CC BY
34
2. Каминская Г.О, Абдуллаев Р.Ю. Изменения метаболизма эритроцитов у больных остропрогрессирующим туберкулёзом легких//Пробл. туб.-2003.-№2.-С.33-36.
3. Применение искусственного пневмоторакса и пневмоперитонеума в лечении деструктивного туберкулёза легких в современных условиях: Методические рекомендации//Пробл. туб.-2003.-№2.-С.50-53.
4. Сидоренко Г.И., Зборовский З.И., Левина Д.И. Поверхностно-активные свойства конденсата выдыхаемого воздуха (новый способ определения функ-
ции легких)//Тер. архив-1980.-№3.-С.65-68.
5. Хоменко А.Г., Мишин В.Ю., Чуканов В.И. и др. Диагностика, клиника и тактика лечения остро прогрессирующих форм туберкулёза легких в современных эпидемиологических условиях//Пробл. туб.-1999.-№1.-С.22-27.
6. Хышиктуев Б.С., Хышиктуева Н.А., Иванов
В.Н. Методы определения продуктов перекисного окисления липидов в конденсате выдыхаемого воздуха и их клиническое значение//Клин. лаб. диагн.-1996.-№3.-С.13-15.
□ □□
УДК 616.25-002.3:616.24-002.3:616-092.4 К.В.Самсонов
РАЗРАБОТКА ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ МОДЕЛИ АБСЦЕССА ЛЕГКОГО, СОЧЕТАЮЩЕГОСЯ С ЭМПИЕМОЙ ПЛЕВРЫ
ГУ Дальневосточный научный центр физиологии и патологии дыхания СО РАМН
РЕЗЮМЕ
Представлены методы экспериментального воспроизведения закрытых абсцессов легких и абсцессов легких, сочетающихся с эмпиемой плевры, а также методика изучения элиминации из них стафилококкового а-токсина. Исследования проведены на 12 кроликах породы шиншилла.
SUMMARY
K.V.Samsonov
LUNG ABSCESS EXPERIMENTAL MODEL COMBINED WITH PLEURA EMPYEMA
Methods for experimentally induced lung abscesses, combined with pleura empyema as well as techniques for eliminating staphylococcal а-toxin are described. We used 12 rabbits of Chinchilla breed.
Описаны несколько способов воспроизведения экспериментальной модели эмпиемы плевры [4]. В клинической практике наиболее часто эмпиема плевры развивается как осложнение абсцесса легкого [6]. Поэтому нами была создана экспериментальная модель эмпиемы плевры, сочетающаяся с абсцессом легкого, на которой изучалась элиминация из очагов этой патологии бактериального токсина.
Экспериментальные исследования проводились на 12 кроликах породы шиншилла, которым были воспроизведены следующие модели заболеваний: а) модель закрытого гнойно-некротического воспаления (абсцесс) легкого (6 животных); б) модель гнойно-некротического воспаления (абсцесса) легкого сочетающегося с эмпиемой плевры (6 животных).
Воспроизведение модели закрытого абсцесса легкого производилось следующим образом. Кролику, в по-
ложении на боку, по задне-подмышечной линии грудной клетки в 5 межреберье выстригалась и сбривалась шерсть, кожа обрабатывалась 3%-ной спиртовой настойкой йода. В этом месте на коже стерильными ножницами делали метку-надсечку размером 2x2 мм. В центре надсечки иглой диаметром 0,6 мм перпендикулярно плоскости стола, на котором лежало животное, делали прокол всех тканей грудной стенки и легкого на глубину 1,5 см. Через иглу шприцем вводили смесь из
0,5 млрд. взвеси золотистого стафилококка (штамм «Wood-46») в 1 мл 0,85%-ного раствора хлористого натрия, соединенного с 0,5 мл стабилизатора Freund's adguvant complete (США). Стабилизатор применялся для отграничения инфекционного процесса и усиления местного воспалительного ответа в очаге инфекции [2].
С целью ускорения развития гиперэргического воспаления в созданном инфекционном очаге через сутки кролику в вену вводили еще 1 млрд. взвеси того же штамма золотистого стафилококка разведенного в 1 мл стерильного 0,85%-ного раствора хлористого натрия.
Золотистый стафилококк был применен в качестве источника гнойно-некротического процесса в легких у животных потому, что он входит в число основных частых возбудителей гнойно-некротических заболеваний легких [1, 5].
Для воспроизведения модели закрытого абсцесса легкого, сочетающегося с эмпиемой плевральной полости дополнительно к вышеперечисленным действиям применялось следующее. Кролику, в этом же положении, по заднеподмышечной линии в 6 межре-берье производилась пункция плевральной полости специальной раздвижной иглой, разработанной в клинике ГУ ДНЦ ФПД СО РАМН (рис. 1).
Раздвижная игла имеет наружную и внутреннюю части, у последней внутренний конец представлен закрытой шлифованной полушаровидной формой, благодаря этому, соприкосновение с движущимся при дыхании легким атравматично для легочной ткани, отсутствует эффект присасывания легкого к игле.
