Научная статья на тему 'Разработка жидкофазного метода синтеза трипторелина на основе полупродуктов производства бусерелина'

Разработка жидкофазного метода синтеза трипторелина на основе полупродуктов производства бусерелина Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

CC BY
334
60
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
АГОНИСТЫ ГОНАДОТРОПИНА / БУСЕРЕЛИН / ТРИПТОРЕЛИН / СИНТЕЗ / GONADOTROPIN AGONISTS / BUSERELIN / TRIPTORELIN / SYNTHESIS

Аннотация научной статьи по фундаментальной медицине, автор научной работы — Балаев А. Н., Осипов Василий Николаевич, Охманович К. А., Фёдоров В. Е.

Разработан новый эффективный жидкофазный метод синтеза агониста гонадотропин-рилизинг гормона трипторелина на основе полупродуктов действующего производства бусерелина. Предложенный способ синтеза позволяет организовать совместный процесс производства двух препаратов с использованием в их синтезе одинаковых пептидных блоков.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по фундаментальной медицине , автор научной работы — Балаев А. Н., Осипов Василий Николаевич, Охманович К. А., Фёдоров В. Е.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

DEVELOPMENT OF LIQUID-PHASE METHOD FOR TRIPTORELIN SYNTHESIS BASED ON BUSERELIN PRODUCTION

A new effective liquid-phase method for preparation of triptorelin (agonist of gonadotropin-releasing hormone) was developed. This method based on buserelin production and allows the collaborative process of producing two products using the same peptide blocks.

Текст научной работы на тему «Разработка жидкофазного метода синтеза трипторелина на основе полупродуктов производства бусерелина»



ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ РАЗРАБОТКА ЖИДКОФАЗНОГО МЕТОДА... 55

УДК 615.357.012:577.112.6.08 А.Н. Балаев1, В.Н. Осипов2, К.А. Охманович1, В.Е. Фёдоров1 РАЗРАБОТКА ЖИДКОФАЗНОГО МЕТОДА СИНТЕЗА ТРИПТОРЕЛИНА НА ОСНОВЕ ПОЛУПРОДУКТОВ ПРОИЗВОДСТВА БУСЕРЕЛИНА :ЗАО «Фарм-Синтез», Москва 2ФБГУ «РОНЦ им. Н.Н Блохина» РАМН, Москва Контактная информация Осипов Василий Николаевич, старший научный сотрудник лаборатории химического синтеза НИИ экспериментальной диагностики и терапии опухолей адрес: 115478, Москва, Каширское шоссе, 24; тел. +7(916)412-61-43 e-mail: ovn@front.ru Статья поступила 30.04.2013, принята к печати 01.11.2013. Резюме Разработан новый эффективный жидкофазный метод синтеза агониста гонадотропин-рилизинг гормона трипторелина на основе полупродуктов действующего производства бусерелина. Предложенный способ синтеза позволяет организовать совместный процесс производства двух препаратов с использованием в их синтезе одинаковых пептидных блоков. Ключевые слова: агонисты гонадотропина, бусерелин, трипторелин, синтез.

