CC BY
59
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
ПОЛУЧЕНИЕ АКТИВИРОВАННЫХ ЛИМФОЦИТОВ ИЗ МОНОНУКЛЕАРНЫХ ЛЕЙКОЦИТОВ ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ ЧЕЛОВЕКА ПОД ВОЗДЕЙСТВИЕМ АЛЬФА-ФЕТОПРОТЕИНА
В.А. Черешнев1,0.В. Лебединская2, Н.К. Ахматова3, СЮ. Родионов4, Е.А.
Лебединская2, Т.В. Гаврилова2, А.М. Карамзин5, М.В. Киселевский5
Институт иммунологии и физиологии УрО РАН', г. Екатеринбург ГОУ ВПО «Пермская государственная медицинская академия» МЗ РФ2 ГУ НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова РАМН3, г. Москва Пермский филиал Института иммунологии и физиологии УрО РАН4 Онкологический научный центр ии. Н.Н. Блохина РАМН5, г. Москва
Изучена возможность получения активированных цитотоксических лимфоцитов под воздействием альфа-фетопроте-ина для дальнейшего использования в адоптивной иммунотерапии онкологических и инфекционных заболеваний. Показано, что альфа-фетопротеин повышает функциональную (пролиферативную и цитотоксическую) активность мононукле-арных лейкоцитов (МЛ) периферической крови человека. Усиление цитотоксической активности МЛ под действием альфа-фетопротеина и данные изучения иммунофенотипа свидетельствуют о формировании в культурах субпопуляций цитотоксических лимфоцитов, NK- и NKT-клеток. Основываясь на полученных результатах, представляется возможным применение альфа-фетопротеина, наряду с ИЛ-2, для получения активированных лимфоцитов, которые могут быть использованы в иммунотерапии злокачественных новообразований и инфекционных заболеваний.
OBTAINING OF ACTIVATED LYMPHOCYTES FROM MONONUCLEAR LEUKOCYTES OF HUMAN PERIPHERAL BLOOD UNDER THE ACTION OF ALPHA-PHETOPROTEIN
V.A. Chereshnev', O.V. Lebedinskaya2, N.K. Akhmatova3, S.Yu. Rodionov4, E.A. Lebedinskaya2, T.V. Gavrilova2,
A.M. Karamzin5, M.A. Kiselevskyi5
Institute of Immunology and Physiology', Yekaterinburg Perm State Medical Academy2, Health Ministry ofRF I.I. Mechnikov Research Institute of Vaccine and Serum3, RAMS, Moscov/
Perm Branch of Immunology and Physiology Institute4 N.N. Blokhin Cancer Research Center5, RAMS, Moscow
The feasibility of obtaining the activated cytotoxic lymphocytes under the action of alpha-phetoprotein for their use in adoptive immunotherapy of malignant and infectious diseases was studied. Alpha-phetoprotein was shown to increase the functional (proliferative and cytotoxic) activity of mononuclear leukocytes (ML) of human peripheral blood. The enhancement of cytotoxic activity of ML under the action of alpha-phetoprotein and data on immunophenotype study give the ividence of the formation of cytotoxic lymphocytes, NK and NKT-cells in subpopulation culture. The results of the study show that the use of alpha-phetoprotein seems to be feasible for obtaining the activated lymphocytes which can be used in immunotherapy of malignant and infectious diseases.
Субпопуляция натуральных киллеров (NK), ции (10—15 % от общего количества всех лимфоцитов). представленная большими гранулярными лим- Они лишены характерных для Т- и В-лимфоцитов фоцитами, постоянно присутствует в перифе- поверхностных маркеров. Маркерами NK-клеток рической крови в виде незначительной фрак- служат антигены CD16,
CD56. В адгезионных взаимодействиях с клетками-мишенями наиболее значимым является маркер NK-клеток CD56 [18, 20]. CD 16 играет важную роль в антителозависимой цитотоксичности. По своей природе NK являются цито-токсическими лимфоцитами (ЦТЛ), которые способны уничтожать клетки, зараженные вирусами или внутриклеточными бактериями [14, 17], и опухолевые элементы [2, 15].
