CC BY
106
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
УДК 615.277.3: 616.092.4
ПРОТИВООПУХОЛЕВАЯ ЦИТОТОКСИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ ЛИМФОКИН-АКТИВИРОВАННЫХ КИЛЛЕРОВ
Н.П. Велижева1, О.С. Жукова1, О.В. Лебединская2, И.Ж. Шубина1,
Е.А. Лебединская2, М.В. Киселевский1
ГУ «Российский научный онкологический центр им. Н.Н. Блохина РАМН», лаборатория клеточного иммунитета, г. Москва1
ГОУ ВПО «Пермская государственная медицинская академия» М3 РФ, кафедра гистологии2
Изучена цитотоксическая активность лимфокин-активированных киллеров (ЛАК) по отношению к различным опухолевым линиям. Показано, что ЛАК обладают действием, подобным натуральным киллерам, и способны избирательно воздействовать на опухолевые клетки. Они обладают высокой киллерной способностью и широким спектром цитотоксической активности к различным видам трансформированных клеток. Эти данные имеют значение как для расширения области применения ИЛ-2/ЛАК терапии при различных нозологических формах, так и для подтверждения целесообразности использования её в биотерапии злокачественных новообразований.
Ключевые слова: лимфокин-активированные киллеры, мононуклеарные клетки периферической крови, клетки опухолевых линий, цитотоксическая активность.
ANTI-TUMOR CYTOTOXIC ACTIVITY OF LYMPHOKINE-ACTIVATED KILLERS N.P. Velizheva1, O.S. Zhukova1, O.V. Lebedinskaya2,1.Zh. Shubina1,
E.A. Lebedinskaya2, M.V. Kiselevsky1 N.N. Blokhin Russian Cancer Research Center, RAMS, Moscow1 Histology Department, Perm State Medical Academy2 Cytotoxic activity of lymphokine-activated killers (LAK) with respect to various tumor lines has been studied. It has been shown that LACs act like natural killers and they are able to effect selectively on tumor cells. They have a high killer ability and wide spectrum of cytotoxic activity towards various types of transformed cells. These findings are of great importance for administering IL-2/LAK therapy for various nosological forms and for cancer biotherapy as well.
Key words: lymphokine-activated killers, mononuclear cells of peripheral blood, tumor cell lines, cytotoxic activity.
Цитотоксические лимфоциты и натуральные киллеры (НК) играют ключевую роль в системе противоопухолевого иммунитета. НК относятся к неспецифическому звену иммунитета и не требуют каскада реакций антигенной презентации в отличие от Т-киллеров. Характерным признаком натуральных киллеров является то, что они могут действовать независимо от наличия специфического антигена и молекул главного комплекса гистосовместимости (Major Histocompatibility Complex - МНС) на мембране измененной клетки. Сигналом на киллинг может
быть изменение или отсутствие экспрессии молекул МНС либо их ассоциация с чужеродным белком (в случае вирус-индуцированной трансформации клетки). С одной стороны, имеются сведения о способности избирательного действия НК на опухолевые клетки, но с другой -существуют данные о возможности этих клеток поражать неизменённый эндотелий [1,2].
К сожалению, высокоактивная субпопуляция натуральных киллеров малочисленна. Киллер-ная активность этих эффекторов иммунобиологического надзора может быть существенно
повышена различными модулирующими факторами. С этой целью успешно применяется интерлейкин-2 (ИЛ-2) [4, 5, 7-9]. Генерация ex vivo лимфокин-активированных киллеров (ЛАК) - клеток с высокой степенью цитотоксичности - позволяет преодолеть природную малочисленность НК [1, 6, 11]. Адоптивная иммунотерапия с использованием ЛАК-клеток в настоящее время находит все более широкое применение [7, 10].
В связи с этим целью данной работы явилась оценка специфики лизиса различных клеточных опухолевых линий лимфокин-активированными киллерами и оценка степени их цитотоксиче-ской активности.