A.N. Balaev1, V.N. Osipov2, K.A. Okhmanovich1, V.E. Fedorov1 DEVELOPMENT OF LIQUID-PHASE METHOD FOR TRIPTORELIN SYNTHESIS BASED ON BUSERELIN PRODUCTION 1CJSC «PHARM-SINTEZ», Moscow 2N.N. Blokhin «RCRC» RAMS, Moscow Abstract A new effective liquid-phase method for preparation of triptorelin (agonist of gonadotropin-releasing hormone) was developed. This method based on buserelin production and allows the collaborative process of producing two products using the same peptide blocks. Key words: gonadotropin agonists, buserelin, triptorelin, synthesis. Введение Бусерелин [4] отличается заменой 6 аминокислоты (Gly) на защищённую (D-Ser(tert-Bu), а 10 Гипоталамические рилизинг-факторы - эн- (Gly) на остаток этиламина: догенные пептидные соединения, оказывающие pyroGlu1-His2-Trp3-Ser4-Tyr5-D-Ser6(tert-Bu)-Leu7-Arg8-Pro9-N10HEt [1] влияние на высвобождение гипофизом гонадотроп- ных гормонов. В трипторелине [2] заменена только 6 ами- В настоящее время в медицинских целях ис- нокислота - Gly на D-Trp: пользуют не природные рилизинг-факторы (из гипоталамуса животных), а их синтетические аналоги pyroGlu1-His2-Trp3-Ser4-Tyr5-D-Trp6-Leu7-Arg8-Pro9-Gly10NH2 [2] - пептиды с частично изменённой последовательностью аминокислот в пептидной цепочке природ- Следует отметить, что результатами такой ного гормона. замены аминокислотных остатков в молекуле при- Природный гонадотропин-рилизинг гормон родного гормона являются более выраженное срод-(ГнРГ, гонадорелин, гонадолиберин) представляет ство к рецепторам ГнРГ и более продолжительный собой пептид, состоящий из 10 аминокислот (дека- период полураспада, поэтому аналоги имеют более пептид): сильное и продолжительное действие, чем природный ГнРГ. Так, активность трипторелина превыша-pyroGlu1-His2-Trp3-Ser4-Tyr5-Gly6-Leu7-Arg8-Pro9-Gly10NH2 ет активность эндогенного ГнРГ в 36 раз, бусерелина - в 50 раз [3]. Установлено, что аминокислоты в положениях При этом их период полураспада в организ-2 и3 ответственны за биологическую активность. ме 90-120 мин, что намного превышает значение Аминокислоты в положениях 1; 6 и 10 имеют струк- для природного гормона. Оба препарата использу-турную конфигурацию, необходимую для связывания ют при лечении гормонозависимых опухолей: с рецепторами клеток гипофиза. Замещение амино- предстательной железы, молочной железы; эндо-кислот в положениях 6 и 10 позволило создать синте- метриозе; фиброме матки. тические агонисты ГнРГ [3]. Целью настоящей работы является разработ- В мировой клинической практике известно ка нового жидкофазного способа получения трип-более 12 лекарственных препаратов - синтетических торелина на основе действующего производства аналогов ГнРГ. В России в качестве противоопухо- бусерелина (ЗАО «Фарм-Синтез») с использовани-левых средств зарегистрированы 4 препарата из этой ем одинаковых пептидных блоков для наиболее группы: гозерелин, лейпрорелин, трипторелин и бу- эффективного совместного получения целевых серелин. препаратов.

№ 4/том 12/2013 РОССИЙСКИЙ БИОТЕРАПЕВТИЧЕСКИЙ ЖУРНАЛ

Материалы и методы

Аналитическую ВЭЖХ проводили на хроматографе фирмы Shimadzu (Япония). Колонка: Grom-Sil 12J ODS-4HE, 5|im, 250-4,6 mm.

Условия:

A - вода + фосфатный буфер pH 3,

B - ацетонитрил, градиент 20 % B (0 мин) 60 % B (10 мин) 70 % B (15 мин) 70 %

B (30 мин).

ТСХ проводили на пластинах Merck TLC Silica gel 60 F254, проявление - нингидрином. Спектры ЯМР получены на приборе Bruker AM-360 (рабочая частота 360,13 МГц). В качестве растворителя применяли CDCl3, DMSO-d6. Угол удельного вращения измеряли на автоматическом поляриметре "OTAGO" AP-300. Пептидные блоки 3; 6; 12 и 15 использовали с действующего производства бу-серелина. Boc-D-TrpOPfp получен по стандартной методике [1].

Boc-Pro-GlyOMe (17)

К раствору 86,1 г (0,4 моль) 3 и 40,4 г (0,4 моль) N-метилморфолина в 430 мл диметилформа-мида при -25°C прикапывают 54,6 г (0,4 моль) изо-бутилхлорформиата. Выдерживают реакционную массу 15 мин, добавляют 40,4 г (0,4 моль) N-метилморфолина и затем присыпают 49,8 г (0,4 моль) 16. Перемешивают реакционную массу 2 часа при -25°C, затем 10 ч при +5°C.

Реакционную массу выливают в 2 л насыщенного водного раствора NaCl, нейтрализуют NaHCO3 до pH 7,5-8 и экстрагируют 2 раза по 700 мл этилацетата. Объединённые органические слои последовательно промывают: 100 мл насыщенного раствора NaHCO3, 100 мл 10% водного раствора лимонной кислоты и 100 мл насыщенного раствора NaCl. Отгоняют растворитель в вакууме, остаток растирают с 150 мл петролейного эфира, фильтруют и сушат на воздухе. Получают 93,4 г (81,5%) белого кристаллического 17. Содержание основного вещества 97,2% (ВЭЖХ). ТСХ: хлороформ/метиловый спирт/AcOH 15/1/0,1. Rf(3)=0,35, Rf(17)=0,81. [a]D24=-18,09 (2% р-р, метиловый спирт). Т.пл. 77-78°C.

