CC BY
18
Особенности гипоксиязависимого механизма регуляции неоангиогенеза и апоптоза у больных локализованным раком предстательной железы и с ранним рецидивированием
О.И. Кит1, Ф.С. Бова2, А.Ю. Максимов1
1ФГБУ«Ростовский научно-исследовательский онкологический институт» Минздрава России; Россия, 344037Ростов-на-Дону, 14-я линия, 63; 2Центр урологии, нефрологии и гемодиализа ГБУРостовской области «Областная больница № 2»; Россия, 344029 Ростов-на-Дону, ул. 1-й Конной Армии, 33
Контакты: Филипп Сергеевич Бова [email protected]
Цель исследования — изучение экспрессии генов, ответственных за гипоксиязависимый контроль транскрипции, неоангиогенез, а также апоптоз в опухолевой ткани предстательной железы, у больных локализованным раком предстательной железы (РПЖ) с биохимическими рецидивами (БР) и без рецидивов после радикальной простатэктомии (РПЭ).
Материалы и методы. В основную группу были включены 56пациентов с локализованным РПЖ, у которых в течение 2лет после РПЭ выявлен БР. Группу сравнения составили 60 больных локализованным РПЖ, у которых рецидив не наблюдался. В контрольную группу были объединены 55 пациентов, у которых операционные биоптаты предстательной железы взяты в пределах здоровых тканей при удалении доброкачественной гиперплазии предстательной железы. Определение уровня экспрессии генов BAX, BCL2, VEGFA, HIFla в ткани опухоли проводили методом полимеразной цепной реакции в реальном времени. Результаты. У больных локализованным РПЖпосле РПЭ развитие БР ассоциировано с повышением экспрессии генов BCL2, VEGFA и HIFla и снижением экспрессии гена BAX. У больных локализованным РПЖ и с ранним рецидивированием в ткани опухоли, вероятно, через гипоксиязависимый фактор, усиливающий транскрипционные процессы в опухолевых клетках, активируется неоангиогенез, сопряженный с угнетением апоптоза опухолевых клеток за счет усиления экспрессии антиапоптического гена BCL2. Заключение. Определение экспрессии генов BAX, BCL2, VEGFA и HIFla в ткани опухоли при локализованном РПЖ позволяет дополнительно оценить риск прогрессирования заболевания после хирургического лечения.
Ключевые слова: рак предстательной железы, биохимический рецидив, гипоксиязависимый фактор, ангиогенез, апоптоз, экспрессия генов
Для цитирования: Кит О.И., Бова Ф.С., Максимов А.Ю. Особенности гипоксиязависимого механизма регуляции неоангиогенеза и апоптоза у больных локализованным раком предстательной железы и с ранним рецидивированием. Онкоурология 2018;14(3):37—42.
DOI: 10.17650/1726-9776-2018-14-3-37-42
Hypoxia-dependant mechanisms of regulating neoangiogenesis and apoptosis in patients with early recurrent localized prostate cancer
O.I. Kit1, F.S. Bova2, A.Yu. Maksimov1
1Rostov Research Institute of Oncology, Ministry of Health of Russia; 63 14th Liniya, Rostov-on-Don 344037, Russia;
2Rostov Center of Urology, Nephrology, and Hemodialysis, Regional Hospital No. 2; 33 1stKonnoy Armii St., Rostov-on-Don 344029, Russia
Objective. Examination of the expression of genes responsible for hypoxia-dependent control of transcription, neoangiogenesis, and apoptosis in tumor tissue of the prostate, in patients with localized prostate cancer (РС) with biochemical recurrence (BR) and without recurrences after radical prostatectomy (RPE).
Materials and methods. The main group included 56patients with localized PC who had been diagnosed with BR within two years after RP. 60 patients with localized PC who did not relapse had a comparative group. 55patients in whom operative biopsy specimens of the prostate gland were taken within healthy tissues with the removal of benign prostatic hyperplasia were combined into a control group. Determination of the expression level of the BAX, BCL2, VEGFA and HIF1a genes in tumor tissue was performed by real-time polymerase chain reaction.
Results. In patients with localized PC after RPE, development of BR is associated with an increase in the expression of BCL2, VEGFA and HIF1a genes and a decrease in the expression of the BAX gene. In patients with localized PC and early recurrence of tumor tissue through a hypoxia-dependent factor that enhances transcriticalprocesses in tumor cells, neoangiogenesis is activated, which is associated with inhibition of apoptosis of tumor cells by enhancing the expression of the antiapoptotic gene BCL2.
