CC BY
30
развития синхронизации на минимальной границе
7,40±0,45, длительность развития синхронизации на максимальной границе 28,80±1,02.
У девочек 11 лет минимальная граница составила 96,9±0,98, максимальная граница 121,2±1,04, ширина диапазона 24,90±0,57, разница между минимальной границей и исходной ЧСС 13,20±0,87, длительность развития синхронизации на минимальной границе
10,30±0,84, длительность развития синхронизации на максимальной границе 31,80±1,60.
У девочек 12 лет минимальная граница составила 95,82±1,14, максимальная граница 120,18±1,24, ширина диапазона 24,82±0,56, разница между минимальной границей и исходной ЧСС 11,18±1,12, длительность развития синхронизации на минимальной границе
8,82±0,54, длительность развития синхронизации на максимальной границе 29,91±0,97.
У девочек 13 лет минимальная граница составила 107,82±0,65, максимальная граница 130,82±0,84, ширина диапазона 23,00±0,80, разница между минимальной границей и исходной ЧСС 19,0±0,65, длительность развития синхронизации на минимальной границе 5,91±0,52, длительность развития синхронизации на максимальной границе 31,45±1,67.
У девочек 14 лет минимальная граница составила 97,440,84, максимальная граница 122,11±0,51, ширина диапазона 24,64±0,90, разница между минимальной границей и исходной ЧСС 10,66±0,64, длительность развития синхронизации на минимальной границе 9,11±0,65, длительность развития синхронизации на максимальной границе 31,00± 1,01.
У девочек 15 лет минимальная граница составила 96,70±1,35, максимальная граница 115,10±1,39, ширина диапазона 18,40±0,81, разница между минимальной границей и исходной ЧСС 16,40±0,66, длительность развития синхронизации на минимальной границе 14,30±0,79, длительность развития синхронизации на максимальной границе 27,60±1,06.
Из вышеизложенного видно, что наибольшая ширина диапазона у детей наблюдается в период второго детства (у девочек в 11 лет, у мальчиков в 12 лет). Уве-
личение ширины диапазона в период второго детства можно объяснить возрастной динамикой силы нервных процессов и внимания. Именно в этот возрастной период сила возбуждения достигает максимального уровня, свойственного данному индивиду [6], что вместе с заметным ростом устойчивости внимания, происходящим в этот период [5], позволяет обеспечить прочность и длительность функционирования доминантного очага и более широкий диапазон синхронизации, чем у детей периода первого детства. Тенденцию к уменьшению ширины диапазона у детей с 13 лет можно объяснить, появляющейся в подростковый период "новой волной отвлекаемости внимания".
Выводы
Параметры сердечно'-дыхательного синхронизма у детей имеют возрастные особенности, что предопределяется возрастной динамикой силы нервных процессов и устойчивости внимания.
ЛИТЕРАТУРА
1. Покровский В.М., Абушкевич В.Г., Шапиро С.В. Возможность управления ритмом сердца посредством произвольного изменения частоты дыхания//Докл. АН СССР.-1985.-Т.283, №3.-С.737-740.
2. Покровский В.М., Абушкевич В.Г. Синхронизация сердечных сокращений и дыхания при терморегуляционном тахипноэ у собак//Докл. АН СССР.-1986.-Т.87, №2.- С.497-481.
3. Покровский В.М. Концепция формирования ритма сердца в центральной нервной системе (концепция центрального ритмогенеза)//Кубанский научный медицинский вестник.-2000.-№2 (50).-С.20-24.
4. Покровский В.М., Абушкевич В.Г., Борисова И.И. и др. Сердечно-дыхательный синхронизм у чело-века//Физиология человека.-2002.-Т.28, №6.-С. 116-119.
5. Рубинштейн С.Л. Развитие внимания//Психология внимания/ Под ред. Ю.Б.Гиппенрейтер, В.Я.Романова.-М.: ЧеРо, 2001.- 858 с.
6. Стреляу Я. Роль темперамента в психическом развитии.-М.: Прогресс, 1982.-231 с.
□ □ □
УДК 616.24-002.3-092.4:612.118.22 К.В.Самсонов
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ВОСПРОИЗВЕДЕНИЕ ЗАКРЫТЫХ И ДРЕНИРУЕМЫХ АБСЦЕССОВ ЛЕГКИХ ДЛЯ ИЗУЧЕНИЯ ЭЛИМИНАЦИИ ИЗ НИХ БАКТЕРИАЛЬНОГО ТОКСИНА
ГУ Дальневосточный научный центр физиологии и патологии дыхания СО РАМН
РЕЗЮМЕ
Представлены методы экспериментального воспроизведения, на 23 кроликах породы шиншила закрытых и дренируемых абсцессов легких, а так же методика изучения элиминации из них бактериального токсина.