Материал и методы
Культивирование клеток опухолевых линий. В качестве объекта исследования использовали линии опухолевых клеток человека: немелкоклеточный рак легкого А549, карцинома яичников человека линии SCOV3, рак молочной железы человека MCF7 и эритробластный лейкоз человека К562 (American Type Culture Collection).
Выделение мононуклеарных лейкоцитов (МЛ). Мононуклеарные лейкоциты выделяли из стабилизированной гепарином (25 ед/мл) периферической крови 30 здоровых доноров на одноступенчатом градиенте фиколла (Pharmacia, плотностью 1,077 г/см3) центрифугированием при 400 g в течение 30 мин. Мононуклеарные
клетки (МНК), образовавшие интерфазное кольцо, собирали пипеткой и трехкратно отмывали в среде 199 (Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов РАМН, Москва). После каждой отмывки в 10-кратном объёме среды клетки осаждали центрифугированием при 200 g.
Генерация ЛАК. Выделенные из периферической крови МНК ресуспендировали в полной культуральной среде (среда RPMI 1640, 10 % эмбриональной телячьей сыворотки, глютамин, гентамицин) в концентрации 1х106 в 1мл среды. Затем добавляли ИЛ-2 (Proleukine, Chiron, Голландия) в концентрации 10000 МЕ/мл. Клетки инкубировали при 4,5 % С02 и 37°С в течение 11 сут.
Определение цитотоксической активности -МТТ тест. Цитотоксическую активность лимфоцитов определяли на NK-чувствительной линии клеток эритробластного лейкоза человека К-562, немелкоклеточного рака легкого А-549, рака яичника SKOV-3, нормальных клетках легкого эмбриона теленка VER и на фибробластах, полученных из фрагментов кожи донора в тесте восстановления 3-(4,5-диметилтиазол-2-ил)-2,5-дифенилтетразолия бромида. Опухолевые и ^трансформированные аллогенные клетки (1х104 в 1 мл) инкубировались в культуральной среде с МНК (в соотношениях клетки-мишени/ эффекторы 1:5; 1:2; 1:1 и 1:0,5) в плоскодонных 96-луночных микропланшетах (Costar, Франция) 18 ч. Затем в лунки добавлялся витальный
Таблица
Цитотоксическая активность мононуклеарных клеток крови и лимфокин-активированных киллеров по отношению к клеткам различных опухолевых линий (%)
Соотношение кл.мишень / кл.эффектор Немелкоклеточный рак легкого А-549 Эритробластный лейкоз человека К-562 Рак яичника SKOV-3 Рак молочной железы человека MCF7
МНК (контр.) ЛАК МНК (контр.) ЛАК МНК (контр.) ЛАК МНК (контр.) ЛАК
1:5 58 ± 4,5 77 ± 5,8* 68 ± 9,7 86 ± 5,1* 28 ± 9,2 51,5 ± 10,1* 10 ± 5,2 62,5 ± 5,8*
1:2 53 ± 5,2 60 ± 6,4 41 ± 5,3 69 ± 6,3* 25 ± 8,9 40 ± 9,2* 7,5 ± 2,4 35,5 ± 4,6*
1:1 42 ± 3,1 58 ± 6,2 33 ± 3,4 57 ± 2,7* 20 ± 5,4 30 ± 7,6 6±3,1 27 ± 6,7*
Примечание: * - достоверность различий между МНК и ЛАК (р < 0,05) СИБИРСКИЙ ОНКОЛОГИЧЕСКИЙ ЖУРНАЛ. 2008. №1 (25)
краситель МТТ (Sigma, США) и по оптической плотности, измеряемой на мультискане МСС-340 (Labsystem, Финляндия), рассчитывался процент лизиса опухолевых клеток (процент цитотоксично сти).
Морфо-гистохимическое исследование. Через 5 сут после начала культивирования из центрифугата надосадочной жидкости культур, содержащих мононуклеарные клетки крови донора, активированные ИЛ-2, делали мазки, которые окрашивали азуром 11-эозином по Ро-мановскому-Г имза.
