CC BY
10
EVALUATION OF BREEDING BULLS WITH DIFFERENT GENOTYPES OF SOMATOTROPIN CASCADE GENES FOR MILK PRODUCTIVITY AND MILK QUALITY OF THE
CLOSEST FEMALE ANCESTORS
Zagidullin L.R., Gilemhanov I.Yu., Zaripov R.U., Ahmetov T.M., Lamara Mohammed,
Tyulkin S.V.
Summary
A preliminary evaluation towards a breeding value of holstinized Black-and-White breed bulls with different genotypes of somatotropin cascade genes is presented: pituitary transcription factor or growth hormone factor (PIT1), prolactin (PRL), somatotropin (GH), somatotropin releasing hormone (GHRH), insulin-like (IGF-1) in the conditions of the Republic of Tatarstan. The research studies the signs (indices) of milk productivity (milk yield and fat in milk) of the closest female ancestors of bulls with different genotypes of somatotropin cascade genes. Studies and analysis have shown that the highest rating by origin, based on the pedigree index of bull, were bulls with genotypes PIT1/AB, PRL/AA, GH/LL, GHRH/АВ, IGF1/AA (by milk yield) и PIT1/AA, PRL/AB, GH/LV, GHRH/BB, IGF1/BB (by fat content) in comparison with analogues of other genotypes.
DOI 10.31588/2413-4201-1883-244-4-92-97 УДК 619:631.453:615
ОЦЕНКА ХРОНИЧЕСКОЙ ТОКСИЧНОСТИ КОМПОЗИЦИИ ЛЕЧЕБНЫХ СРЕДСТВ ДЛЯ УСТРАНЕНИЯ ПОСЛЕДСТВИЙ ТОКСИКОЗОВ
Идиятов И.И. - к.б.н., Домбровский В.О. - аспирант, Ларина Ю.В. - к.б.н.,
Алеев Д.В. - к.б.н., Егоров В.И. - к.б.н.
ФГБНУ «Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности»
Ключевые слова: композиция, хроническая токсичность, белые крысы
Keywords: composition, chronic toxicity, white rats
В связи с интенсификацией производства и совершенствованием технологических процессов в животноводческой отрасли возрастает риск возникновения несоответствия между физиологическими возможностями организма животных и существующими условиями их кормления. Наличие в кормах посторонних химических и токсических агентов в сочетании с общей несбалансированностью рационов приводит к развитию эндогенного и экзогенного токсикозов в организме, которые запускают механизм возникновения многих заболеваний, в первую очередь, патологий печени, с которой связано большинство обменных процессов организма [2, 7, 11]. Для снижения негативных последствий перечисленных факторов необходимо использовать эффективные препараты и кормовые добавки, предназначенные для
связывания в желудочно-кишечном тракте и выведения из организма животных токсичных веществ, бактериальных токсинов, токсичных продуктов метаболизма, продуктов гниения и так далее. Однако устранение основных причин, способствующих возникновению и развитию патологий ге-патобилиарной системы, недостаточно для восстановления физиологических функций печени [4, 6]. На этом фоне необходимо проведение патогенетической терапии, направленной на адекватную фармакологическую коррекцию с помощью лекарственных средств, улучшающих метаболические процессы в печени, повышающих ее устойчивость к патогенным воздействиям, способствующие восстановлению ее функций [4, 6, 7, 10].
В патогенезе заболеваний печени имеют место различные патологические
процессы в зависимости от причины заболевания, условий содержания и особенностей организма [1, 10]. Представляется рациональным применение комплексных средств, влияющих на различные патологические процессы и сочетающих в себе различные гепатопротективные вещества [10]. Поэтому разработка средств для устранения последствий токсикозов, патологии печени и коррекции обмена веществ имеет актуальность.
Целью работы явилось выявление токсического действия на организм лабораторных животных при продолжительном применении комплексного средства для устранения последствий токсикозов, гепа-топротекции и коррекции обмена веществ.