Спектр ЯМР 1H (CDCl3, 5, м.д.): 1,44 (s, 9H, 3CH3), 1,80-1,92 (m, 2H, y-H[Pro]), 2,41-2,54 (m, 2H, P-H[Pro]), 3,14-3,21 (m, 2H, 5-H[Pro]), 3,61 (s, 3H, COOCH3), 3,80-3,84 (m, 1H, a-H[Pro]), 3,95 (d, 2H, CH^Gly]), 5,63 (bs, 1H, NH).

Boc-Pro-GlyNH2 (18)

Через раствор 74,5 г (0,26 моль) 17 в 50 мл метилового спирта при 5°C барботируют аммиак до полного насыщения. Выдерживают при комнатной температуре 7-8 ч. Отгоняют метанол в вакууме, маслообразный остаток промывают 150 мл петро-лейного эфира, добавляют 200 мл диэтилового эфира и перемешивают до кристаллизации. Фильтруют, промывают 2 раза по 50 мл диэтилового эфира и сушат на воздухе. Получают 63,7 г (90,3%) 18. Содержание основного вещества 98,7% (ВЭЖХ). ТСХ: хлороформ/метиловый спирт/AcOH 15/1/0,1. Rf(17)=0,81, Rf(18)=0,32. [a]D26=-39,45 (2% р-р, метиловый спирт). Т.пл. 135-136°C. Спектр ЯМР :H (CDCl3, 5, м.д.): 1,42 (s, 9H, 3CH3), 1,79-2,02 (m, 2H, Y-H[Pro]), 2,05-2,17 (m, 2H, P-H[Pro]), 3,34-3,52 (m, 2H, 5-H[Pro]), 3,74-4,08 (m, 2H, CH2[Gly]), 4,21 (t, 1H, a-H[Pro]), 5,83 (bs, 1H, NH) , 7,01 (bs, 1H, NH^ , 7,33 (bs, 1H, NH2).

H-Pro-GlyNH2 гидрохлорид (19)

К суспензии 42,3 г (0,156 моль) 18 в 100 мл диоксана при интенсивном перемешивании приливают 130 мл охлаждённого до 5°С 12 %-ного раствора хлороводорода в диоксане. Перемешивают реакционную массу 2 ч при комнатной температуре. Отфильтровывают осадок, промывают 2 раза по 150 мл диэтилового эфира и сушат в вакууме. Получают 31,9 г (98,4%) белого порошка 19.

Содержание основного вещества 97,2% (ВЭЖХ). ТСХ: хлороформ/метиловый спирт/AcOH 1/1/0,1. Rf(18)=0,85, Rf(19)=0,18. [а]„27=-30,32 (5% р-р, метиловый спирт). Спектр ЯМР H (d6-DMSO, 5, м.д.): 1,78-1,92 (m, 2H+1H, y-H[Pro]+ß-H[Pro]), 2,15-2,36 (m, 1H, ß-H[Pro]), 3,09-3,24 (m, 2H, 5-H[Pro]), 3,63-3,77 (m, 2H, CH^Gly]), 4,13-4,31 (m, 1H, a-H[Pro]), 8,87 (bs, 1H, CONH), 8,49+10,34 (2bs, 2H, CONH2). ESMS, m/z (I%): 172,0 [M+H]+ (100), 343,0 [2M+H]+ (62,5).

Boc-Leu-Arg-Pro-GlyNH2 гидрохлорид (20)

К раствору 84,8 г (0,2 моль) 6, 45,7 г (0,22 моль) 19 и 33,7 г (0,22 моль) моногидрата N-гидроксибензотриазола в 800 мл диметилформами-да добавляют при комнатной температуре и перемешивании 50,5 г (0,5 моль) N-метилморфолина. Затем при 0-+5°С прикапывают раствор 49,5 г (0,24 моль) дициклогексилкарбодиимида в 200 мл диме-тилформамида. Перемешивают 1 час при +5°С и затем 12 ч при комнатной температуре. Отфильтровывают осадок, разбавляют реакционную массу 3 л воды, насыщают NaCl и экстрагируют 3 л бутило -вого спирта. Органическую фазу упаривают в вакууме. Остаток затирают с 500 мл диэтилового эфира, фильтруют, промывают на фильтре 2 раза по 400 мл диэтилового эфира и сушат в вакууме. Получают 104,2 г (90,3%) белого аморфного порошка 20. Содержание основного вещества 89,4% (ВЭЖХ). ТСХ: хлороформ/метиловый спирт/AcOH 1/1/0.1. Rf(19)=0,19, Rf(6)=0,54, Rf(20)=0,59. ESMS, m/z (I%): 541,3 [M+H]+ (100), 1081,2 [2M+H]+ (0,3).