Conclusion. Determination of the expression of BAX, BCL2, VEGFA and HIF1a genes in tumor tissue with localized PC allows further assessment of the risk of disease progression after surgical treatment.
ев
u <
u
JN CO
2 Key words: prostate cancer, biochemicalrelapse, hypoxia-dependentfactor, angiogenesis, apoptosis, gene expression
JN CO
CS
For citation: Kit O.I., Bova F.S., Maksimov A.Yu. Hypoxia-dependant mechanisms of regulating neoangiogenesis and apoptosis in patients with early recurrent localized prostate cancer. Onkourologiya = Cancer Urology 2018;14(3):37—42.
о Введение
3 Для формирования заключения о прогрессивном ос либо индолентном течении рака предстательной же-« лезы (РПЖ) в настоящее время используют динамичен ное определение простатического специфического — антигена (ПСА) в сыворотке крови [1]. Разработаны 2 четкие критерии диагностики биохимического реци-Ц дива (БР) заболевания по результатам лабораторного
мониторинга. Однако ключевой проблемой в онко-^ урологии, требующей внимания, остается разработка «ч точного и минимально инвазивного прогностическо-
04 го теста в отношении выделения пациентов в начале наблюдения и лечения с высоким риском к раннему
о рецидивированию онкологического заболевания [2]. о РПЖ имеет сложный патогенез, опирающийся на комплекс гормональных, генетических, молекуляр-ас ных и гистологических изменений [3]. Одни факторы о способствуют развитию онкологического процесса, другие, в большей мере, отвечают за дальнейшее распространение раковых клеток в организме либо за рецидив заболевания [4].
Изучение экспрессии генов в опухолевой ткани предстательной железы (ПЖ) способствует выявлению генетических сигнатур, использующихся для формирования заключения о течении заболевания (латентное или агрессивное), его прогрессировании, метастатическом потенциале опухоли наряду с важными клиническими характеристиками болезни [5, 6]. G. Novelli и соавт. при разработке специального гибри-дизационного микрочипа предложили использовать мониторинг экспрессии 190 генов в андрогензависи-мых и андрогеннезависимых клетках ПЖ [7]. Авторы показали высокую значимость предложенного метода для решения вопроса о прогнозе развития РПЖ. В другом исследовании выявлено, что группы больных РПЖ с разными сроками выживаемости (<300 дней и >900 дней) различались по выраженности экспрессии генов в мононуклеарной фракции венозной крови с диагностической эффективностью 92 % [8].
Как известно, апоптоз относится к ключевым процессам, способствующим местному ограничению опухоли, а неоангиогенез ввиду усиления кровоснабжения за счет новообразования сосудов и повышения их проницаемости обеспечивает ее дальнейший рост и прогрессирование [9]. Гипоксиязависимые пути контроля транскрипции в опухолевой клетке, а также апоптоза, неоангиогенеза в ткани могут влиять на рост и распространение опухоли у больных РПЖ. Гипоксия
оказалась самым мощным VEGF-индуцирующим стимулом для всех типов клеток. Гипоксияиндуцибель-ный фактор 1а (hypoxia-inducible factor 1 alpha, HIFla) участвует в активируемых в условиях гипоксии транскрипционных механизмах, влияющих на интенсивность пролиферации раковых клеток, повышенную экспрессию протеина VEGF в опухоли [10]. Сопоставление выраженности экспрессии генов HIFla, VEGFA, BAX и BCL2 в операционных биоптатах опухолевой ткани ПЖ с последующим течением болезни способно расширить информацию о предикторных возможностях методов генетического анализа для прогноза заболевания. Изучение экспрессии гена HIFla, определяющего синтез и функции одноименного протеина, регулирующего после транслокации из цитоплазмы в ядро интенсивность транскрипционных процессов, синтез ростового фактора для сосудов VEGFA, может расширить спектр механизмов, модулирующих воздействие на течение онкологического заболевания.
Цель исследования — изучение экспрессии генов, ответственных за гипоксиязависимый контроль транскрипции, неоангиогенез, а также апоптоз в опухолевой ткани ПЖ, у больных локализованным РПЖ с БР и без рецидивов после радикальной простатэктомии (РПЭ).