В настоящее время одним из путей, направленных на повышение эффективности противоопухолевого и противоинфекционного иммунитета, является экстракорпоральная генерация активированных цитотоксических лимфоцитов, которые используются для целей адоптивной иммунотерапии [2, 16]. Наибольшее применение в клинической практике нашли лимфокин-активированные киллеры (ЛАК) — клетки, генерируемые из мононуклеаров крови (МНК) при инкубации с интерлейкином-2 (ИЛ—2). ЛАК оказывают избирательное цитотоксическое действие на трансформированные и не влияют на нормальные клетки своего организма [2, б, 11, 12]. Однако известно, что киллерная активность лимфоцитов может быть существенно повышена при воздействии различных стимулирующих факторов, в том числе и нецитокиновой природы. Одним из таких агентов может служить альфа-фетопротеин (АФП), который является, как показано в предыдущих исследованиях [7, 9], стимулятором пролиферации и индуктором диф-ференцировки эмбриональных фибробластов.
В связи с этим целью работы явилось исследование возможности получения активированных цитотоксических лимфоцитов из мононуклеарных лейкоцитов периферической крови доноров под воздействием альфа-фетопротеина и изучение морфофункциональных особенностей генерированных клеток.
Материалы и методы
Выделение мононуклеарных лейкоцитов (NL1). МЛ выделяли из стабилизированной гепарином (25 Ед/мл) периферической крови 25 здоровых доноров на одноступенчатом градиенте фикол-ла (Pharmacia, США, плотностью 1,077 г/см3),
центрифугированием при 400 g в течение 30 мин. Мононуклеарные лейкоциты, образовавшие интер фазное кольцо, собирали пипеткой и трехкратно отмывали в среде 199. После каждой отмывки в 10-кратном объеме среды клетки осаждали центрифугированием при 200 g.
Препараты. В работе использован препарат а-фетопротеина человеческого, лиофилизиро-ванного и стабилизированного декстраном производства ЗАО «Институт новых медицинских технологий» (г. Пермь, Россия). Исследуемые дозы - 0,001; 0,01; ОД; 1,0 и 10,0 мкг/мл.
Генерация ЛАК МЛ, выделенные из периферической крови, ресуспендировали в среде RPMI 1640 (ICN, США) с добавлением 10 % эмбриональной телячьей сыворотки (ЭТС), 2 мМ глютамина, стрептомицина с пенициллином по 5000 МЕ/мл в концентрации 1x106 в 1 мл среды. Затем добавляли ИЛ-2 в концентрации 10000 МЕ/мл. Клетки инкубировали при 4,5 % СО, и 37°С в течение 4 сут.
Цитотоксический тест. Цитотоксическую активность мононуклеарных лейкоцитов периферической крови доноров под воздействием а-фетопротеина определяли на НК-чувствитель-ной линии опухолевых клеток К-562. Опухолевые клетки (1х104 в 1 мл) инкубировали в культуральной среде с МЛ, обработанными а-фетопротеином в дозах 0,001; 0,01; 0,1; 1,0 или 10,0 мкг/мл (в соотношениях клетки-мишени/ эффекторы, равных 1:5, 1:2, 1:1 и 1:0,5) в плоскодонных 96-луночных микропланшетах (Costar, Франция) 18 ч. Затем в лунки добавлялся витальный краситель МТТ (Sigma, США) и по оптической плотности, измеряемой на мультискане МСС-340 (Labsystem, Финляндия), рассчитывался процент лизиса опухолевых клеток (процент цитотоксичности).
Оценка пролиферативной активности МЛ. Оценку пролиферативной активности МЛ при действии а-фетопротеина проводили в колориметрическом тесте с использованием витального красителя AlamarBlue (Biosours, США) в стерильных условиях, используя ламинарный бокс с горизонтальным потоком воздуха (Juan VFS 906). Суспензию МЛ, обработанную а-фетопротеи-ном в дозах от 0,01 до 10,0 мкг/мл, в обогащен-
ной среде РПМИ 1640 вносили в 96-луночные планшеты в количестве 10x103 клеток/лунку и инкубировали в течение 4 сут в стандартных условиях культивирования. По окончании инкубации в лунки вносили краситель AlamarBlue (10 %). Флюоресценцию измеряли после четырехчасовой инкубации при 37°С, 5 % СО2 на флюориметре VersaFluor VI3 (Vtocal) при длине волны возбуждения 530-560 нм, эмиссии 590 нм и выражали в условных единицах (у.е.) флюоресценции. Рассчитывали индекс стимуляции (ИС), представляющий собой отношение пролиферативной активности МЛ в отсутствие ос-фетопротеина к пролиферативной активности МЛ при стимуляции (Х-фетопротеином.
Математическая обработка данных пролиферативной активности МЛ. Данные обрабатывали с помощью компьютера по специальной программе, реализующей метод градиентного спуска, и строили экспоненциальные кривые, которые соответствовали уравнению экспоненциальной регрессии с линейным членом [3, 5].
