CC BY
480
ПЕДИАТРИЧЕСКИЙ ВЕСТНИК ЮЖНОГО УРАЛА
71
ПРИМЕНЕНИЕ РЕНТГЕНОВСКОГО ОБЛУЧЕНИЯ КОМПОНЕНТОВ КРОВИ С ЦЕЛЬЮ ПРОФИЛАКТИКИ РАЗВИТИЯ ПОСТТРАНСФУЗИОННОЙ РЕАКЦИИ "ТРАНСЛАНТАТ-ПРОТИВ-ХОЗЯИНА"
Казачкова А.Е., Спичак И.И., Жуковская Е.В.
ГБУЗ «Челябинская областная детская клиническая больница»
Трансфузиология как наука постоянно совершенствует меры биологической безопасности трансфузионных сред. Переливание компонентов крови в настоящее время расценивается как «операция трансплантации» со всеми возможными реакциями и осложнениями: от аллергической и пирогенной реакций до посттрансфузион-ной реакции «трансплантат-против-хозяина» (п-РТПХ).
Более чем 66% населения планеты не имеют доступа к безопасной крови. Большинство развивающихся стран не производит скрининг донорской крови, потому что технология сложна, дорога и/или доля зараженных людей в популяции настолько высока, что биологически безопасной может оказаться очень небольшая часть донорской крови. Ежегодно переливания крови в странах третьего мира приводят к 8-16 миллионам случаев НВЧ 4-7 миллионам случаев НС^ 80 -160 тысячам случаев ВИЧ-инфекции.
Всем известны уже существующие меры повышения качества и безопасности трансфузионных сред. Среди них отбор и скрининг доноров, несколько методов инактивации биологических агентов: осаждение, центрифугирование, фильтрация, пастеризация, хроматография, сольвент-детергентная и температурная инактивация, обработка метиленовым синим, использование псораленов, рибофлавина, S-303 (НеПпх), РЕЖ10, лейкодеплеция и облучение компонентов крови. Лейкодеплеция не является единственным универсальным методом предотвращения нежелательных последствий гемотрансфузии на организм реципиента, но позволяет удалить значительное количество лейкоцитов, которые являются резервуаром для вирусов и бактерий. При этом в гемотрансфузионных средах всегда сохраняется остаточное количество лейкоцитов. Они представлены лимфоцитами, способными вызывать клинически значимые посттрансфузионные реакции «трансплантат против хозяина» (РТПХ). В основном случаи развития этого осложнения описаны у иммунологически скомпрометированных пациентов, также в литературе имеются сообщения о развитии этого грозного осложнения у пациентов, у которых не было оснований подозревать иммунодефицит [1]. Высокий интерес к
п-РТПХ, несмотря на редкость, обусловлен чрезвычайно высокой опасностью смертельного исхода (от 80 до 90%), несмотря на проведение современной терапии [2]. Общепризнанным на сегодняшний день является положение о том, что "лучшим методом лечения п-РТПХ остается профилактика".
Цель - определить степень биологической безопасности применения рентгеновского облучения гемокомпонентов для иммунокомпромити-рованных пациентов.
Задачи исследования:
- изучить воздействие рентгеновского облучения на клеточные структуры компонентов крови;
- апробировать и внедрить методику пред-трансфузионного рентгеновского облучения клеточных компонентов крови в целях профилактики клинически значимой посттрансфузионной РТПХ у иммунокомпромитированных пациентов, разработать индикативный тест контроля эффективности метода.
Материалы и методы
Объектами проводимого исследования являются: цельная кровь, компоненты крови, им-мунокомпромитированные пациенты.
В качестве компонентов донорской крови используются трансфузионные среды, которые традиционно производятся на Челябинской областной станции переливания крови (ЧОСПК). Проводился сравнительный анализ клинических и биохимических показателей крови: АЛТ, АСТ, кре-атинин, мочевина, билирубин и его фракции, глюкоза, электролиты крови, общий белок и его фракции, свободный гемоглобин, лейкоциты, особенно Т-лимфоциты, эритроциты, тромбоциты.
Для исследования используется облучатель RadGil (Gilardoni, Италия), который является промышленной рентгеновской установкой, предназначенной для облучения компонентов и препаратов крови. Применяется режим облучения СОД 25 Грей в течение 30 минут.