K.V.Samsonov EXPERIMENTAL MODEL FOR CLOSED AND DRAINED LUNG ABSCESSES TO STUDY ELIMI NATION OF BACTERIAL TOXIN SUMMARY Experimental model (25 rabbits) was used to study methods of eliminating bacterial toxins from closed and drained lung abscesses.
Существуют различные методы воспроизведения гнойно-некротического бронхо-легочного воспаления, однако, они не отражают отдельные формы этой патологии [3].
Экспериментальные исследования осуществлялись на 23 кроликах породы шиншила, которым были воспроизведены следующие модели заболеваний:
• модель закрытого ограниченного гнойнонекротического воспаления (абсцесса) легкого;
• модель гнойно-некротического воспаления (абсцесса) легкого, в сочетании с ограниченным гнойным бронхитом - дренажный гнойный бронхит.
Воспроизведение моделей закрытых и дренируемых через бронх абсцессов легких производилось следующим образом. Кролику, в положении на боку, по заднеподмышечной линии грудной клетки в 5 межреберье выстригалась и сбривалась шерсть, кожа обрабатывалась 3%-ной спиртовой настойкой йода. В этом месте на коже стерильными ножницами делали метку-надсечку размером 2x2 мм. В центре надсечки иглой диаметром 0,6 мм перпендикулярно плоскости стола, на котором лежало животное, делали прокол всех тканей грудной стенки и легкого на глубину 1,5 см. Через иглу шприцем вводили смесь из 1 млрд. взвеси золотистого стафилококка (штамм «Wood-46») в 1 мл 0,85%-ного раствора хлористого натрия, соединенного с 0,5 мл стабилизатора Freunds adguvant complete (США). Стабилизатор применялся для отграничения инфекционного процесса и усиления местного воспалительного ответа в очаге инфекции [2].
С целью ускорения развития гиперэргического воспаления в созданном инфекционном очаге через сутки кролику в вену вводили еще 1 млрд. взвеси того же штамма золотистого стафилококка разведенного в 1 мл стерильного 0,85%-ного раствора хлористого натрия.
Золотистый стафилококк был применен в качестве источника гнойно-некротического процесса в легких и бронхах у животных потому, что он входит в число основных частых возбудителей гнойно-некротических заболеваний легких [1].
По окончании опытов, при вскрытии животных, у части из них отмечали, что пораженный участок легочной ткани был уплотнен, отечен, на разрезе содержал множественные полости, размерами от 5х3 мм до 1х1 мм, заполненные гноем, который не дренировался бронхами, однако, непосредственно прилежащие к абсцессу бронхи были в состоянии отека.
У части животных абсцессы легочной ткани дренировались через бронхи, и этот отдел бронхов находился в состоянии гнойного воспаления. Воспалительный инфильтрат вокруг гнойно-
некротического очага был не менее 3х4 см, а у 1/3 живопшдаузаэнияалужломшпространения бактериально -го токсина из очагов гнойно-некротических бронхолегочных воспалений нами была применена следующая методика.
Перед началом эксперимента, за 20 мин., опытного кролика поили молоком. Под внутривенным тиопента-ловым наркозом (15 мг тиопентала натрия на 1 кг веса), в сочетании с местной инфильтрационной анестезией
0,5%-ного раствором новокаина, производили разрез
кожи по проекции внутренней ярёмной вены - от середины шеи до верхней трети грудины (слева - для дренирования грудного лимфатического протока, справа -для дренирования правого лимфатического протока).
Послойно выделялась перевязывалась внутренняя яремная вена, в сторону ярёмно-ключичного венозного соустья вводился по направителю катетер для сбора лимфы. Затем, находили подключичную вену и перевязывали ее на уровне середины ключицы, после осторожной отсепаровки от окружающих тканей перевязывалась начальная часть плече-головной вены. В образовавшийся венозный резервуар для сбора лимфы впадали мелкие венозные веточки, которые дополнительно перевязывались.
Из линейного разреза на внутренней поверхности бедра послойно выделялась и катетеризировалась в центральном направлении бедренная вена - катетер для забора проб крови продвигался до уровня нижней полой вены. Оба катетера промывались гепарином и до начала эксперимента перекрывались.
С целью предотвращения свёртывания лимфы и крови при их наружном выделении по катетерам, животным внутривенно вводился гепарин из расчёта 400 ЕД на 1 кг веса. Для взятия проб мочи в мочевой пузырь через уретру вводился катетер (рис).