Анализ фенотипа МЛ. Фенотип генерированных клеток исследовали с использованием моноклональных антител (Caltag Laboratories, США) против соответствующих антигенов. Клетки отмывали холодным фосфатно-солевым буфером (ФСБ) и окрашивали FITC (флюорес-циинизотиоционат) и РЕ (фикоэритрин)-мече-ными антителами согласно инструкции производителя. Затем отмывали 2 раза холодным ФСБ. Результаты учитывали на проточном цитометре FacsCalibur (Becton Dickinson, США). На клетках, полученных из мононуклеаров периферической крови доноров, исследовали уровни экспрессии молекул Cd3, CD4, CD8, CD16, CD25, CD38, CD56, CD57, CD58 и HLA-DR. Гейт (окно) популяции клеток устанавливали на основе комбинации прямого и бокового светорассеяния и размера клеток. При учете результатов подсчитывали 10000 клеток в гейте. Статистическая обработка материала проведена при помощи программного пакета WIN MDI 2.8.
Морфогистохимическое исследование. На 4-е сут инкубации МЛ периферической крови в присутствии альфа-фетопротеина из культуральной взвеси были сделаны мазки, которые окраши-
вали на РНК по Браше с контрольной обработкой РНК-азой, эозин-азуром по Романовскому - Гимза, реактивом Шиффа по Шабада-шу с контролем амилазой на гликоген и глико-заминогликаны [4]. В окрашенных по Браше мазках подсчитывали процентное содержание выявляемых клеток. Статистическая обработка данных проводилась с использованием программы «ИПСО» (Россия).
Результаты исследования
Результаты исследования показали, что а-фетопротеин усиливает цитотоксическую активность МЛ периферической крови здоровых доноров по отношению к линии опухолевых клеток К562 (табл. 1). АФП повышает уровень цитотоксической активности МЛ в диапазоне концентраций от 0,01 мкг/мл до 10,0 мкг/мл. При этом не отмечается четкого дозозависимого эффекта, так как и высокие (1,0 и 10,0 мкг/мл), и низкие (0,01 мкг/мл) концентрации АФП почти в равной степени усиливают цитотоксическую активность мононуклеарных лейкоцитов (до 73,2-78,0 %). Однако самой действенной оказалась доза а-фетопротеина 0,1 мкг/мл, при которой цитотоксическая активность МЛ достигает 96,7 %. Лишь самая низкая из испытанных концентраций препарата (0,001 мкг/мл) не влияла на противоопухолевую активность мононуклеарных лейкоцитов периферической крови.
Таблица 1
Влияние <Х-фетопротеина на цитотоксическую активность мононуклеаров периферической крови
здоровых доноров к линии опухолевых клеток
К 562 (п=15)
Концапр адая препарата, мкг/мл Уровень цигогоксичности, %
а-фетопротеин МЛ
100 78,0±4,6* 24,4±3£7
10 73,2±4,1*
1 96,7±4,1 **
0,1 77,3±3,9*
0,01 24,7±2,6
Примечание\ достоверность различий между контрольной (МЛ) и экспериментальными группами; * - р <0,05; ** -/><0,01.
Показатели цитотоксической активности МЛ, активированных ИЛ-2 (ЛАК), были несколько ниже по сравнению с полученными в опытах с СС-фетопротеином.
Как следует из данных, представленных в табл. 2, АФП оказывает выраженное митогенное действие на МЛ здоровых доноров. Относительное количество бластных форм в культурах в зависимости от дозы препарата повышается в 3— 7 раз по сравнению с контрольной группой. Индекс стимуляции пролиферативной активности МЛ увеличивается соответственно от 3,2 (при концентрации 0,01 мкг/мл) до 6,9 (при концентрации 10,0 мкг/мл). В данных условиях 97-98 % МЛ сохраняли жизнеспособность.
Исследование иммунофенотипа клеток, генерированных из МЛ с помощью АФП, позволило установить, что они зкспрессируют на своей мембране активационные антигены (СБ38 и НЬЛБЯ). Мононуклеарные лейкоциты, активированные АФП, характеризовались также высоким уровнем экспрессии маркеров НК (СБ56, СБ16) и увеличенным процентным содержанием СБ8+ клеток по сравнению с интактными МЛ. Результаты экспериментов показали также умеренное повышение (по сравнению с контрольной серией) количества СБ3+ и СБ4+ Т-клеток в популяции а-фетопротеинактивиро-ванных мононуклеарных лейкоцитов периферической крови (рис. 1).