Материал и методы исследований. Исследования проведены в отделении токсикологии ФГБНУ «ФЦТРБ-ВНИВИ», в соответствии с руководством по проведению доклинических исследований лекарственных средств [8].
По результатам первичного отбора компонентов средства для устранения последствий токсикозов, гепатопротекции и коррекции обмена веществ был сформирован комплекс, включающий холин хлорид, янтарную кислоту, ксимедон, сорбитол, суспензию молочно- и пропионовокислых микроорганизмов [3, 9, 12].
Изучение хронической токсичности препарата проводили на 30 белых крысах обоего пола живой массой 120-140 г, разделенных по принципу аналогов на 3 группы по 10 голов в каждой. Первая группа служила контролем и получала привычный рацион, вторая и третья - рацион с препаратом в дозе 1/50 и 1/20 от максимально вводимой (0,04 и 0,1 г/кг), соответственно, ежедневно в течение 60 дней. Экспериментальные животные находились в одинаковых условиях кормления и содержания с соблюдением санитарно-гигиенических требований.
О степени токсичности препарата судили по общему состоянию животных, динамике массы тела, изменениям показателей периферической крови [5], результатам патологоанатомического исследования. Статистическую обработку полученного цифрового материала осуществляли
методом вариационной статистики с применением программы Microsoft Excel и критерия достоверности Стьюдента. Разница между сравниваемыми величинами считалась достоверной при p < 0,05.
Результаты исследований. В ходе опыта выявили, что у животных всех групп общее клиническое состояние было удовлетворительным, сохранялась двигательная активность, отсутствовали признаки повышенной возбудимости. Крысы спокойно перемещались по клетке. Как контрольные, так и опытные животные реагировали на световые и звуковые раздражители. Гибели животных и признаков интоксикации зарегистрировано не было. Крысы имели свободный доступ к корму и воде, пищевая возбудимость у животных не нарушалась.
Живая масса животных в течение эксперимента увеличивалась, как в контрольной, так и в опытных группах (Таблица 1). Прирост живой массы крыс во второй группе к 20 дням опыта составил 29,5 г, в третьей - 26,7 г, против 21,83 г в контрольной группе. Среднесуточные приросты массы тела составили, соответственно, 1,48; 1,33 и 1,09 г. Таким образом, увеличение живой массы относительно исходных показателей за 20 дней опыта у животных второй группы составило 22,7 %, третьей - 20,8 %, биологического контроля - 17,1 %.
Прирост массы на 40 день эксперимента во второй группе был 18,9 г, в третьей - 22,7 г, контрольной группе - 18,7 г, среднесуточные приросты массы тела составили 0,95; 1,14 и 0,94 г, соответственно. Живая масса у подопытных животных относительно исходных данных возросла во второй группе на 37,2 %; третьей - на 38,5 %, в группе контроля - на 31,7 %.
На 60 день опыта прирост массы у крыс второй группы составил 28,8 г, третьей - 28,2, в группе контроля - 22,9 г, среднесуточные приросты были на уровне 1,44; 1,41 и 1,15 г, соответственно. Таким образом, живая масса животных относительно исходных значений возросла на 59,4; 60,6 и 49,7 %. Абсолютный прирост живой массы за опыт во второй группе составил 77,2 г, в третьей - 77,5 г, что больше кон-
троля на 21,8 и 22,2 %, соответственно. Полученные данные свидетельствуют о том, что препарат оказывал некоторое ро-стостимулирующее действие. При исследовании общепринятыми методами гематологических параметров крови было установлено, что концентрация эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина у крыс
опытных групп была несколько выше контрольных значений, однако не имела с ними достоверных отличий (Таблица 2).
Результаты, представленные в таблице, свидетельствуют о наличии некоторого благоприятного влияния препарата на гемопоез.