H-Leu-Arg-Pro-GlyNH2 дигидрохлорид (21)

К суспензии 100 г (0,173 моль) 20 в 200 мл диоксана при 10-12°C и интенсивном перемешивании приливают 350 мл 17% раствора хлороводорода в диоксане. Нагревают до комнатной температуры, после чего перемешивают ещё 2 ч. Осадок фильтруют, промывают на фильтре 200 мл диэти-лового эфира и сушат в вакууме. Неочищенный 21 растворяют в 200 мл метилового спирта и высаживают 2 л ацетона. Фильтруют выпавший продукт, промывают на фильтре 300 мл ацетона и сушат в вакууме (40-45°C, 2 мм рт. ст.). Получают 67,9 г (76,4%) белого аморфного порошка 21. Содержание основного вещества 90,7% (ВЭЖХ). ТСХ: хлороформ/метиловый спирт/AcOH 1/1/0,1. Rf(20)=0,57, Rf(21)=0,11. ESMS, m/z (I%): 441,2 [M+H]+ (100).

Boc-D-Trp-Leu-Arg-Pro-GlyNH2 гидрохлорид (23)

К раствору 26,7 г (0,052 моль) 21 и 11,5 г (0,114 моль) N-метилморфолина в 210 мл диметил-формамида при 5°C и перемешивании небольшими порциями присыпают 27 г (0,057 моль) 22 и затем 0,5 г имидазола. Перемешивают реакционную массу 1 ч при 5-10°C и затем 5 ч при комнатной температуре . Реакционную массу выливают в 1 л воды, экстрагируют 2 раза по 300 мл этилацетата, водный слой насыщают NaCl и экстрагируют 300 мл бутилового спирта. Бутиловый спирт отгоняют в вакууме. Остаток затирают с 300 мл этилацетата. Фильт-

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ РАЗРАБОТКА ЖИДКОФАЗНОГО МЕТОДА... 1 57

руют продукт, промывают его 150 мл этилацетата и сушат на воздухе. Получают 31,4 г (79,1%) белого аморфного порошка 23. Содержание основного вещества 86,8% (ВЭЖХ). ТСХ: хлороформ/метиловый спирт/ЛсОИ 1/1/0,1. Rf(21)=0,04, Rf(22)=0,90, Rf(23)=0,42. ESMS, m/z (I%): 727,3 [M+H]+ (100).

H-D-Trp-Leu-Arg-Pro-GlyNH2 бис-трифторацетат (24)

К суспензии 16,2 г (0,021 моль) 23 в 80 мл хлористого метилена, 3 мл анизола и 3 мл 2-меркаптоэтанола при 0°С и при перемешивании приливают 80 мл трифторуксусной кислоты. Перемешивают реакционную массу 2 ч при температуре 0-. Выливают реакционную массу в 200 мл диэти-лового эфира, выпавший осадок 24 отфильтровывают, промывают его 2 раза по 100 мл диэтилового эфира и сушат в вакууме. Получают 15,5 г (85,4%) белого гигроскопичного порошка 24. Содержание основного вещества 95,6% (ВЭЖХ). ТСХ: хлороформ/метиловый спирт/ЛсОИ 1/1/0,1. Rf(23)=0,42, Rf(24)=0,11. ESMS, m/z (I%): 627,6 [M+H]+ (100).

Z-Ser-Tyr-D-Trp-Leu-Arg-Pro-GlyNH2 трифторацетат (25)