Материалы и методы
Работа выполнена в отделении онкоурологии Ростовского научно-исследовательского онкологического института, Центре урологии, нефрологии и гемодиализа Областной больницы № 2 в период с 2015 по 2018 г. Исследование было одобрено Локальным независимым этическим комитетом Ростовского научно-исследовательского онкологического института.
Всем пациентам в сыворотке крови исходно и каждые 3 мес после РПЭ определяли содержание ПСА путем иммуноферментного анализа на фотометре Multiscan-P2 (Thermo Fisher Scientific Inc., Финляндия). Основанием для заключения о наличии БР было превышение концентрации ПСА в крови >0,2 нг/мл в 3 последовательных измерениях, проведенных с интервалом 2 нед и более.
В основную группу были включены 56 пациентов с локализованным РПЖ, у которых в течение 2 лет после РПЭ выявлен БР. Группу сравнения составили 60 больных локализованным РПЖ, у которых рецидив не наблюдался. В контрольную группу были
объединены 55 пациентов, у которых операционные биоптаты ПЖ взяты в пределах здоровых тканей при удалении доброкачественной гиперплазии ПЖ.
Возраст больных находился в пределах от 57 до 74 лет, составив в среднем в основной группе 66,7 ± 2,1 года, в группе сравнения 62,4 ± 2,5 года, в контрольной группе 63,1 ± 2,4 года. Распределение больных основной группы в зависимости от клинической стадии РПЖ было следующим: сТ1с — 5,3 % (n = 3), сТ2а - 8,9 % (n = 5), сТ2Ь - 37,5 % (n = 21), сТ2с -48,2 % (n = 27). Высокая степень гистопатологической дифференцировки (сумма баллов по шкале Глисона (индекс Глисона) <6) встречалась у 6 (10,7 %) больных основной группы, умеренная (индекс Глисона 7) — у 45 (80,4 %) и низкая (индекс Глисона 8-10) - у 5 (8,9 %).
В группе сравнения распределение стадий РПЖ было следующим: сТ1с - 5 % (n = 3), сТ2а - 5 % (n = 3), сТ2Ь - 35 % (n = 21), сТ2с - 55 % (n = 33). Высокая степень гистопатологической дифференци-ровки (индекс Глисона <6) встречалась у 8 (7,1 %) больных, умеренная (индекс Глисона 7) - у 48 (91,6 %) и низкая (индекс Глисона 8-10) - у 4 (1,3 %).
При микроскопическом исследовании фиксированных образцов ткани кусочков ПЖ, взятых при операции, отмечали гистологический тип опухоли, степень гистопатологической дифференцировки. У всех больных основной группы и группы сравнения гистологический тип опухоли ПЖ был представлен адено-карциномой.
В зависимости от риска развития рецидива РПЖ все 116 пациентов основной группы и группы сравнения после операции были разделены на 4 подгруппы: очень низкого (n = 4), низкого (n = 10), промежуточного (n = 93) и высокого риска (n = 9) согласно общепринятой классификации A.V. D'Amico и соавт. [11].
Операционные биоптаты ПЖ для генетического анализа замораживали в жидком азоте (температура -80 °С) и в течение 1 ч доставляли в лабораторию. Из полученных образцов ткани ПЖ готовили препараты толщиной 8 мкм, и ввиду существования гетерогенности опухоли (мультифокальность, внутриочаговая и межочаговая гетерогенность) патологоанатом после окраски гематоксилином контролировал, соответствует ли фрагмент опухоли наибольшему индексу Глисона.
Фрагменты ткани помещали в пробирку с 350 мкл буфера набора для лизиса клеток и связывания общей РНК RNeasy Mini Kit (Qiagen, Германия), включая 1 % ß-меркаптоэтанол. Экстракцию, выделение и элю-ирование общей РНК проводили согласно инструкции фирмы-производителя. Концентрацию полученной РНК измеряли с помощью набора Quant-iTTM RNA Assay Kit (Invitrogen, США) на флуориметре QubitTM (Invitrogen, США).
Для получения комплементарной ДНК (кДНК) 1 мкг РНК подвергали обратной транскрипции
с помощью метода полимеразной цепной реакции (ПЦР) с обратной транскрипцией и набора реагентов с обратной транскриптазой Omniscript Reverse Transcriptase Kit (Qiagen, Германия) и использованием 10 ^M p (dN) 8 рандомных гексамерных праймеров (TIB MOLBIOL, Германия). Перед транскрипцией РНК денатурировали в течение 5 мин при температуре 65 °С с последующим охлаждением на льду. Обратная транскриптаза Omniscript была инактивирована при нагреве реакционной смеси в течение 5 мин при температуре 93 °С. До анализа ПЦР в реальном времени (ПЦР-РВ) кДНК хранили при температуре —20 °С. Перед использованием в качестве ПЦР-матри-цы кДНК разводили в соотношении 1:5.