Группа Масса тела по дням наблюдения, г
начало 20 сут 40 сут 60 сут
1. Контроль 127,67±3,18 149,50±1,95 168,17±2,61 191,10±1,91
2. Препарат в дозе 0,04 г/кг ЖМ 130,00±2,65 159,50±1,65* 178,40±2,35* 207,20±2,65*
3. Препарат в дозе 0,1 г/кг ЖМ 128,00±3,50 154,67±2,43 177,33±1,67* 205,51±2,59*
Таблица 1 - Динамика массы тела белых крыс при введении в рацион препарата, п=10
Примечание: *- р < 0,05
Таблица 2 - Гематологические показатели крыс при введении в рацион препарата, п=10
Период, дни Группа Показатель
эритроциты, х1012/л лейкоциты, х109/л гемоглобин, г/л
20 1. Контроль 7,59±0,10 14,78±0,49 161,20±3,11
2. Препарат в дозе 0,04 г/кг ЖМ 7,67±0,12 15,03±0,57 167,40±1,86
3. Препарат в дозе 0,1 г/кг ЖМ 7,43±0,09 16,09±0,51 159,80±2,48
40 1. Контроль 7,63±0,29 14,57±0,50 162,33±2,26
2. Препарат в дозе 0,04 г/кг ЖМ 7,67±0,08 14,86±0,39 166,67±3,31
3. Препарат в дозе 0,1 г/кг ЖМ 7,91±0,25 14,67±0,53 164,33±2,82
60 1. Контроль 7,43±0,53 15,58±0,57 158,17±3,41
2. Препарат в дозе 0,04 г/кг ЖМ 7,78±0,58 14,93±0,33 167,83±1,56
3. Препарат в дозе 0,1 г/кг ЖМ 7,40±0,49 14,33±0,66 166,50±2,97
Примечание: *- р < 0,05
Изучение биохимических показателей сыворотки крови позволяет с высокой достоверностью определять нарушения обмена веществ, скрыто протекающие в организме. Так, содержание общего белка в сыворотке крови крыс второй и третьей групп превышало контрольные значения на 20 сутки опыта, соответственно, на 6,4 и
3,4 %, на 40 сутки - 6,4 и 8,7 %, на 60 - на 8,2 и 10,4 % (Таблица 3). Процентное содержание фракций альбуминов и глобулинов в сыворотке крови животных опытных групп не имело достоверных отличий с контрольными значениями. Результаты исследования активности ферментов в сыворотке крови крыс при введении в рацион
препарата показали незначительное пре- та была выше, соответственно, на 3,2 и
вышение в сравнении с контролем. Так, 4,6 %, на 40 - 3,9 и 5,5 %, 60 сутки - на 3,0 активность аланинаминотрансферазы во и 4,4 %.
второй и третьей группах на 20 сутки опы-
Таблица 3 - Биохимические показатели сыворотки крови крыс при введении в рацион препа-
рата, n=10
Период, дни Группа Показатель
общий белок, г/л фракции белка, %
альбумины а-глобулины ß-глобулины у-глобулины
20 1 69,33±3,04 41,70± 1,11 17,97±0,47 13,83±0,04 26,53±0,90
2 73,80±4,65 41,97±2,67 18,07±0,71 13,60±0,90 27,03±0,47
3 71,67±3,19 41,83± 1,13 17,73±0,33 13,50±0,49 26,93±0,72
40 1 67,33±2,08 39,77±0,60 18,30±0,39 13,43±0,25 28,50±0,32
2 71,67±1,33 40,53±1,43 18,17±0,64 13,67±0,18 27,63±0,86
3 73,20±2,42* 39,00±0,86 18,37±0,32 14,53±0,61 28,10±0,07
60 1 70,67±3,49 40,20±0,55 18,17±0,55 13,73±0,36 27,90±0,49
2 76,50±2,65* 40,57±1,43 17,83±1,03 14,00±0,35 27,93±0,43
3 78,00±1,85* 40,37±0,29 16,97±0,89 14,47±0,35 28,20±0,49
Примечание: *- р < 0,05
Полученные данные указывают на проявление препаратом стимулирующего обмен веществ действия. По завершению эксперимента провели эвтаназию и вскрытие крыс подопытных групп, макроскопическое исследование внутренних органов не выявило каких-либо патологических изменений и отличий от контроля.
