CC BY
10
ВЛИЯНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ ПОСЛЕ ФИЗИЧЕСКИХ НАГРУЗОК НА ФУНКЦИОНАЛЬНУЮ АКТИВНОСТЬ ПОДОПЫТНЫХ ХОМЯКОВ И МОРФОЛОГИЧЕСКУЮ ХАРАКТЕРИСТИКУ ЛЕГКИХ
Хабибуллин И. М., Фазлаева С. Е., Фазлаев Р. Г.
Резюме
В статье представлены результаты гистологических исследований изменений в легочной ткани у хомяков при применении биологически активных веществ. Таким образом, у подопытных животных, при использовании пастойки семян лимонника, адсорбированного трутпевого расплода и особенно в сочетании настойки семян лимонника + адсорбированного трутневого расплода в процессе эксперимента легочная ткань также подвергается определенным деструктивным изменениям, однако они носят очаговый характер и занимают меньшую площадь легочной ткани. По нашему мнению, несравнимо более благоприятная морфологическая картина наблюдается в группе опытных животных при использовании настойки семян лимонника + адсорбированного трутневого расплода, и связана она с повышенной функциональной активностью сердечно - сосудистой системы в сочетании высокой функциональной нагрузкой газообмена как внешнего, так и внутреннего дыхания.
INFLUENCE OF THE USE OF BIOLOGICALLY ACTIVE SUBSTANCES AFTER PHYSICAL LOADS ON THE FUNCTIONAL ACTIVITY OF UNDERGROUND HOSES AND THE MORPHOLOGICAL CHARACTERISTIC OF LUNGS
Khabibullin I.M., Fazlaeva S.E., Fazlayev R. G.
Summary
The article presents the results of histological studies of changes in pulmonary tissue in hamsters when using biologically active substances. Thus, in experimental animals, using tincture of Schisandra seeds, adsorbed tartar brood, and especially in combination of tinctures of magnolia seeds + adsorbed drone brood during the experiment, the lung tissue also undergoes certain destructive changes, but they are focal and occupy a smaller area of lung tissue. In our opinion, an incomparably more favorable morphological picture is observed in the group of experimental animals using tincture of seeds of magnolia vine and adsorbed tartar brood, and it is associated with increased functional activity of the cardiovascular system combined with a high functional load of gas exchange of both external and internal respiration
УДК 619:615.9; 616-072.1
МЕТОД ЛАПАРОСКОПИИ ДЛЯ ПРИЖИЗНЕННОЙ ДИАГНОСТИКИ Т-2
ТОКСИКОЗА У КРОЛИКОВ
Хайруллин Д.Д, - к.б.н.. доцент. *Валиуллин Л.Р. - к.б.н.,*Идинтов И.И. - к.б.н., с.н.с., *Бирюля В.В. - к.б.н., **Иванов В.В. - к.в.п., ***Трифонов А.Ю.;
*Тремасов М.Я. - д.б.н., профессор ФГБОУ ВО «Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э.Баумана»
ФГБНУ *Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности
**Ветеринарная клиника «Солнышко» ***Директор ООО НПФ ДиАлМед
Ключевые слова: лапароскопическая хирургия. ;тагпостика отравлений, яды природного происхождения.
Key words: laparoscopic surgery, diagnosis of poisoning, poisons of natural origin.
Одним из основных загрязнителей продовольственного сырья токсичными веществами биологического происхождения являются вторичные метаболиты микроскопических грибов (микотоксины) которые представляют большую угрозу для животных и человека.
В связи с высокой распространенность микроскопических грибов рода Fusarium в средней широтах (Франция, Германия. Канада, Российская Федерация, серверная часть США, и др. страны) часто встречающимися микотоксинами являются фузариотоксины (дизоксиневаленол
(ДОН), фумонизины, зеараленон, Т-2 токсин). Они очень часто вс тречаются в продовольственном сырье (овощах, фруктах, мясе, молоке и молочных продуктах, орехах, вине и др.) и кормах (сено, силос, фуражное зерно и др.) в сочетании друг с другом на уровне или не превышающие ПДК [3, 6]. Трихотецеповые микотоксины могут вызывать подавление иммунитета, повреждение митохондрий за счет уменьшения митохондриального мембранного потенциала и индуцировать апоптоз путем повышающей регуляции генов, связанных с апоптозом [5, 8]. Зеараленон вызывает эмбриотоксический, тератогенный эффект, а в сочетании с трихотепеновыми микотоксинами может вызывать синергетиче-ское воздействие даже при дозах ниже ПДК. Который приводит к дегенеративным и некротическим изменениям в печени, почках, иммунокомпетентных органов животных и человека [4, 7]. Однако, не смотря па широкую распространённость фузариотоксинов и высокие токсические свойства на организм животных и человека ранняя диагностика отравления микоток-сина является мало изученной и весьма актуальной проблемой как для микотокси-кологии так и для эпидемиологии. В связи с этим целью наших исследований была прижизненная диагностика токсического воздействия микотоксина Т-2 токсина на кроликов.