При проведении ПЦР-РВ для анализа экспрессии генов BAX, BCL2, VEGFA и HIFla использовали систему ABI Prism (Applied Biosystems, США), включающую готовые праймеры и зонды TaqMan. Зонды TaqMan были меченными флуоресцентным красителем FAM 5'-(6-карбоксифлуоресцеин) c гасителем красителя TAMPA (6-карбокситетраметилродамин) на тимидиновой основе вблизи З'-конца. Реакционная смесь содержала: ПЦР-буфер (200 мМ Трис-HCl (рН 8,4), 500 мМ KCl), 4,5 мМ MgCl2, 1 мМ dNTP, 0,5 U платиновой Taq ДНК-полимеразы (Invitrogen, Германия), 0,2 мкМ каждого праймера, 120 нМ специфического зонда TaqMan и 1 мкМ 6-карбокси-Х-родамина (Molecular Probes, Нидерланды). В качестве матрицы для ПЦР использовали 2 мкл предварительно разбавленной кДНК в конечном объеме 25 мкл. Условия цикла были следующими: первичная денатурация 94 °С — 3 мин; 45 циклов: 94 °С — 20 с; отжиг и элонгация праймера при температуре, специфичной для каждого гена, — 30 с. При определении экспрессии каждого гена ПЦР-РВ проводили трехкратно.
В качестве референсного использовали ген HPRT1 (Hypoxanthine phosphoribosyltransferase 1) (NM_000194, GenBank). Для него применяли готовые праймеры фирмы Roche Applied Science (Германия) системы LightCycler-h-HPRT 1811.97 (Housekeeping Gene Set).
Для проведения ПЦР-РВ использовали термоци-клер Bio-Rad CFX96 (Bio-Rad, США), специализированное программное обеспечение Bio-Rad CFX Manager v.2.1. Количественную оценку экспрессии генов рассчитывали по методу 2 -ACt [12] как разность значений пороговых циклов реакции (Ct) для исследуемого и референсного генов. Относительный уровень экспрессии определяли как отношение медиан рассчитываемых показателей для каждого гена в основной группе и группе сравнения при РПЖ к аналогичному показателю в контрольной группе, а также между основной группой и группой сравнения (кратность увеличения или уменьшения экспрессии гена одной группы по отношению к другой).
CS
U
et
U
JN CO
CS
U
et
U
JN СО
Статистическую обработку результатов выполняли с помощью программы Statistica 10.0 (StatSoft, США). В работе использовали метод описательной статистики, корреляционный анализ.
Результаты и обсуждение
В исследовании была изучена экспрессия 4 генов. Ген VEGFA кодирует синтез сосудистого эндотелиаль-ного фактора роста (vascular endothelial growth factor, VEGF) типа A, ген HIFla — а-субъединицы протеина гипоксияиндуцибельного фактора 1. Антиапоптозный ген BCL2 контролирует синтез BCL2-протеина (B-cell lymphoma 2), проапоптозный ген BAX отвечает за синтез ассоциированного с BCL2 белка X.
В основной группе по сравнению с контрольной обнаружено выраженное (>1,5) и статистически значимое повышение экспрессии гена HIFla в 4,9 раза (p <0,001) и гена VEGFA в 3,1 раза (p <0,001) (см. рисунок). В группе сравнения по отношению к контрольной группе экспрессия гена HIFla была выше в меньшей мере (в 1,8 раза; p <0,05), а для гена VEGFA, контролирующего неоангиогенез, отмечалась лишь недостоверная тенденция к повышению (р = 0,17). При сравнительном анализе уровней экспрессии генов в опухолевых образцах ткани в основной группе по сравнению с группой сравнения установлено повышение (p <0,05) относительного показателя как для гена HIFla (в 2,7 раза), так и для гена VEGFA (в 2,4 раза).