Заключение. В результате проведенных исследований было установлено, что композиция, включающая холин хлорид, янтарную кислоту, ксимедон, сорби-тол, суспензию молочно- и пропионово-кислых микроорганизмов, и рекомендуемая для устранения последствий токсикозов животных, гепатопротекции и коррекции обмена веществ при продолжительном применении не вызывает явных клинических признаков токсикоза и не оказывает на организм лабораторных животных негативного воздействия.
ЛИТЕРАТУРА
1. Байматов, В.Н. Влияние продуктов переработки расторопши пятнистой на организм животных / В.Н. Байматов [и др.] // Ветеринария и кормление. - 2016. - № 1. - С. 14-17.
2. Дударев, А.А. Фармако-токсикологические свойства гепатопротек-тора Диронакс: автореф. дисс. ... канд. биол. наук: / А.А. Дударев. - Краснодар, 2014. - 24 с.
3. Идиятов, И.И. Оценка воздействия пробиотических штаммов на инфузории / И.И. Идиятов, С.Р. Хабирова,
A.М. Тремасова [и др.] // Ветеринарный врач. - 2020. - № 3. - С. 12-16.
4. Климов, П.В. Изучение влияния комплексного препарата гепатовет на функциональную и регенераторную активность печени мышей / П.В. Климов // Ветеринарный врач. - 2013. - № 2. - С. 31-33.
5. Кондрахин, И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики / И.П. Кондрахин. - М.: Издательство «Колос», 2004. - 520 с.
6. Коновалова, В.В. Сравнительная оценка гепатопротекторной активности препаратов гептрал, липотон и гамавит /
B.В. Коновалова [и др.] // Ветеринарный врач. - 2014. - №. 2. - С. 11-15.
7. Кузьминова, Е.В. Перспективы расширения спектра применения гепато-протекторов в ветеринарии / Е.В. Кузьми-
нова [и др.] // Научный журнал КубГАУ. -2014. - № 102. - С. 787-797.
8. Миронов, А.Н. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Часть первая. / А.Н. Миронов [и др.]. - М.: Гриф и К, 2012. - 944 с.
9. Портнов, О.В. Влияние биологически активных кормовых добавок на росто-весовые параметры и биохимические показатели сыворотки крови цыплят-бройлеров / О.В. Портнов, Э.К. Папуниди, И.И. Идиятов, Г.Ш. Закирова // Ветеринарный врач. - 2014. - № 6. - С. 56-59.
10. Сулайманова, Г.В. Патогенетические механизмы гепатотоксичности лекарственных препаратов у плотоядных /
Г.В. Сулайманова [и др.] // Вестник Крас-ГАУ. - 2018. - № 3 (138). - С. 45-48.
11. Танасева, С.А Изучение эффективности применения гепатопротектора «Гептрал» и сорбента «БАУ-А» при отравлении свиней афлатоксином В 1 / С.А Танасева [и др.] // Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. - 2016. -№. 3. - С. 93-99.
12. Тремасова, А.М. Токсикологическая оценка консорциума микроорганизмов для использования с целью повышения качества кормов / А.М. Тремасова, И.И. Идиятов, Ю.М. Тремасов, А.И. Еро-шин // Вестник Марийского государственного университета. - 2020. - № 3. - С. 2127.
ОЦЕНКА ХРОНИЧЕСКОЙ ТОКСИЧНОСТИ КОМПОЗИЦИИ ЛЕЧЕБНЫХ СРЕДСТВ ДЛЯ
УСТРАНЕНИЯ ПОСЛЕДСТВИЙ ТОКСИКОЗОВ
Идиятов И.И., Домбровский В.О., Ларина Ю.В., Алеев Д.В., Егоров В.И.