Материалы и методы исследований. Опыты по изучению хронического воздействия Т-2 токсина были проведены на 6 кроликах в течение 14 суток. Животные первой группы служили биологиче-
ским контролем. Животные второй группы получали Т-2 токсин в виде 5% спиртового раствора внутрижслудочно, (1/10 ЛДзо). Для эксперимента микотоксины были синтезированы в ФГБНУ ФЦТРБ-ВНИВИ, которые но физико-химическим параметрам и токсическим свойствам не отличались от существующих стандартов. В качестве продуцента микотоксинов использовали Г. зрогоПлсЫеНа 2 м 15, предоставленный Котиком А.Н. Для проведения видеолапаросколических исследований брюшной полости и для прижизненной биопсии печени при Т-2 токсикозе пользовались классической методикой (контроль) и новой однопрокольной методикой (опыт) представленной в монографии [1, 2]. Гистологическое исследование проводились согласно методической рекомендации по изучению микрокартины внутренних органов [9, 10]. В качестве параметров контроля течения токсикоза служили клинические признаки и гистологические исследования. Исследуемые показатели сравнивали с контрольными данными.
Результаты исследований. Клинические признаки отравления начали проявляться у животных получавших Т-2 токсин, и характеризовались угнетением, снижением аппетита, взъерошенностью шёрстного покрова шаткостью походки, диареей. К концу опыта, получавших Т-2 токсин, к окончанию эксперимента отмечались эрозии и некрозы кожи губ и слизистых оболочек ротовой полости.
Подготовка для введения хирургических инструментов в классическом и опытном варианте лапароскопии в брюшную полость, что для лапароскопии делаются маленькие разрезы 4 мм в брюшной стенке (два при классической методике, или один в повой, однопрокольной методике), для троакаров, через которые в брюшную полость вводятся видеолапароскоп и манипуляторы (биопсийные зажимы). Введение в брюшную полость двух троакаров, первый для камеры и инсуф-фляции газа в брюшную полость, второй для манипулятора для биопсии печени представлены на рисунке 1.
Рисунок 1 - Введение в брюшную полость двух зондов с лева на право, первый троакар для лапароскопаи инсуффляции газа в брюшную полость, а второй троакар для пункций печени.
В новой методике биопсийные зажимы вводятся через один порт (в щель между корпусом троакара и корпусом лапароскопа). Пункция печени были отобраны для гистологических исследований у животных получавших Т-2 токсина в дозах 1/10 ЛД50. При диффузном поражении паренхиматозного органа биопсию в опытной и контрольной методике проводили с краевых участков печени, где риск биопсийных осложнений наименьший. Для гемостаза участков биопсий проводиться электрокоагуляция места пункции печени тем же манипулятором, которым проводили биопсию.
Гепатоциты печени у кролика контрольной и исследуемой группы имеют обычное строение, по линии соединяющей центральные вены наблюдается не значительный визуализирующийся стеа-тоз. В микрофотографии видно, что печень кролика получавших Т-2 токсин в дозе 1/10 ЛД50, определяется капельный стеатоз.
'Заключение. В результате проведенных исследований видно, что при лапароскопии методом одного прокола брюшной полос гикролика возможно определить не только прижизненное морфологию внутренних органов животных, но и проводить биопсию печени для последующих гистологических исследований с целью выявления отрицательного воздействия различных препаратов па живой организм. Работа
выполнена за счет гранта Российского научного фонда (проект № 16-15-00141).
ЛИТЕРАТУРА:
1. Валиуллин. JI.P. Комбинированное воздействие микотоксинов на физиологические показатели крыс / Валиуллин Л.Р., Хайруллин Д.Д.. Семенов Э.И., Егоров В.И., Шуралев Э.А., Рагинов И.С. // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. - 2015. - Т. 221. №1. - С. 45-48.
2. Иванов В.В., Равилов Р.Х., Папу-ниди К.Х. Эндоскопическая хирургия мелких домашних животных. - Казань, 2016. -164 с.