Таблица 2
Влияние (Х-фетопротенна на пролиферативную активность и митогенез мононуклеарных лейкоцитов здоровых доноров (п=15)
Условия КуЛЬТИ8Ц)ОВВНИЯ Властные формы, у.е М±т Индекс стимуляции, М±т Жизнеспособные клетки, % М±т
Контроль - 0,095*0.02 - 98,0*0,5
а-фето- протеин мкг/мл 100 0,655*0,05** 6,9 96,9*0,6
10 0,517*0,04** 5,4 97,5*0,8
1 0,510*0,07** 5,4 98,0*2,5
0,1 0,309*0,03* зд 98,0*2,4
Примечание, достоверность различий между контрольной (МЛ) и экспериментальными группами - * р <0,05; ’* ¿<0,01
Морфогистохимические исследования показали, что МЛ, активированные а-фетопротеи-ном, представляют собой крупные клетки лимфоидного ряда типа иммунобластов и пролимфоцитов с базофильно окрашенной и содержащей пиронинофильный компонент цитоплазмой (рис. 2А). Сохранение яркой пиронинофи-лии в цитоплазме и ядрышках клеток после обработки препаратов РНК-зой свидетельствует о наличии в них повышенного количества РНК. При фазовоконтрастной микроскопии в культурах определяются многочисленные колонии крупных клеток округлой формы с круглым ядром и широким ободком цитоплазмы (рис. 2Б).
Обсуждение
Таким образом, в результате наших исследований выявлено, что а-фетопротеин в значительной степени повышает функциональную активность мононуклеарных лейкоцитов периферической крови человека. Довольно высокий уровень цитотоксической активности МЛ, возникающий при инкубации их с ОС-фетопротеи-ном, обусловлен, очевидно, одновременной индукцией под его воздействием и ЦТЛ (СБ8+), и КК-клеток (СБ56+ и СБ16+). Активация мЛ под действием АФП подтверждается также усилением экспрессии дифференцировочных, ко-стимулирующих и адгезивных молекул (СБ38, СБ56, СБ58, НЬЛ-БЯ) на их поверхности.
В настоящее время имеются данные о существовании в популяции активированных лимфоцитов также ККТ-клеток [10, 11,15], экспрессирующих не только маркеры НК (СБ16+, СБ56+), но и Т-клеточные дифференцировочные антигены (СБ3, СБ4, СБ 8) [8]. Эта субпопуляция лимфоцитов обнаруживается в основном в пораженных опухолевым или инфекционным процессом органах — печени и легких — и практически отсутствует в периферической крови. По своей спонтанной киллерной активности ККТ значительно превышают МЛ. Весьма вероятно, что активированные ос-фетопротеином клетки, экспрессирующие одновременно маркеры ЦТЛ и КК, представляют собой ККТ-клетки. При
СИБИРСКИЙ ОНКОЛОГИЧЕСКИЙ ЖУPHAЛ. 2005. №1 (13)
этом содержание СБ8 + , СБ16 + , СБ38 + , СБ56+, НЬЛ-БЯ+ клеток при инкубации МЛ с ОС-фетопротеином повышается в 2—6 раз по сравнению с контролем.
Нарастание соотношения количества клеток СБ4+/СБ8+, являющегося одним из ключевых параметров иммунограммы, в эксперименте с АФП с 0,3 до 1,3 также свидетельствует об интенсивности активации иммунного процесса [1,13,19].
Проведенные исследования показали, что появление в культурах, активированных СС-фе-топротеином, большого числа клеток, характеризующихся функционально и иммунофенотипически как МК-клетки и цитотоксические лимфоциты, сопровождается усилением пролиферативного потенциала МЛ, что подтверждается данными морфогистохимических исследований. В культуральной взвеси МЛ, активированных а-фетопротеином, при фазовоконтрастной микроскопии выявляются колонии типичных бластных форм, а в мазках — клетки типа имму-нобластов, пролимфоцитов и активированных лимфоцитов с повышенным содержанием РНК в цитоплазме и ядрышках.
Таким образом, в результате проведенных экспериментов установлено, что а-фетопроте-ин обладает способностью активировать МЛ
крови человека с образованием клеток, характеризующихся высокой противоопухолевой цитотоксической и пролиферативной активностью. Эти данные свидетельствуют о целесообразности использования ОС-фетопротеина для экстракорпоральной генерации активированных лимфоцитов, которые могут быть использованы в иммунотерапии злокачественных новообразований и инфекционных заболеваний.
Литература
1. БарышниковА.Ю., ШишкинЮ.В. Иммунологичес кие проблемы апоптоза. М.: Эдиториал. УРСС, 2002. С. 51.
