 27.02.98