Следовательно, у пациентов с локализованным РПЖ при раннем рецидивировании исходно в опухолевых образцах ткани установлен более высокий
HIFla VEGFA BAX BCL2
1,8 1,3 1,6 0,78
4,9 3,1 0,92 1,4
2,7 2,4 0,63 1,8
к Группа сравнения/Контрольная группа/Comparison group/Control group ч- Основная группа/Контрольная группа/Experimental group/Control group Основная группа/Группа сравнения/Experimental group/Comparison group
Изменение уровней экспрессии генов HIFla, VEGFA, BAX и BCL2 в ткани предстательной железы в основной группе и группе сравнения к соответствующим показателям контрольной группы и между собой (кратность увеличения или уменьшения экспрессии гена по отношению к аналогичному показателю контроля). *Достоверныеразличия между группами при p <0,05
Changes in the expression of HIFla, VEGFA, BAX, and BCL2 in prostate tissue in the experimental and comparison groups (fold changes compared to the control group). *Significant differences between the groups at p <0.05
уровень экспрессии генов HIFla и VEGFA. VEGFA имеет ведущее значение для активации неоангиогенеза и роста опухолей при РПЖ в условиях гипоксии тканей [13]. Одним из основных доказательств данного факта может служить работа K. Eisermann и соавт. [14], в которой сделано заключение о том, что VEGF-зави-симый ангиогенез при РПЖ активируется снижением кислорода в ткани и повышением чувствительности рецепторов к андрогенам. Классическая модель регуляции ангиогенеза в РПЖ также, как в любой другой опухоли, предполагает существование паракринной системы, в которой VEGF вырабатывается опухолевыми клетками, а рецепторы к фактору расположены на эндотелиоцитах сосудов. Причем выраженность экспрессии белка VEGF коррелирует с экспрессией антигена Ki-67 и индексом пролиферации опухолевых клеток [15], т. е. VEGF кроме основной функции регуляции неоангиогенеза при РПЖ выступает как ау-токринный и паракринный регулятор пролиферации опухолевых клеток аденокарциномы. Продукция белка VEGF раковыми клетками при РПЖ индуцируется различными внешними и внутренними факторами, среди которых гипоксия является ведущей [16, 17]. Об однонаправленном усилении экспрессии HIFl и VEGF в клетках РПЖ свидетельствовало наличие тесной и прямой корреляционной связи: коэффициент корреляции уровней экспрессии HIFl и VEGF 0,64 (p <0,001). Следовательно, ангиогенез в опухолевой ткани ПЖ косвенно активируется в том числе вследствие усиления экспрессии гена HIFla, отвечающего за синтез гипоксияиндуцибельного фактора транскрипции.
В основной группе по сравнению с контрольной имело место повышение экспрессии антиапоптиче-ского гена BCL2в опухолевой ткани в 1,4 раза (р <0,05) (см. рисунок). При сравнительном анализе экспрессии гена BCL2 в основной группе по сравнению с группой сравнения установлены повышение относительного показателя в 1,8 раза (р <0,05) и снижение аналогичной величины для проапоптического гена BAX на 37 % (р <0,05). В группе сравнения по отношению к контрольной группе экспрессия гена BAX была выше в 1,6 раза (p <0,05), а для антиапоптического гена BCL2 отмечалась недостоверная тенденция к снижению (р = 0,09). Таким образом, у пациентов с локализованным РПЖ при отсутствии БР после РПЭ повышение экспрессии гена BAX способствовало активации процессов апоптоза. У пациентов с локализованным РПЖ при последующем рецидивировании в опухолевых образцах наблюдалось угнетение апоптоза за счет повышения экспрессии гена BCL2.
Активацию антиапоптозного механизма в опухолевой ткани у больных основной группы можно объяснить тем, что усиленная экспрессия белка VEGF не только стимулирует пролиферацию опухолевых
*
клеток, но и подавляет апоптоз, индуцируя экспрессию BCL2 [18]. В нашей работе установлена статистически значимая корреляция с уровнем экспрессии генов VEGF и BCL2 (коэффициент корреляции 0,57; p <0,001). В то же время существуют работы, указывающие, что BCL2 усиливает стимулирующее действие гипоксии на синтез VEGF в клетках аденокарциномы ПЖ [19]. В опытах in vivo ВС£2-трансфецированные клетки образовывали опухоли с большей степенью васкуляризации и большей экспрессией VEGF, чем исходные клетки [20]. В работе была установлена прямая статистически значимая корреляционная связь с экспрессией генов BCL2 и HIFla (коэффициент корреляции 0,52; p <0,01). Таким образом, VEGF, способствующий выживаемости эндотелиальных клеток, являлся косвенным антиапоптическим фактором для опухолевых клеток. В свою очередь, усиленная экспрессия BCL2 способствовала усилению интеграции между транскрипционным фактором, активиру-
емым при гипоксии, и фактором роста сосудов. У больных локализованным РПЖ и с ранним рециди-вированием в ткани опухоли, вероятно, через гипок-сиязависимый фактор, усиливающий транскрипционные процессы в опухолевых клетках, активируется неоангиогенез, сопряженный с угнетением апоптоза опухолевых клеток за счет усиления экспрессии анти-апоптического гена В^2.