К раствору 16 г (0,0187 моль) 24, 8,3 г (0,0206 моль) 12, 3,5 г (0,0229 моль) моногидрата N-гидроксибензотриазола и 4 г (0,0395 моль) N-метилморфолина в 100 мл диметилформамида при 0°С прикапывают раствор 4,7 г (0,0228 моль) ди-циклогексил-карбодиимида в 20 мл диметилфор-мамида. Перемешивают реакционную массу 2 ч при 0°С и затем 18 ч при +22-24°С. Отфильтровывают осадок, разбавляют реакционную массу 300 мл воды и экстрагируют фильтрат 4 раза по 150 мл этилацетата. Водный слой экстрагируют 400 мл бутилового спирта. Бутанольный экстракт последовательно промывают 100 мл воды, 150 мл насыщенного водного раствора NaHCO3 и снова 100 мл воды. Отгоняют в вакууме бутанол. Маслянистый остаток затирают 2 раза по 200 мл этилацетата, отфильтровывают продукт и сушат его в вакууме. Получают 17,3 г (82,2%) белого гигроскопичного порошка 70. Содержание основного вещества 84,8% (ВЭЖХ). ТСХ: хлороформ/метиловый спирт/ЛсОИ 2/1/0,1. Rf(24)=0,17, Rf(12)=0,74, Rf(25)=0,62. ESMS, m/z (I%): 506,5 [M+2H]2+ (100), 517,3 [M+H+Na]2+ (2,7) , 517,3 [M+H]+ (5,6).

H-Ser-Tyr-D-Trp-Leu-Arg-Pro-GlyNH2 трифторацетат (26)

В 230 мл метилового спирта растворяют 15 г (0,013 моль) 25, добавляют 0,5 г 20%-ной водной пасты гидрооксида палладия. При перемешивании и температуре +22-24°С барботируют водород в течение 7 ч. Разбавляют реакционную массу 300 мл воды, перемешивают 30 мин и фильтруют. Фильтрат промывают 300 мл этилацетата, к водному слою добавляют ещё 250 мл воды и экстрагируют его 2 раза по 150 мл бутилового спирта. Органический слой упаривают в вакууме. Остаток затирают в этилацетате (3 раза по 150 мл), фильтруют и сушат его в вакууме. Получают 12 г (90,8%) серого аморфного порошка 26. Содержание основного вещества 82,5% (ВЭЖХ). ТСХ: хлороформ/метиловый спирт/AcOH 1/1/0,1. Rf(25)=0,78, Rf(26)=0,21. ESMS, m/z (I%): 439,5 [M+2H]2+ (100), 877,5 [M+H]+ (5,4).

Трипторелин ацетат (2)

К раствору 17,1 г (0,017 моль) 26, 10,5 г (0,021 моль) 15, 3,8 г (0,025 моль) моногидрата N-гидроксибензотриазола и 2,85 г (0,028 моль) N-

метилморфолина в 100 мл диметилформамида при комнатной температуре в течение 4 ч при перемешивании прикапывают раствор 4,3 г (0,021 моль) дициклогексилкарбодиимида в 100 мл диметилфор-мамида. Перемешивают реакционную массу в течение 12 ч (20°С). Отфильтровывают осадок и упаривают фильтрат в вакууме. Оставшееся масло растворяют в 400 мл воды, добавляют 5 мл уксусной кислоты, фильтруют и хроматографически очищают. Содержание 2 в жидкой фазе 11,7 г (ВЭЖХ).

Препаративную ВЭЖХ проводили на хроматографе фирмы Shimadzu. Насос ВЭЖХ Shimadzu LC-8A, расход до 150 мл в минуту. Спектрофото-метрический детектор Shimadzu SPD-20A, колонка 250*50 mm, сорбент VYDAK С18 120Л 10мкм производитель Grace.

Буферные растворы: A - 4,67% изопропило-вого спирта, 0,1% лимонной кислоты, концентрированный водный раствор аммиака до pH 6; B -35% изопропилового спирта, 0,1% лимонной кислоты, концентрированный водный раствор аммиака до pH 6. Условия градиента: 0 мин - 0% B, 100 мин - 0% B, 250 мин - 15% B, 290 мин - 30% B.

Выделенные целевые фракции наносят на колонку, промывают раствором ацетата аммония (2 г/л), затем водным раствором, содержащим 3% изопропилового спирта и 0,3% уксусной кислоты, и затем смывают ацетат 2 с колонки 30% водным изопропиловым спиртом, содержащим 0,1% уксусной кислоты. Упаривают раствор ацетата 2 до 1/3 объёма в вакууме на роторном испарителе (<40°С) и лиофилизуют. Получают 10,3 г белого, объёмного, аморфного порошка ацетата 2. Содержание основного вещества 98,4% (ВЭЖХ). [a]D26= -71,95 (1% р-р, уксусная кислота); ESMS, m/z (I%): 656,6 [M+2H] (100), 1311,4 [M+H]+ (0,2).