Результаты и обсуждение
Единственным методом снижения риска РТПХ в настоящее время является рентгеновское облучение компонентов крови в суммарной облученной дозе (СОД) 25-30 Грей в течение 25 ми-
72
Информационно-аналитический журнал, ноябрь, 2012, № 1
нут, при этом происходит блок пролиферации лимфоцитов (эффект гибели облученной клетки при делении), но функции других клеток крови сохраняются. Облучению подлежат эритроцитсодержа-щие трансфузионные среды [3]. При этом облучение вызывает возникновение дефектов мембраны эритроцитов, приводящих к медленной утечке калия и гемоглобина (уровень калия сначала увеличивается в 2 раза, но к 4-5 дню хранения нормализуется), уровни рН, глюкозы, АТФ, АДФ и свободного гемоглобина существенно не меняются, а срок годности эритроцитов после облучения составляет 28 суток. Облучение считается нецелесообразным для бесклеточных гемотранс-фузионных средств, хотя известно, что удаление лимфоцитов фильтрацией недостаточно.
Известно, что промышленная стерилизация медицинских одноразовых изделий считается завершенной после гамма-облучения в дозе 25 Грей. Логично предположить, что и гемокомпо-ненты после облучения аналогичной дозой могут стать стерильными, но исследований выживаемости бактерий и вирусов в гемокультурах после облучения пока не опубликовано [4, 5]. Таким образом, облучение компонентов крови - еще одна из мер на пути повышения биологической безопасности их реципиентов.
Выводы
Предварительные результаты нашего исследования косвенно доказывают развитие мембранных дефектов эритроцитов в результате воздействия рентгеновского облучения, проявляющееся в достоверном изменении показателей биохимических параметров электролитного баланса: калий, кальций, натрий, хлор. Данное явление приходящее, к 4-5 дню хранения облученной эритроцитной массы электролитный состав восстанавливается. Выявлено отклонение показателей АЛТ, АСТ, креатинина, билирубина за счет непрямой фракции, которое является недостоверным. По литературным данным, уровни рН, глюкозы, АТФ, АДФ и свободного НВ существенно не меняются. Гамма-облучение свежезамороженной плазмы (СЗП) в дозе 30 Грей вызывает значимую, но слабую активацию фибринолитической системы и свертывания в СЗП (Weisbah V, Germany), поэтому нецелесообразно.
Таким образом, рентгеновское облучение в режиме СОД 25 Грей за 30 минут для профилактики развития п-РТПХ у иммунокомпромитирован-ных больных можно считать безопасным по биохимическим параметрам методом.
Литература
1. Жибурт, Е.Б. О риске гемотрансфузий и пользе лейкофильтрации / Е.Б. Жибурт // Медицинская газета. - 2005. - № 92. - C. 25-27.
2. Жибурт, Е.Б. Инфекционная безопасность гемотрансфузионной терапии / Е.Б. Жибурт, В.В. Данильченко, С.В. Сидоркевич. - М., 1997. - Информационный бюллетень Новое в трансфузиологии. Вып. 17.
3. Moreira, O.C. Effects of gamma-irradiation on the membrane ATPases of human erythrocytes from transfusional blood concentrates / O.C. Moreira, V.H. Oliveira, L.B. Benedicto // Instituto de Bioquнmica Mйdica, Brasil, 2004.
4. Weisbach, V. Effect of gamma irradiation with 30 Gy on the coagulation system in leukoreduced fresh-frozen plasma / V. Weisbach, J. Strobel, B. Hahn, F. Rцdel et al. // Department of Transfusion Medicine and Hemostaseology, Friedrich-Alexander-University Erlangen-№rnberg, Erlangen, Germany, 2005 volker. weisbach @ trans. imed. uni-erlangen.de.
5. Bojaniж, I. Transfusion-associated graft-versus-host disease / I. Bojaniж, B.G. Cepu^ // Lijec. Vjesn. - 2004. - Vol. 126, № 1-2. - P. 39-47.
МЕДИЦИНСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ ПУЛЬМОЗИМА У ДЕТЕЙ, БОЛЬНЫХ МУКОВИСЦИДОЗОМ, НА ТЕРРИТОРИИ ЧЕЛЯБИНСКОЙ ОБЛАСТИ
Каримова И.П.
ГБУЗ «Челябинская областная детская клиническая больница»
Актуальность. Совершенствование оказа- ном уровнях в современных условиях (включения специализированной помощи больным муко- ние данной нозологии в перечень наследствен-висцидозом (МВ) на федеральном и региональ- ных заболеваний, подлежащих обязательному