Заключение
У больных локализованным РПЖ после РПЭ развитие БР ассоциировано с повышением экспрессии генов Н^1а, VEGFА и В^2 и снижением экспрессии гена ВАХ.
Определение экспрессии генов Н^1а, VEGFA, ВАХ и В^2 в ткани опухоли при локализованном РПЖ позволяет дополнительно оценить риск про-грессирования заболевания после хирургического лечения.
ев
u et
U
JN СО
ЛИТЕРАТУРА / REFERENCES
1. Сергеева Н.С., Скачкова Т.Е., Маршу-тина Н.В. и др. Клиническая значимость ПСА-ассоциированных тестов в диагностике и стадировании рака предстательной железы. Онкология 2018;(1):55—67. [Sergeeva N.S., Skachko-va T.E., Marshutina N.V. et al. Clinical significance of PSA-associated tests in the diagnosis and staging of prostate cancer. Onkologija = Oncology 2018;(1):55—67. (In Russ.)].
2. Гулиев Ф.А. Предикторы биохимического прогрессирования рака предстательной железы. Казанский медицинский журнал 2017;98(6):890-4. [Guliev F.A. Predictors of biochemical progression of prostate cancer. Kazanskiy medicinskiy zhurnal = Kazan Medical Journal 2017;98(6):890-4. (In Russ.)].
3. Coleman W.B. Molecular pathogenesis of prostate cancer. In: Molecular Pathology. 2nd Edn. The molecular basis of human disease. Eds.: W.B. Coleman, G. Tsongalis Elsevier Inc., 2018. Pp. 555-568. DOI: 10.1016/B978-0-12-802761-5.00025-0.
4. Bethel C.R., De Marzo A.M., Nelson WG. Molecular pathogenesis of prostate cancer: somatic, epigenetic, and genetic alterations. In: Molecular pathology. The molecular basis of human disease. Eds.
W.B. Coleman, G. Tsongalis. Elsevier Inc., 2009. Pp. 489-500. DOI: 10.1016/B978-0-12-374419-7.00024-X.
5. Коган М.И., Чибичян М.Б., Водолаж-ский Д.И. Изменение экспрессии генетических локусов в мононуклеарной фракции периферической крови больных раком предстательной железы. Клиническая онкология 2012;(5):
59-60. [Kogan M.I., Chibichjan M.B., Vodolazhskij D.I. Change in the expression of genetic loci in the mononuclear fraction of peripheral blood of patients with prostate cancer. Klinicheskaya onkologiya = Clinical Oncology 2012;(5):59-60. (In Russ.)].
6. Толкач Ю.В., Рева С.А., Носов А.К.
и др. Клиническая значимость генетической характеризации рака предстательной железы: обзор литературы. Онкоурология 2015;(2):99-106. DOI: 10.17650/1726-9776-2015-11-2-99-106. [Tolkach Yu.V., Reva S.A., Nosov A.K. et al. Clinical significance of genetic characterization of prostate cancer: a review of literature. Onkourologiya = Oncouro-logy 2015;(2):99-106. (In Russ.)].
7. Novelli G., Ciccacci C., Borgiani P. et al. Genetic tests and genomic biomarkers: regulation, qualification and validation. Clin Cases Miner Bone Metab 2008;5(2):149-54. PMID: 22460999.
8. Komatsu N., Matsueda S., Tashiro K. et al. Gene expression profiles in peripheral blood As a biomarker in cancer patients receiving Peptide vaccination. Cancer 2012;118(12):3208-21. DOI: 10.1002/ cncr.26636. PMID: 22071976.