3. Тремасов, М.Я. Проблемы ветеринарной экотоксикологии / М.Я. Тремасов //' Материалы международной конференции ветеринарных фармакологов и токсикологов. посвященной 125-летию H.A. Соше-ствснского. - Казань. 2001. - С. 10-14.
4. Хайруллин, Д.Д. Идентификация кормового антибиотика цинкбацитрацина методом ВЭЖХ / Хайруллин Д.Д., Галяут-динова Г.Г.. Босяков В.И.. Шангараев Н.Г., Егоров В.И. // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. Казань. -2017. - Т. 232 (4). С. - 147-150.
5. В an а Ii. Н. Determination of myco-toxinproduction of Fusariumspecies in genetically modified maize varieties by quantitative flow immunocytometry / Banati II., Danas
B., Feher-Toth S., Czeh A., Szekacs A. Toxins (Basel). - 2017. - Feb 22; 9(2).
6. Deng, C. Deoxynivalenol inhibits proliferation andinduces apoptosis in human umbilicalvein endothelial cells / Deng C. Ji C. Qin W, Cao X, et. al. // Environ Toxicol Pharmacol. - 2016 Mar 26.
7. Marie-Caroline. S. Natural Co-Occurrence of Mycotoxins in Foods and Feeds and Their in vitro Combined Toxicological Effects / Marie-Caroline S., Stéphanie M., Emmanuel C. Nolwenn H. // Toxins (Basel). -2016 Mar 26. - 8(4). pii: E94. doi: 10. 3390.
8. Zhu, C.C. Toxic effects of HT-2 toxin on mouse oocytes and its possible
mechanisms / Zhu C.C., Zhang Y., Duan X, Han J., Sun S.C. // Arch Toxicol.- 2016 Jun; 90(6).
9. Raginov I.S. Morphofunctional analysis of experimental model of esophageal achalasia in rats / Sabirov A.G., Burmistrov M.V., Chelyshev Y.A.. Khasanov R.Sh., Mo-roshek A.A., Grigoriev P.N., Zefirov A.L., Mtikhamedyarov M.A. // Bull Exp Biol Med. - 2010 Oct; 149(4):466-70.
10. Elder, E. Atlas and synopsis levers of histopathology of the Skin / E. Elder, R. Elenitsas, A. Rubin et. al. // Skin Diseases. -2013.
МЕТОД ЛАПАРОСКОПИИ ДЛЯ ПРИЖИЗНЕННОЙ ДИАГНОСТИКИ Т-2
ТОКСИКОЗА У КРОЛИКОВ
Хайруллин Д.Д., Валиуллин Л.Р.. Идиятов И.И., Бирголя В.В., Иванов В.В., Трифонов АЛО., Тремаеов М.Я.
Резюме
В связи с высокой распространённостью микроскопических грибов, их метаболиты вызывают при этом тяжелые патологические процессы в организме животных. В наших исследованиях была изучена прижизненная диагностика токсического воздействия Т-2 токсина на кроликах методом лапароскопии брюшной полости.
Для проведения видеолапароскопических исследований брюшной полости и для прижизненной биопсии печени при Т-2 токсикозе пользовались однопрокольной методикой. В качестве параметров контроля течения токсикоза служили клинические признаки и гистологические исследования. Исследуемые показатели сравнивали с контрольными данными.
В результате проведенных исследований видно, что при лапароскопии возможно определить не только прижизненное морфологию внутренних органов животных, но и проводить биопсию печени для последующих гистологических исследований с целью выявления отрицательного воздействия различных препаратов на живой организм.
METHOD OF LAPAROSCOPY FOR INJECTED DIAGNOSIS OF T-2 TOXICOSIS
IN RABBITS
Khairullin D.D., Valiullin, L.R., Idiatou LI., Biryulya V.V., Ivanov V.V., Trifonov A.Y., Tremasov M.Y.
Summary
Due to the high prevalence of microscopic fungi, their metabolites cause with severe pathological processes in the organism of animals. In our studies, was studied in vivo diagnosis of toxic effect of T-2 toxin on kalikaniata laparoscopy the abdominal cavity.
To conduct video studies of the abdomen and for in vivo biopsy of the liver in T-2 toxicosis used odnoprestolnoj method. As control parameters, flow toxicity served as the clinical signs and histological examination. Investigated parameters were compared with control data.
The result of the research shows thai during laparoscopy it is possible to determine not only the in vivo morphology of the internal organs of animals, but also to carry out a liver biopsy lor further histological studies to identify adverse effects of various drugs on the living organism.