2. Давыдов М.И., Нормантович В.А., Киселевский М.В., Волков СМ. Адоптивная иммунотерапия при опу холевых плевритах: клинико-лабораторное исследование // Российский онкологический журнал. 2000. № 6. С. 14—17.
3. Лебединская О.В., Оленев В.А. Исследование эф фективности колониеобразования методом компьютерного моделирования//Пермский мед. журнал. 1999. Т. 15, № 1. С. 11-13.
4. Лилли Р. Патогистологическая техника и практи ческая гистохимия. М.: Мир, 1969. С. 128-131.
5. Носач В.В. Решение задач аппроксимации с помо щью персональных компьютеров. М.: МИКАП, 1994. С. 382.
СИБИРСКИЙ ОНКОЛОГИЧЕСКИЙ ЖУРНАЛ. 2005. №1 (13)
6. Пальцев М.А. Введение в молекулярную медицину / Под ред. М.А. Пальцева. М.: ОАО «Издательство «Ме дицина», 2004. 496 с.
7. ЧерешневВ.А., Родионов СЮ., ЧеркасовВ.А. идр. Альфа-фетопротеин. Екатеринбург: УрО РАН, 2004. 376 с.
8. Carlens S., Gilljam M, Chambers B.J. et al. Anew method for in vitro expansion of cytotoxic human CD3-CD56+ natural killer cells // Hum. Immunol. 2001. Vol. 62, №4. P. 1092-1098.
9. Dudich E.I., Semenkova L.N., Dudich I. V. et al. Alpha-fetoprotein-induced apoptosis of cancer cells // Bull. Biol. Med. 2000. Vol. 130, № 12. P. 1127-1133.
10. Emoto M, Kaufmann S.H. LiverNKT cells: an account of heterogeneity //Trends Immunology. 2003. Vol. 24, № 7. P. 364-369.
11. Folk C.S., Noessner E., Weiss E.H., Schendel D.J. Retaliation against tumor cells shooing aberrant HLA expression using lymphokine activated killer-derived T cells // Cancer Res. 2002. Vol. 62, № 5. P. 480л87.
12. Hayes R., Arbit E., Odaimi M. Lymphokine activated killer cells from umbilical cord blood show higher antitumor effect against anaplastic astrocytoma cell line (U87) and medulloblastoma cell line (TE671) than lymphokine activated killer cells from peripheral blood // Crit. Rev. Oncol. Hematol. 2001. Vol. 39. P. 31-42.
13. Hohlbaum A.M., Мое S., Marshak-Rothstein A. Opposing effects of transmembrane and Soluble Fas Ligand expression on inflammation and tumor cell survival // J. Exp. Med. 2000. Vol. 191. P. 1209-1219.
14. Hook С, TetyatnikovaN., GoodallJ. etal. Effects of Chlamydia trachomatis infection on the expression of natural killer (NK) cell ligands and susceptibility to NK cell lysis // Clin. Exp. Immunol. 2004. Vol. 138, № 1. P. 54-60.
15. Ikeda H., Chamoto K., Tsuji T. et al. The critical role of type—1 innate and acquired immunity in tumor immunotherapy// Cancer Sci. 2004. Vol. 95, № 9. P. 697-703.
16. Liu X.. LiD., Zhang С et al. Treatment of 121 patients with malignant effusion due to advanced lung cancer by intrapleural transfer of autologus or allogenic LAK cells combined with RIL-2// Med. Sc.J. 1993. Vol. 8.P. 186-189.
17. Mullbacher A. Cell-mediated cytotoxicity in recovery from poxvirus infections // Rev. Med. Virol. 2003. Vol. 13, №4. P. 223-232.
\%>.NarazonaR., CasadoJ., DelarosaO. etal. Selective depletion of CD56(dim) NK cell subsets and maintenance of CD56(bright) NK cells in treatment-naive HIV-1 -seropositive individuals// J. Clin. Immunol. 2002. Vol. 22, № 3. P. 176-183.
19. Sibiryak S., Muldashev E., Selsky N.. Yusupova R.
Fas (APO-1/CD95) antigen expression on the peripherial blood lymphocytes (PBL) in different disease states // 4th World cong. Inflammation. Paris, 1999. P. 245.
20. Taga K., YamauchiA., Bloom E. Target cell-induced apoptosis in IL-2-activated human natural killer cells // Leuk. Lymphoma. 1999. Vol. 32, № 5. P. 451-458.
Поступила 19.01.05 I