5 4 2 1 3
Рис. 1. Схема раздвижной иглы для пункции плевральной полости.
Инструмент состоит (рис. 1) из внешней короткой иглы (1), имеющей открытый острый с крутым срезом конец (2) и муфту (3), внутренней более длинной иглы (4) с закрытым шлифованным полушаровид-ным концом (5) с расположенными в близи его овальными боковыми отверстиями (6) и муфтой (7). Внутренняя боле длинная игла (4) и внешняя короткая игла (1) герметично вставленны друг в друга.
Это устройство устанавливается и работает следующим образом. Все слои грудной стенки, включая париетальную плевру, прокалывают иглой (1), затем в ее просвет вводится внутренняя игла (4), которая своим внутренним концом (5) отодвигает дышащее легкое, но не повреждает его. На рис. 2 (а, б) представлены этапы пункции плевральной полости раздвижной иглой.
Затем к муфте (7) присоединяется шприц и через отверстия (6) в плевральную полость вводится смесь из 0,5 млрд. взвеси золотистого стафилококка (штамм Wood-46) в одном миллилитре 0,85%-ного раствора хлористого натрия.
По окончании опытов, при вскрытии животных, у которых была сформирована модель закрытого абсцесса легкого, отмечали, что пораженный участок легочной ткани был уплотнен, отечен, на разрезе содержал множественные полости, размерами от 5*3 мм до 1*1 мм, заполненные гноем, который не дренировался бронхами, однако, непосредственно прилежащие к абсцессу бронхи были в состоянии отека.
У животных, которым дополнительно взвесь стафилококка вводилась в плевральную полость, обнаруживали жидкий гной в плевральной полости, а париетальная и висцеральная плевры были гиперемиро-ваны, отечны, на отдельных участках был виден фибринозно-гнойный налет. Таким образом, у второй группы животных формировался закрытый абсцесс легкого, сочетающийся с типичной эмпиемой плевры.
Для изучения путей распространения бактериального токсина из гнойно-некротических очагов легких и гнойных плевральных полостей нами была применена следующая методика. По методике, описанной выше, первой группе животных вводили очищенный стафилококковый а-токсин, меченный I125 в разведении 1:200, в объёме 2 мл в дозе 3,5 тКи на 1 кг веса животного. Стафилококковый а-токсин, меченный I125, был получен в лабораториях стафилококковых инфекций и ботулизма НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф.Гамалеи (г. Москва) со следующими характеристиками: белок (по Лоури) - 0,06 мг/мл, гемолизирующая активность - 0,5, радиоактивность (без учёта эффективности счёта) - 1,7-108 имп/мин/мл или 0,7 тКи/мл, молекулярный вес 36000.
Второй группе животных вышеописанная доза делилась на две равные части, одна часть вводилась в абсцесс легкого, вторая часть в гнойную плевральную полость. В течение опытов лимфа собиралась
а
б
Рис. 2. Схема пункции плевральной полости раздвижной иглой.
постоянно по часам в специальные резервуары, кровь из нижней полой вены бралась периодически, для взятия проб мочи в мочевой пузырь через уретру вводился катетер.
По истечении времени опытов кролики забивались введением воздуха через катетер, стоящий в нижней полой вене. Навески биологических жидкостей (лимфа, кровь, моча) исследовали методом радиоактивной индикации [3].
С помощью вышеописанных методов были изучены в сравнении пути распространения стафилококкового а-токсина из закрытых абсцессов легких и абсцессов легких, сочетающихся с эмпиемой плевральной полости, которые позволили выявить преимущественный черезлимфатический путь его распространения.
Таким образом, полученные модели закрытого абсцесса легкого и абсцесса легкого, сочетающегося с эмпиемой плевральной полости, могут быть рекомендованы для экспериментального изучения различных форм гнойно-некротических заболеваний легких и плевральных полостей.
ЛИТЕРАТУРА
1. Дворецкий Л.И., Яковлев С.В., Каминский В.В. Внебольничные стафилококковые пневмонии//Ин-фекции и антимикробная терапия.-2001.-Т.3, №2.-
С.44-46.
2. Джавец Э., Мельцик Л.Л., Эльдельберг Э.А. Руководство по медицинской микробиологии.-М.: Медицина, 1982.-Т.1.-С.350.
3. Самсонов К.В. Экспериментальное воспроизведение закрытых и дренируемых абсцессов легких для изучения элиминации из них бактериального токсина//Бюл. физиол. и патол. дыхания.-2003.-Вып. 14.-С.30-32.
4. Саркисов Д.С., Ремезов П.И. Воспроизведение болезней человека в эксперименте.-М., 1960.-780 с.
5. Ujayli B., Nafziger D., Saravolatz L. Pneumonis due to Staphylococcus aures infection// J.Clin. Chest. Med.-1995.-Vol.16, №1.-P.111-120.
6. Wiedemann H.P., Rice T.W. Lung abscess and empiema//Semin. Thorac. Cardiovasc. Surg.-1995.-Vol.7, №2.-P.119-128.