Анализ фенотипа ЛАК. Фенотип генерированных клеток исследовали с использованием моноклональных антител (Caltag Laboratories, США) против соответствующих антигенов. Клетки отмывали холодным фосфатно-солевым буфером (ФСБ) и окрашивали Р1ТС-(флюорес-циинизотиоционат) и Р- (фикоэритрин) мечеными антителами согласно инструкции производителя. Результаты учитывали на проточном цитометре FacsCalibur (Becton Dickinson). Гейт (окно) популяции клеток устанавливали на основе комбинации прямого и бокового светорассеяния и размера клеток. При учете результатов подсчитывали 10000 событий в гейте. Статистическая обработка материала проведена при помощи программного пакета WINMDI2.8.
Результаты и обсуждение
Как следует из данных, представленных в таблице, лимфокин-активированные киллеры обладают высокой степенью цитотоксичности по отношению к трансформированным клеточным линиям рака яичника БКОУ-З, немелкоклеточного рака легкого А-549, рака молочной железы человека МСБ7 и эритробластного лейкоза К-562. При этом уровень цитотоксической активности достоверно повышается при уменьшении соотношения клетка-мишень/клетка-эффектор. Максимальные значения киллерной активности (63, 77 и 86 % соответственно) по сравнению со спонтанной цитотоксической активностью МЛ (58-68 %) достигаются при соотношении мишень-эффектор 1:5. Рис. 1-3 наглядно демонстрируют активный лизис клеток различных опухолевых линий под действием активированных ИЛ-2 мононуклеарных лейкоцитов.
В наших предыдущих исследованиях [3] при цитологическом изучении мазков, полученных из взвеси МЛ, активированных ИЛ-2, показано, что на 5-е сут инкубации существенно возрастает количество лимфоцитов на фоне резкого уменьшения содержания гранулярных лейкоцитов. В эти сроки наблюдается большое количество бластных форм с преобладанием крупных клеток типа пролимфоцитов (рис. 4). В культуре часто встречаются клетки в состоянии митотического деления, что говорит об их высокой пролиферативной активности.
Рис. 1. Клетки немелкоклеточного рака легкого А-549 в культуре до (а) и после (б) добавления лимфокин-активированных киллеров. Соотношение клетка-мишень/клетка-эффектор - 1:5. Микрофотографии культуральной взвеси. Фазовоконтрастная микроскопия в
светлом поле. Ок. 10, об. 20
а б
Рис. 2. Клетки эритробластного лейкоза К-562 в культуре до (а) и после (б) добавления лимфокин-активированных киллеров. Соотношение клетка-мишень/клетка-эффектор - 1:5. Микрофотографии культуральной взвеси. Фазовоконтрастная микроскопия в
светлом поле. Ок. 10, об. 20
Рис. 4. Лимфокин-активированные киллеры, генерированные из мононуклеарных лейкоцитов периферической крови здоровых доноров (5-й день инкубации). Микрофотография ЛАК в мазке культуральной взвеси. Окраска азуром 11-эозином. Ок. 10, об. 40
б
Рис. 3. Клетки рака яичника БКОУ-З в культуре до (а) и после (б) добавления лимфокин-активированных киллеров. Соотношение клетка-мишень/клетка-эффектор - 1:5. Микрофотографии культуральной взвеси. Фазовоконтрастная микроскопия в светлом поле. Ок. 10, об. 20
Рис. 5. Гистограммы, отражающие уровень экспрессии поверхностных молекул (кластеров детерминации) лимфокин-активированных киллеров (ЛАК), генерированных из мононуклеарных лейкоцитов периферической крови доноров (3-и сут инкубации с ИЛ-2). Верхний ряд, дотплот - светорассеяние (популяция ЛАК-клеток в очерченной области), на гистограммах левый пик -аутофлюоресценция клеток при использовании изотипического контроля, правый - флюоресценция (Р1ТС - флюоресциинизотиоционат и Я-РЕ фикоэритрин) после окрашивания соответствующими антителами.