По методике, описанной выше, в зону гнойнонекротического воспаления правого или левого лёгкого вводили очищенный стафилококковый а-токсин, меченный I125 в разведении 1:200, в объёме 2 мл в дозе 3,5 тКи на 1 кг веса животного. Стафилококковый а-токсин, меченный I125, был получен в лабораториях стафилококковых инфекций и ботулизма НИИ эпидемиологии и микробиологии им.
Н.Ф.Гамалеи (г. Москва) со следующими характеристиками: белок (по Лоури) - 0,06 мг/мл, гемолизи-рующая активность - (ЬИ) - 0,5, радиоактивность (без учёта эффективности счёта) - 1,7^ 108
имп/мин/мл или 0,7 тКи/мл, молекулярный вес 36000.
Для сравнения распространения радиоактивных препаратов, в отдельной группе опытов, внутрилё-гочно вводился №1125 в той же дозе, что и стафилококковый а-токсин.
В течение опытов лимфа собиралась постоянно по часам в специальные резервуары, кровь из нижней полой вены бралась периодически.
По истечении времени опытов кролики забивались введением воздуха через катетер, стоящий в нижней полой вене. Навески биологических жидкостей (лимфа, кровь, моча) исследовали методом радиоактивной индикации.
Этот метод мы использовали для изучения распространения из бронхов и паренхимы лёгких очищенного стафилококкового а-токсина, меченного I125 в организме здоровых кроликов и больных гнойно-некротическим воспалением лёгких.
Радиоактивная индикация проводилась до опытов - исследовали вводимую в лёгкое дозу радиоактивного изотопа, и после опытов - исследовали пробы-навески биологических жидкостей весом 1 г.
Рис. Схема сбора биологических жидкостей у экспериментального животного.
1 - катетер для забора крови из нижней полой вены; 2 - катетер для сбора мочи из мочевого пузыря; 3 -катетер для сбора лимфы из левого грудного лимфатического протока; 4 - левый грудной лимфатический проток; 5 - левая внутренняя яремная вена; 6 - левая подключичная вена; 7 - левая плечеголовная вена; 8 - искусственный венозный резервуар для сбора лимфы, куда впадает левый грудной лимфатический проток; 9 - наружные шунты, соединяющие венозные сосуды; 10 - катетер для сбора лимфы из правого лимфатического протока; 11 - правый лимфатический проток; 12 - правая внутренняя яремная вена; 13 - правая подключичная вена; 14 - искусственный венозный резервуар для сбора лимфы, куда впадает правый лимфатический проток.
Радиоактивность проб определялась на установке фирмы «Гамма» (ВНР) с автоматическим селективным по энергии счётчиком с колодезным датчиком (типа М2-138/А), настроенном на I125 - 0,03 Мэв, в режиме 60 с, с рангом 103 импульсов; трехкратно, с вычитанием фона. Затем рассчитывалась средняя активность (и) в импульсах/60 с на каждую пробу.
Перед введением радиоактивного препарата определялась стандартная активность (АС) - количество импульсов за 60 с в 1 г сырой ткани животного. Вычисление АС начиналось с трехразового определения общего количества импульсов радиоактивного изотопа, вводимого в организм животного. Затем вычислялась средняя (М) всех определений.
Стандартная активность (АС) вычислялась по формуле: АС = М/р,
где р - общий вес животного в граммах.
Результаты измерения уровня накопления радиоактивности в органах и биологических жидкостях во всех группах опытов выражали относительной удельной активностью (ОУА) - это отношение средней активности (и), в имп/60 с, 1 г исследуемой сырой биологической жидкости к стандартной активности 1 г сырой ткани: ОУА = и/ АС.
С помощью вышеописанных методов были изучены пути распространения стафилококкового а-токсина из гнойно-некротических бронхо-легочных очагов, которые позволили выявить преимущественный путь его распространения - чрезлимфатический.
Таким образом, полученные модели зарытого и дренируемого через бронхи гнойно-некротического бронхо-легочного воспаления, методика изучения основных путей распространения из них стафилококкового а-токсина меченного I125 , могут быть рекомендованы для экспериментального изучения различных форм гнойно-некротических заболеваний легких.
ЛИТЕРАТУРА
1. Дворецкий Л.И., Яковлев С.В., Каминский В. В. Внебольничные стафилококковые пневмо-нии//Инфекции и антимикробная терапия.-2001.-Т.3, №2.-С.44-46.
2. Джавец Э., Мельцик Л.Л., Эльдельберг Э.А. Руководство по медицинской микробиологии.-М.: Медицина, 1982.-Т.1.-С.350.
3. Саркисов Д.С., Ремезов П.И. Воспроизведение болезней человека в эксперименте.-М.,1960.-С.780.