Результаты и обсуждение

Действующее производство бусерелина (ЗАО "Фарм-Синтез") реализовано по схеме:

H ^ BocProNHEt -;

4

HLeuArgProNHEt *2HCl -

- HProNHEt*HCl

5

BocLeuArgOH'HCl 6

- BocLeuArgProNHEt'HCl 7

- Z-D-Ser(tert-Bu)OH 9

Z-D-Ser(tert-Bu)LeuArgProNHEt*HCl -10

ZSerTyrOH

HSerTyr-D-Ser(tert-Bu)LeuArgProNHEt*HCl -14

- H-D-Ser(tert-Bu)LeuArgProNHEt*HCl 11

- ZSerTyr-D-Ser(tert-Bu)LeuArgProNHEt*HCl 13

pyroGluHisTrpOH 15

В целях расширения ассортимента выпускаемых отечественных фармацевтических субстанций было решено отработать схему синтеза трипторелина с учётом готовых полупродуктов используемых в производстве бусерелина.

Анализ нескольких возможных схем синтеза и промежуточные эксперименты показали, что вещества 3; 6; 12 и 15 (на обеих схемах выделены в рамке) могут быть использованы в совместном производстве.

Разработанная схема синтеза включает 10 стадий и позволяет получать трипторелин с минимальными затратами:

3

8

12

"it

HGlyOMe*HCl I 16

BocLeuArgOH*HCl

BocProGlyOMe ■ 17

- BocProGlyNH,-»- HProGlyNH2*HCl

18 19 I

HLeuArgProGlyNH2*2HCl ■ 21

BocLeuArgProGlyNH2*HCl 20

-Boc-D-TrpOPfp

22

Boc-D-TrpLeuArgProGlyNH2*HCl —— H-D-TrpLeuArgProGlyNH2 *2CF3COOH

ZSerTyrOH -

HSerTyr-D-TrpLeuArgProGlyNH2*CF3COOH -— ZSerTyr-D-TrpLeuArgProGlyNH2*CF3COOH

26 I I-1 25

-\ pyroGluHisTrpOH

Конденсация защищённого пролина (3) и метилового эфира глицина (16) с использованием изобутилхлорформиата даёт защищённый дипептид (17). При последующем амонолизе раствором аммиака в метаноле и дебокированием раствором хлороводорода в диоксане образуется дипептид (19). Дальнейшая конденсация 19 и 6 с использованием карбодиимидного метода (ИОЫ, дициклогек-силкарбодиимид) диметилформамиде при 0-5°С приводит к тетрапептиду (20).

Дебокирование 20 (раствор хлороводорода в диоксане) и реакция образующегося 21 с пентофтор-фениловом эфиром защищённого Б-триптофана даёт 23. Использование на этой стадии каталитического количества имидазола позволяет существенно уменьшить время реакции и повысить чистоту 23. Снятие защитной группы с 23 проводят с использованием триф-торуксусной кислоты. Конденсацией образующегося 24 и ¿-защищённого дипептида 12 (ИОБ^ дициклогексил-карбодиимид) получают гептапептид 25. Сырец трипто-релина (2) получают по реакции деблокированного 26 (полученного гидрированием 25 водородом в присутствии гидрооксида палладия) и трипептида 15. Очистку сырца 2 и замену противоиона трифторацетата на ацетат выполняют с использованием препаративной ВЭЖХ.

Выводы

В результате проделанной работы разработан новый способ получения трипторелина на базе действующего производства бусерелина. Предложенный способ позволяет получать целевой продукт с чистотой >98%, легко масштабируемый, и на его основе может быть организовано совместное производство двух фармацевтических субстанций.

6

23

24

12

15

2

Литература

1. Гершкович А.А., Киберев В.К. Синтезы пептидов. Реагенты и методы. Киев: Наукова думка, 1987. - С. 62-3.

2. Heyns Chris F. Triptorelin in the treatment of prostate cancer: clinical efficacy and tolerability // American Journal of Cancer - 2005. - 4(3). - P. 169-83.

3. Loumaye Ernest, Naor Zvi, Catt Kevin J. Binding affinity and biological activity of gonadotropin-releasing hormone agonists in isolated pituitary cells // Endocrinology. - 1982. - 111(3). - P. 730-6.

4. Mohr K. Buserelin // Deutsche Medizinische Wochenschrift. - 1994. - 119(14). - P. 523-4.

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ

ГнРГ - гонадотропин-рилизинг гормон

НАУЧНЫЕ ЖУРНАЛЫ РОНЦ ИМ. H.H. БЛОХИНА РАМН

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.