Резюме
В статье представлены результаты изучения хронической токсичности комплекса лечебных средств для устранения последствий токсикозов животных, гепатопротекции и коррекции обмена веществ, включающего холин хлорид, янтарную кислоту, ксимедон, сорби-тол, суспензию молочно- и пропионовокислых микроорганизмов. Препарат задавали белым крысам с кормом в дозах 1/50 и 1/20 от максимально вводимой (0,04 и 0,1 г/кг живой массы) в течение 60 дней. Проводили оценку клинических, росто-весовых, гематологических, биохимических и патоморфологических параметров. Было установлено, что исследуемый препарат при длительном введении не вызывает признаков токсикоза, не оказывает на организм лабораторных животных негативного воздействия. Абсолютный прирост живой массы за опыт в опытных группах был больше контроля на 21,8 и 22,2%, соответственно, препарат оказывал некоторое ростостимулирующее действие. Анализ крови показал, что значения исследуемых параметров были несколько выше контрольных значений, и свидетельствовал о наличии благоприятного влияния препарата на гемопоез и обменные процессы. При макроскопическом исследовании внутренних органов патологических изменений выявлено не было.
ASSESSMENT OF THE CHRONIC TOXICITY OF THE COMPOSITION OF MEDICINES TO ELIMINATE THE CONSEQUENCES OF TOXICOSIS
Idiyatov I.I., Dombrovskiy V.O., Larina Y.V., Aleev D.V., Egorov V.I.
Summary
The article presents the results of studying the chronic toxicity of a complex of therapeutic agents for eliminating the consequences of animal toxicosis, hepatoprotection and metabolic correction, including choline chloride, succinic acid, xymedon, sorbitol, a suspension of lactic and propionic acid microorganisms. The drug was administered to white rats with food at doses of 1/50 and 1/20 of the maximum input (0.04 and 0.1 g / kg of live weight) for 60 days. Clinical, growth-weight, hematological, biochemical and pathomorphological parameters were assessed. It was found that the study drug with prolonged administration does not cause signs of toxicosis, does not have a negative effect on the organism of laboratory animals. The absolute gain in live weight over the experience in the experimental groups was 21.8 and 22.2 % more than the control, respectively, the drug had some growth-stimulating effect. A blood test showed that the values of the studied parameters were slightly higher than the control values, and indicated the presence of a favorable effect of the drug on hematopoiesis and metabolic processes. Macroscopic examination of internal organs showed no pathological changes.
DOI 10.31588/2413-4201-1883-244-4-97-100 УДК 619:616
СРАВНИТЕЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА КОМПЬЮТЕРНОЙ И МАГНИТНО-РЕЗОНАНСНОЙ ТОМОГРАФИИ ПРИ ДИАГНОСТИКЕ СПИНАЛЬНЫХ НОВООБРАЗОВАНИЙ У МЕЛКИХ ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ
Козлов Н.А. - д.в.н., профессор, Быковская Т.А. - аспирант
ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА им. К.И. Скрябина»
Ключевые слова: спинальное новообразование, позвоночный столб, спинной мозг, КТ, МРТ
Keywords: spinal neoplasia, vertebral column, spinal cord, CT, MRI
По данным наших исследований, спинальные новообразования у мелких домашних животных составляют 10 % от всех неврологических патологий позвоночного столба и спинного мозга. Для диагностики неврологических патологий в последнее время широко используются продвинутые методы визуальной диагностики, такие как компьютерная томография (КТ) и магниторезонансная томография (МРТ), однако для постановки диагноза «спиналь-ное новообразование» не всегда достаточно какого-то одного из этих методов.
Для диагностики патологий позвоночного столба используются такие методы визуальной диагностики, как рентгенография, миелография, КТ и МРТ [1, 2, 3].
На рентгенограммах опухоли костной ткани визуализируются как литиче-ский / пролиферативный процесс. Данные признаки стоит дифференцировать от дис-коспондилита (как правило, новообразования не пересекают дисковое пространство). Мягкотканные новообразования на рентгенограммах обычно не видны [2, 4].
Миелография - введение контрастного вещества в субарахноидальное пространство для определения компрессии спинного мозга. Однако сейчас данный метод используется достаточно редко, поскольку замещается режимом МУЕЬО при проведении МРТ. При наличии экстраду-рального новообразования один или оба контрастных столбика ликвора будут де-