Примечания: по оси ординат - количество анализированных клеток, по оси абсцисс - интенсивность флюоресценции,
СО - дифференцировочные антигены (СОЗ, С04, С08, С014, С025, С038, С056, С057, С058, НЬА-ОЯ)
Результаты, полученные при изучении иммунофенотипа ЛАК, генерированных из моно-нуклеарных лейкоцитов периферической крови донора и активированных ИЛ-2, демонстрируют высокий уровень экспрессии молекул адгезии, костимулирующих молекул и рецепторов к ИЛ-2 на поверхности клеток (рис. 5). Отмечается наличие субпопуляций клеток с выраженной экспрессией антигенов СБ16 и СБ56, характерной для натуральных киллеров, которые проявляют цитотоксическую активность независимо от наличия МНС. Выявляется высокий уровень экспрессии маркера С058, что свидетельствует о выраженной способности клеток данной популяции к адгезии.
Согласно полученным данным, лимфокин-активированные киллеры способны эффективно лизировать клетки опухолей различного гистогенеза. ЛАК обладают более высокой кил-лерной активностью, чем МЛ периферической крови, по отношению ко всем исследованным линиям трансформированных клеток. В связи с развитием и все более активным внедрением методов адоптивной клеточной биотерапии в клиническую онкологию данные о широком спектре цитотоксичности ЛАК к различным опухолевым линиям имеют значение для расширения области применения ИЛ-2/ЛАК терапии при различных локализациях злокачественных новообразований.
ЛИТЕРАТУРА
1. Давыдов М.И., Нормантович В.А., Киселевский М.В. и др. Адоптивная иммунотерапия при опухолевых плевритах: клиниколабораторное исследование // Российский онкологический журнал. 2000. № 6. С. 14-17.
2. Киселевский М.В. Адоптивная иммунотерапия при злокачественных новообразованиях // Вестник РАМН. 2003. №З.С. 40-44.
3. Лебединская О.В., Халтурина Е.О., Ахматова НК и др. Морфологические и функциональные особенности лимфокин-активированных киллеров, полученных из мононуклеарных клеток периферической крови человека // Морфология. 2005. №1.С. 28-32.
4. Bernsen M.R., Van der VeldenA.W., Everse L.A. et al. Interleukin-2: hope in cases of cisplain-resistant tumours I I Cancer Immunol. Immunother. 1998. Vol. 46. P. 41-47.
5. Berzhnaya N.V., Vinnichuk U.D., Konovalenko V.F., et al. The sensitivity of chemoresistant human tumor explantants to lysis by activated and nonactivated lymphocytes: a pilot study // Exp. Oncol. 2005. Vol. 27. P. 303-307.
6. Falk C.S., Noessner E., Weiss E.H., Schendel D.J. Retaliation against tumor cells shoing abermt HLA expression using lympho-kine activated killer-derived T cells I I Cancer Res. 2002. Vol. 62. P. 480-487.
7. Hayes R.L., Arbit E., Odaimi M. et al. Lymphokine activated killer cells from umbilical cord blood show higher antitumor effect against anaplastic astrocytoma cell line (U87) and medulloblastoma cell line (TE671) than lymphokine activated killer cells from peripheral blood П Crit. Rev. Oncol. Hematol. 2001. Vol. 39. P. 31-42.
8. Liu X., Li D., Zhang C. et al. Treatment of 121 patients with malignant effusion due to advanced lung cancer by intrapleural transfer of autologus or allogenic LAK cells combined with RIL-2 // Med. Sc. J. 1993. Vol. 8.P. 186-189.
9. Rosenberg S.A., Lotze B., Yang J.C. et al. Prospective randomized trial of high dose of IL-2 alone and in conjugation with LAK for treatment of patients with advanced cancer // J. Natl. Cancer Inst. 1993. Vol. 85. P. 662-632.
10. Shiiba K, Suzuki R., Kawakami K. et al. Interleukin-2-activated killer cells: generation in collaboration with interferon and with supressor in cancer patients // Cancer Immunol. Immunother. 1986. Vol.21.P. 119-128.
11. Zheng Y.J. Zhang J.,Wang S.M., Zvang J.B. Morphological observation on NK/LAK cell-mediated lysis of human oral carcinoma cells // Di Yi Jun Yi Da Xue Xue Bao. 2004. Vol. 24. P. 392-396.
Поступила 17.11.06