9. Гориловский Л.М., Зингеренко М.Б. Роль апоптоза в патогенезе рака предстательной железы. Клиническая геронтология 2007;(11):34-7. [Gorilovs-kiy L.M., Zingerenko M.B. The role of apoptosis in the pathogenesis of prostate cancer. Klinicheskaya gerontologiya = Clinical Gerontology 2007;(11):34-7. (In Russ.)].
10. Tong D., Liu Q., Liu G. et al. The HIF/ PHF8/AR axis promotes prostate cancer
progression. Oncogenesis 2016;5(12):e283. DOI: 10.1038/ONCSIS.2016.74. PMID: 27991916.
11. D'Amico A.V., Whittington R., Malko-wicz S.B. et al. Combined modality staging of prostate carcinoma and its utility in predicting pathologic stage and postoperative prostate specific antigen failure. Urology 1997;49(3A Suppl):23-30.
PMID: 9123732.
12. Livak K., Schmittgen T.D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) method. Methods 2001;25(4): 402-8. DOI: 10.1006/meth.2001.1262. PMID: 11846609.
13. Черняев В.А. VEGF и рак предстательной железы. РМЖ. Онкология 2012;(1):17—9. [Chernyaev V.A. VEGF and prostate cancer. RMZh. Onkologija = RMJ. Oncology 2012;(1):17-9.
(In Russ.)].
14. Eisermann K., Fraizer G. The androgen receptor and VEGF: mechanisms of androgen-regulated angiogenesis in prostate cancer. Cancers (Basel) 2017;9(4):E32. DOI: 10.3390/cancers9040032. PMID: 28394264.
15. Ma T., Yang S., Jing H. et al. Apparent diffusion coefficients in prostate cancer: correlation with molecular markers Ki-67, HIF-1a and VEGF. NMR in Biomedicine 2018;31(3). DOI: 10.1002/nbm.3884. PMID: 29315957.
16. Ranasinghe W.K., Sengupta S., Williams S. et al. The effects of nonspecific HIF1a inhibitors on development of castrate resistance and metastases in prostate cancer. Cancer Med 2014;3(2):245-51.
CS
DOI: 10.1002/cam4.189. PMID: 24464861. 17. Stewart G.D., Ross J.A., McLaren D.B. et al. The relevance of a hypoxic tumour microenvironment in prostate cancer. BJU Int 2010;105(1):8—13. DOI: 10.1111/j.1464-410X.2009.08921.x. PMID: 19889065.
18. Sakai Y., Goodison S., Cao W. et al. VEGF induces expression of Bcl-2 and multiple signaling factors in microvascular endothe-lial cells in a prostate cancer model. World J Urol 2009;27(5):659-66. DOI: 10.1007/ s00345-009-0422-0. PMID: 19495772.
19. Anvari K., Toussi M.S., Kalantari M. et al. Expression of Bcl-2 and Bax in advanced
or metastatic prostate carcinoma. Urol J 2012;9(1):381-8. PMID: 22395836. 20. Renner W., Langsenlehner U., Krenn-Pilko S. et al. BCL2 genotypes and prostate cancer survival. Strahlenther Onkol 2017;193(6):466-71. DOI: 10.1007/s00066-017-1126-9. PMID: 28396899.
u <
u
Вклад авторов
О.И. Кит: разработка дизайна исследования;
Ф.С. Бова: обзор публикаций по теме статьи, получение данных для анализа, анализ полученных данных, написание текста рукописи;
А.Ю. Максимов: статистический анализ полученных данных, корректировка текста рукописи.
Authors' contributions
O.I. Kit: developing the research design;
F.S. Bova: reviewing of publications of the article's theme, obtaining data for analysis, analysis of the obtained data, article writing; A.Yu. Maksimov: statistical analysis of the obtained data, correction of the text of the article.
JN CO
ORCID авторов/ORCID of authors
О.И. Кит/O.I. Kit: https://orcid.org/0000-0003-3061-6108
Ф.С. Бова/F.S. Bova: https://orcid.org/0000-0003-2782-3288
А.Ю. Максимов/A.Yu. Maksimov: https://orcid.org/0000-0002-1397-837X
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов. Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest.
Финансирование. Исследование проведено без спонсорской поддержки. Financing. The study was performed without external funding.
Информированное согласие. Все пациенты подписали информированное согласие на участие в исследовании. Informed consent. All patients gave written informed consent to participate in the study.
Статья поступила: 17.04.2018. Принята к публикации: 02.07.2018. Article received: 17.04.2018. Accepted for publication: 02.07.2018.
